- •Питание бактериальной клетки в разных физиологических группах
- •Классификационные критерии.
- •Коньюгация у бактерий, механизм, использование.
- •3. Определение чувствительности бактерий к антибиотикам.
- •Хим.Состав и строение клет.Стенки у бактерий. Механизм окраски по Грамму.
- •Цвет, грамотрицательные – в розовый.
- •Методы выделения мутантов устойчивых к антибиотикам.
- •Анаэробное дыхание.
- •Взаимотношения микро и макроорганизмов.
- •Питательные среды в микробиологии.
- •Пропионовокислое брожение.
- •Плазмиды бактериальных клеток. Природа, виды и использование.
- •Цвет, грамотрицательные – в розовый.
- •Актиномицеты.
- •Чистые культуры бактерий и методы их выделения.
- •Биосинтез аминокислот
- •Донорские и реципиентные бактерии.
- •Культивирование аэробных организмов.
- •Брожение смешанного типа.
- •Бактериальные токсины. Примеры.
- •Методы определения подвижности. Окраска жгутиков.
- •Методы количественного учёта микроорганизмов.
- •2. Строго определенный объем исследуемого материала пропускают через мембранный фильтр, создавая с помощью насоса вакуум. 3. Фильтр, с осевшими клетками микроорганизмов, снимают сте-
- •История развития микробиологии. В рб.
- •Нуклеоид. Репликация днк.
- •2.Запасные вещества – полифосфаты, полисахариды, жиры, сера. Эти вещества накапливаются, если в питательной среде находятся соответствующие исходные соединения, но вместе с тем рост бактерий ог-
- •Миксобакьерии и цитофаги
- •Техники окрашивания бактерий. Принцип отбора.
- •Аэробное дыхание. Синтез атф. Цепи.
- •Спорообразующие бактерии.
- •Изучение выживаемости бактерий под действием уф.
- •Изменчивость. Доказательство мутационной природы.
- •Патогены растений. Бактериозы. Механизмы защиты.
- •Утилизация веществ микроорганизмами.
- •Утилизация органических азотсодержащих веществ
- •Рост клеток и популяций, основные параметры роста.
- •Простые и сложные методы окрашивания. Примеры.
- •Закономерности роста чистых культур микроорганизмов.
- •Мутации у бактерий. Мутагены.
- •Определение капсул у бактерий.
- •Регуляция биохимической активности.
- •Антибиотики. Природа действия. Примеры.
- •Типы микроскопии и использование.
- •Способы генетического обмена у бактерий.
- •Хемолитотрофы
- •Молочнокислое брожение. Представители.
- •Репарация повреждений днк.
- •Получение накопительных культур.
- •25 °С и постоянном освещении от 500 до 3000 лк.
- •Оперонный принцип организации генов у бактерий.
- •Микоплазмы.
- •Принципы видовой идентификации.
- •Органоиды движения. Типы движения.
- •Псевдомонады.
- •Распространение в природе. Использование человеком.
- •Генетическая инженерия. Клонирование.
- •Определение ферментативной активности.
- •Утилизация органических азотсодержащих веществ
- •Факторы физической природы.
- •Бактериофаги.
- •Определение кол-ва клеток с помощью микроскопа.
- •2. Строго определенный объем исследуемого материала пропускают через мембранный фильтр, создавая с помощью насоса вакуум. 3. Фильтр, с осевшими клетками микроорганизмов, снимают сте-
- •Бактериальная трансдукция.
- •Патогены высших животных.
- •Анаэробное дыхание. Основные виды.
- •Явления рестрикции и модификации.
- •Выявление резервных веществ.
- •Фототрофные бактерии. Фотосинтетический аппарат. Примеры.
- •Механизм трансформации.
- •Выявление эндоспор.
- •Типы трансдукции.
- •Спирохеты.
- •Хранение культур.
Определение кол-ва клеток с помощью микроскопа.
Количеству клеток в единице объема - титр клеток (или фаговых частиц).Чтобы определить общее количество микроорганизмов в различных материалах, применяют методы прямого подсчета клеток под микроскопом (в специальных счетных камерах, в фиксированных мазках, намембранных фильтрах).
Подсчет клеток в окрашенных препаратах (метод Виноградского–Брида)Преимущество: фиксированные окрашенные препараты хорошо сохраняются.Техника: а) на хорошо обезжиренном предметном стекле маркером рисуют прямоугольник строго известной площади (2, 4 или 6 см2), б) на стекло в прямоугольник микропипеткой (или автоматической
пипеткой) наносят определенный объем суспензии клеток (0,01; 0,02 или 0,03 мл), в) суспензию равномерно распределяют петлей по всей площади прямоугольника, г) препарат высушивают на воздухе и фиксируют 15 мин 96 % этанолом, д) проводят окрашивание фуксином Циля 1 – 2 мин,
е
)
краситель сливают, препарат промывают
водой, последовательно
погружая стекло в 5 – 6 стаканов с
водой) и высушивают на воздухе.Количество
клеток микроорганизмов подсчитывают,
используя иммерсионный объектив, в
квадратах окулярной сетки, которую
помещают в окуляр между собирательной
и глазной линзами.Для получения
достоверных результатов клетки
микроорганизмов рекомендуется
подсчитывать не менее чем в 50 – 100 полях
зрения, а общее количество
подсчитанных клеток не должно быть
менее 600.
М – количество кл-ок в 1 мл; А – среднее число кл-к в квадрате
окулярной сетки (поле зрения); s и S – площадь квадрата окулярной
сетки (поля зрения) и приготовленного мазка в мкм2 соответственно;
V – объем нанесенной на стекло суспензии в мл; n – разведение.
2. Подсчет клеток на мембранных фильтрах
Этот метод используют для подсчета количества микроорганизмов в жидких материалах с низкой плотностью клеток. Метод основан на концентрировании клеток на поверхности фильтра в результате
фильтрации определенного объема исследуемой пробы с окрашиванием и подсчетом в микроскопе.
С помощью мембранного фильтрования могут быть подсчитаны как жизнеспособные клетки микроорганизмов, так и определено общее количество клеток. Техника: 1. Собирают прибор для фильтрования под вакуумом. Дляэтого основание стерильного фильтродержателя вставляют в стериль-
ную колбу Бунзена, с помощью стерильного пинцета помещают в фильтродержатель стерильный фильтр и закрепляют зажимом. Отводной конец колбы Бунзена соединяют с вакуумным насосом.
2. Строго определенный объем исследуемого материала пропускают через мембранный фильтр, создавая с помощью насоса вакуум. 3. Фильтр, с осевшими клетками микроорганизмов, снимают сте-
рильным пинцетом и исследую в зависимости от целей эксперимента.
Проводят окрашивание фильтра 5 % раствором эритрозина в 5 % растворе фенола. Для этого фильтр помещают нижней стороной в чашкуПетри на фильтровальную бумагу, насыщенную красителем, чашкузакрывают и оставляют на 30 – 60 мин. Фильтр отмывают от красителя, последовательно перенося его в чашки Петри с фильтровальной бумагой, насыщенной дистиллированной водой до тех пор, пока он не перестанет окрашивать влажную фильтровальную бумагу. Фильтр высушивают на воздухе и готовят препарат для микроскопирования. На предметное стекло накапывают иммерсион-
ное масло и помещают на него окрашенный мембранный фильтр таким образом, чтобы клетки микроорганизмов были сверху. На поверхность фильтра наносят еще каплю иммерсионного масла и по-
к
рывают
фильтр покровным стеклом.где М –
количество клеток в 1 мл; а – среднее
число клеток в квадрате окулярной сетки
(поле зрения); s и F – площадь
квадрата окулярнойсетки (поля зрения)
и мембранного фильтра в мм2, соответственно;V
– объем профильтрованной суспензии
в мл; 106 – коэффициент пе-ревода
мм2 в мкм2.
При подсчете колоний для увеличения контрастности мембранный фильтр с колониями окрашивают. Для этого поверхность фильтра, находящегося в чашке Петри, заливают 0,01 % водным раствором окса-
лата малахитового, который через 8 – 10 с сливают. При этом способе окрашивания колонии выглядят белыми или желтыми на фоне зеленого фильтра.
Метод подсчета клеток на мембранных фильтрах с помощью люминесцентного микроскопа заключается в концентрировании бактерий из исследуемого материала на нелюминесцирующий мембранный фильтр, флюорохромировании акридиновым оранжевым и подсчете клеток в специальном (люминесцентном) микроскопе. Этот метод удобен тем, что позволяет непосредственно подсчитать как общее количество клеток, так и количество жизнеспособных клеток. При окрашивании акридиновыми красителями жизнеспособные клетки имеют зеленую, а нежизнесобные (мертвые) – красную окраску.
Билет 7.
