- •Применение генной инженерии
- •1. Использование генетической инженерии в животноводстве
- •Назначение:
- •1.1 Получение инсулина на основе методов генетической инженерии
- •1.2. Синтез соматотропина
- •1.3. Получение интерферонов
- •2. Генная инженерия растений.
- •2.1. Получение трансгенных растений
- •2.3. Генно-инженерные подходы к решению проблемы усвоения азота
- •2.2. Применение методов генетической инженерии для улучшения аминокислотного состава запасных белков растений
- •2.4. Устойчивость растений к фитопатогенам
- •2.5. Устойчивость растений к гербицидам
- •2.6. Устойчивость растений к насекомым
2. Генная инженерия растений.
Генно-инженерные методы, в частности технология рекомбинантных ДНК, позволяют создавать новые генотипы и, следовательно, новые формы растений гораздо быстрее, чем классические методы селекции. Кроме того, появляется возможность целенаправленного изменения генотипа — трансформации — благодаря введению определенных генов.
Проблемы выращивания сельскохозяйственных растений связаны с перспективой ввода в них генов устойчивости к стрессовым факторам, фитопатогенам, гербицидам и пестицидам, генов скороспелости, а также с расширением круга культурных растений, способных к симбиотической фиксации азота и т.д.
Генетическая трансформация заключается главным образом в переносе чужеродных или модифицированных генов в эукариотические клетки.
Получение растений с новыми свойствами из трансформированных клеток (регенерация) возможно благодаря их свойству тотипотентности, т. е. способности развиваться в целое растение.
Однако возможности генной инженерии растений ограничиваются рядом причин. Во-первых, геном растений изучен хуже, чем геном млекопитающих. Это значит, что определение и выделение искомых генов — задача очень трудная. Во-вторых, не для всех растений удается подобрать условия регенерации. Стабильно получают растения-регенеранты из протопластов картофеля, люцерны, томатов, моркови, табака, капусты и др. Регенерацию злаков из их клеток пока не всегда удается воспроизвести. Наконец, одна из главных лимитирующих причин — размер гетерологичной ДНК (не более 35 кб для агробактериальной и немного больше для баллистической трансформации), которую можно было бы эффективно вводить в геном растения.
2.1. Получение трансгенных растений
Перенос генов в растительные клетки, так же как в клетки животных, и их встраивание в геном растений (трансформация) осуществляются главным образом благодаря специфическим структурам — векторам.
Векторы на основе Ti-плазмид. Некоторые виды агробактерий (Agrobacteria) могут заражать двудольные растения, вызывая образование опухолей — корончатых галлов.
Одним из самых сильных индукторов опухолей служит почвенная бактерия A. tumefaciens. Способность этой бактерии к образованию опухоли связана с большой внехромосомной плазмидой, получившей название Ti-плазмида (от англ. tumor inducing— индуцирующие опухоль). Ti-плазмиды — это естественные векторы для генов, обладающие всеми функциями, необходимыми для переноса, стабильного включения и экспрессии генетической информации в растениях.
Участок Ti-плазмиды, встречающийся в хромосомах растительных клеток, называется Т-областью в бактерии и Т-ДНК в клетках растений. Т-область включает примерно 10% Ti-плазмиды и содержит гены, отвечающие за индукцию опухоли, Важно отметить, что все гены, ответственные за перенос и интеграцию генов Т-области, находятся не в ней самой, а рядом — в области вирулентности — vir-области (рис. 5.17).
Т-область
Недостаток этих плазмид состоит в том, что некоторые гены, находящиеся в Т-ДНК, заставляют расти клетки растений независимо от гормонов, вносимых в питательную среду, на которой культивируются данные клетки. В связи с этим очень трудно регенерировать нормальное растение из клеток, содержащих полную последовательность Т-ДНК.
Другой недостаток — большие размеры Ti-плазмиды, из-за которых затруднены какие-либо манипуляции с ней, поэтому вставить ген в плазмиду традиционными методами невозможно.
Ri- плазмиды. Существуют и другие бактерии (A. rhizogenes), вызывающие усиленное образование корешков при заражении растений. За этот процесс ответственны содержащиеся в них так называемые Ri-плазмиды (от англ. root inducing — индуцирующий корни). Ri-плазмиды выгодно отличаются от Ti-плазмид тем, что они служат естественными безвредными векторами, так как трансформированные с их помощью растительные клетки сохраняют способность к морфогенезу и к регенерации здоровых растений. В связи с этим Ri-плазмиды в данный момент рассматриваются как более перспективные векторы.
Векторы на основе ДНК-содержащих вирусов растений.
Вирусы можно рассматривать как разновидности чужеродной нуклеиновой кислоты, которые реплицируются и экспрессируются в клетках растений. Подавляющее большинство фитовирусов в качестве носителя генетической информации содержат РНК. Только 1 — 2 % вирусов, инфицирующих растения, относятся к ДНК-содержащим. Именно эти вирусы удобны для использования в технологии рекомбинантных ДНК, а также в качестве векторов.
Вирусные векторные системы имеют еще ряд преимуществ:
1-малый размер генома (возможность легкой манипуляции вирусной ДНК)
2- сильные промоторы, обеспечивающие эффективную экспрессию чужеродных генов.
Однако вирусы в качестве векторов обладают и недостатками:
1- имеют небольшую емкость, патогенны и неспособны встраиваться в хромосомы хозяина. Следовательно, часть вирусного генома, ответственная за упаковку в вирусные частицы, может быть удалена и замещена дополнительной чужеродной ДНК.
2- Другой недостаток — отсутствие способности встраиваться в геном растительной клетки — удается обойти (по крайней мере для ВМЦК) благодаря специальному методическому приему — агроинфекции.
Методы прямого переноса генов в растение. Эти методы возникли благодаря появлению специфического объекта — изолированных протопластов, т. е. клеток, лишенных целлюлозной стенки.
Методы прямого переноса генов довольно многочисленны:
Трансформация растительных протопластов. Осуществляется благодаря комбинации методик кальциевой преципитации ДНК (CaCl2 + ПЭГ) и слияния протопластов. Для трансформации может быть исполь зован практически любой ДНК-вектор. Культуру протопластов на начальной стадии ее роста заража ют агробактериями, которые используют в качестве векторов.
Микроинъекции ДНК. Аналогичен методу микроинъекций животных клеток. Этот метод можно рассматривать как наиболее универсальный. Эффективность трансформации растительных кле-
ток — 10 —20 % независимо от типа вектора. Трансформация
не видоспецифична, возможен перенос генов в любое растение.
Электропорация. Метод основан на повышении проницаемо сти биомембран за счет действия импульсов высокого напряже ния. В результате молекулы ДНК проникают в клетки через поры в клеточной мембране.
Упаковка в липосомы. Это один из методов, позволяющих защитить экзогенный генетический материал от разрушения нук- леазами растительной клетки. Липосомы — сферические тельца, оболочки которых образованы фосфолипидами.
