- •Содержание
- •Введение
- •Обзор литературных источников
- •Современный ареал семейства Helicidae
- •Фенетическая изменчивость брюхоногих моллюсков
- •Полиморфизм Cepaea nemoralis
- •1.4 Реакция брюхоногих моллюсков на изменение условий среды
- •Объект исследования
- •Материал и методика исследования
- •4 Экспериментальная часть
- •4.1 Пространственно – генетическая структура Cepaea nemoralis в формирующейся периферийной популяции
- •4.2 Фенетическая изменчивость Cepaea nemoralis во времени
- •4.3 Изменчивость метрических параметров Cepaea nemoralis
- •4.4 Культивирование Cepaea nemoralis в лабораторных условиях
- •4.5 Влияние нитрата свинца на Cepaea nemoralis
- •Заключение
- •Список использованных источников
- •Приложение
4.4 Культивирование Cepaea nemoralis в лабораторных условиях
В зимний период с 2008-2009 гг. нами отрабатывается методика культивирования Cepaea nemoralis в лабораторных условиях. Нас заинтересовало, каким образом идет формирование меланинового рисунка на последнем обороте раковины моллюска в онтогенезе и существует ли зависимость между степенью меланизации и условиями существования.
Анализ литературных источников и сайтов интернета показал, что уже опубликовано несколько рекомендаций по содержанию Cepaea nemoralis. Однако эти все методики предложены людьми далекими от науки. Основная цель авторов это просто содержать что-то живое дома, а не отработать методику культивирования вида.
Изучив особенности биологии и экологии Cepaea nemoralis в природных условиях, мы попытались, отработать наиболее простую методику культуры этого вида и получить потомство в осеннее - зимний период.
Ниже приводится отработанная нами методика культивирования Cepaea nemoralis в лабораторных условиях. Для содержания Cepaea nemoralis мы использовали аквариум прямоугольной формы объемом около 15 литров, предварительно тщательно вымытый и обработанный дизраствором. На дно аквариума помещали грунт, из прокаленных песка и глины, толщиной 5 см. (рисунок 4.4.1).
Рисунок 4.4.1 – Содержание Cepaea nemoralis на глиняно-песчаном грунте
(фото автора)
Сверху аквариум закрывали стеклом, оставив небольшую щель для поступления воздуха. Аквариумы подсвечивались люминесцентными лампами на протяжении 14 часов. В качестве корма использовали ветки крапивы, листья белокочанной капусты, корнеплоды моркови. Корм предварительно ополаскивался отстоянной водопроводной водой и обновлялся ежедневно. Корм чередовали. Сначала использовали в качестве корма крапиву до тех пор, пока она вегетировала, потом в качестве корма использовали листья капусты и, наконец, морковь в виде тонких пластинок.
Для содержания отбирались половозрелые особи Cepaea nemoralis, собранные на небольшом участке г. Бреста в тупике железнодорожного полотна недалеко от Центрального железнодорожного вокзала сборы проводились в начале сентября. В один аквариум помещали 50 особей.
Наблюдения за жизнедеятельностью особей в аквариуме проводились ежедневно. Активность питания оценивалось по площади съеденного корма.
Используя описанную выше методику, мы смогли поддерживать культуру на протяжении 7 месяцев. Наблюдения за состоянием особи в аквариуме показали, что активность питания особей на протяжении двух месяцев была высокая. На третьем месяце активность питания снизилась. На грунте начали появляться мухи горбатки. Грунт начал покрываться плесенью. Жизнедеятельность особей снижалась, и наша культура прекратила свое существование к апрелю месяцу.
Не смотря на неудачную попытку культивирования Cepaea nemoralis по вышеописанной методике, все-таки можно сделать некоторые выводы:
- грунт, состоящий только из песка и глины, не подходит для культуры;
- грунт следует увлажнять и чистить или обезвреживать;
- предпочтительным кормом является капуста и морковь, а не крапива.
Наблюдения за онтогенезом цепей показали, что описанные выше условия не совсем благоприятные для культивирования, очень быстро в аквариуме появились мухи горбатки. 16 особей, оставленных на зимовку – погибло. Попытка провести спаривание также не увенчалось успехом т.к. температура в лаборатории была относительно низкой, особенно в осенний период.
Нами изучен для культивирования и другой грунт, который создан на основе природных компонентов, основу которого составляет торф (рисунок 4.4.2). В грунт добавляли небольшое количество мела, а для увлажнения среды использовали смоченные куртинки мха сфагнума. Изучался и новый компонент рациона – яблоки. Как и в первом эксперименте, аквариум освещался люминесцентными лампами на протяжении 8–10 часов.
Рисунок 4.4.2 – Содержание Cepaea nemoralis на торфяном грунте (фото автора)
В подготовленный аквариум в сентябре месяце были посажены моллюски, взятые из природной среды, также в конце лета, как и в первом эксперименте. Моллюски активно питались, успешно перенесли зимовку и начали спариваться в мае месяце. После спаривания большинство моллюсков начало откладывать яйца, которые находились в толще грунта. Улитка наполовину зарылась в грунт и отложила 50 довольно крупных яиц (диаметром 5мм). Яйца белые, по форме чем-то напоминают гусиные, но в миниатюре, и с очень плотной известковой скорлупой. Яйца откладывают моллюски в почву. Сначала скорлупа яиц достаточно плотная, а на просвет кажутся янтарными. Но со временем содержимое яиц мутнеет, а скорлупа истончается, отдавая весь свой кальций на построение раковины. Через 65 дней начали вылупливаться моллюски, количество вылупившихся особей составило – 50. Молодь начала питаться и расти, однако, через месяц начала наблюдаться постепенная гибель молодых особей. Все полученное в лаборатории потомство погибло к концу лета.
Данный эксперимент по культивированию показал, что наличие в грунте торфа, мела и сфагнума снижает появление горбаток, а предпочтительным кормом являются яблоки, которыми моллюски охотно питались.
Причиной гибели лабораторного потомства, возможно, явилось все-таки недостаточное количество влаги и недостаток кислорода, так как аквариум был закрыт стеклом и открывался нерегулярно.
Наш опыт по культивированию моллюсков показал, что просто содержать моллюсков можно в условиях, описанных во втором эксперименте, однако, эти условия не обеспечивают поддержания жизнеспособности культуры. Методика культуры Cepaea nemoralis должна дорабатываться.
