3. Оценка безопасности соевых продуктов, полученных с использованием генетически модифицированных соевых бобов

Статья 11 Федерального закона РФ«0 государственном регулировании в области генно-инженерной деятельности»

гласит: «Продукции (услуги), полученная с применением генно-инженерной деятельности, должна соответствовать требованиям экологической безопасности, санитарных норм, фармакопейных статей, обязательным требованиям государственных стандартов Российской Федерации».

В России регистрацию трансгенных растений коорди­нирует Межведомственная Комиссия по проблемам ген­но-инженерной деятельности, созданная Правительством РФ II 1997 г. Деятельность в области биотехнологий, в том числе создание трансгснных растений регулируют более 150 законов, постановлений и нормативных актов.

Испытания генетически измененных растений на биобезопаспость проводят специалисты из института фитопа­тологии РАСХН, Института биологической защиты растений РАСХН, Центра биоинженерии РАН. Они изуча­ют участки, встроенные в геном растения; проверяют, не сможет ли введенный ген переноситься в другие организмы и не будет ли передаваться потомкам растения; наблю­дают, не влияет ли новый ген на поражаемость растения болезнями и вредителями; выявляют, как трансгенное рас­тение влияет на почвенную микрофлору и другие составля­ющие биоценоза.

Санитарно-гигиеническую экспертизу проводят специ­алисты Института питания РАМН, Московского универси­тета прикладной биотехнологии и Центра биоинжеперии РАН. В процессе санитарно-гигиенической экспертизы они проверяют, одинаков ли химический состав исходных и трансгенных растений; не ухудшились ли биологическая ценность и усвояемость приготовленных из растения про­дуктов; может ли растение и приготовленная из него пища вызывать аллергию или иначе влиять на иммунную систе­му; не окажутся ли они токсичными, канцерогенными или мутагенными; не влияют ли на репродуктивные функции животных и человека.

Только после окончания всех этапов испытаний Гос­санэпиднадзор выдает санитарно-гигиенический серти­фикат на использование растений в производстве пищевых продуктов. Чтобы трансгенное растение произрастало на полях нашей страны, Государственная комиссия по охране и испытаниям селекционных достижений заносит его в Го­сударственный реестр селекционных достижений, допу­щенных к использованию в РФ.

В Российской Федерации прошла государственную ре­гистрацию и разрешена для использования в питании на­селения генетически модифицированная соя линии 40-3-2 («Монсанто Ко», США) и соевые продукты, полученные из генетически модифицированных источников.

Подходы к оценке безопасности и качества генетически модифицированных источников в различных странах отли­чаются по содержанию и объему проводимых исследований. Традиционные критерии и методы оценки безопасности пи­щи не могут быть полностью применимы для генетически модифицированных источников, поэтому возникла необходимость в разработке специальных подходов и критериев.

Большинство ученых считают, что требуется поэтапная оценка безопасности и качества генетически модифицированных источников. Объем проводимых исследований за­висит от особенностей продукта. Этот подход основан на принципе композиционной эквивалентности, который заключается в сравнении генетически модифицированных источников с традиционным аналогом по фенотипическим показателям, содержанию основных нутриентов, антиалиментарных и токсичных веществ и аллергенов, характерных для данного вида продовольствия или опреде­ляемых свойствами переносимых генов.

Если в результате оценки композиционной эквивалент­ности не обнаружены отличия генетически модифициро­ванных источников от традиционных аналогов, то их причисляют к первому классу безопасности и предлагают считать полностью безвредными для здоровья потребите­лей. При обнаружении отличий от традиционного аналога (второй класс безопасности) или полного несоответствия с традиционным аналогом (третий класс безопасности) оцен­ку безопасности генетически модифицированных источни­ков необходимо продолжить. На следующих этапах исследуют пищевые и токсикологические характеристики. Для оценки пищевых свойств определяют пищевую цен­ность нового продукта, его долю в рационе человека, при­емы использования в питании, биодоступность, поступление отдельных нутриентов (если ожидаемое посту­пление нутриента превышает 15% от его суточной потреб­ности), влияние на микрофлору кишечника (если генетически модифицированные источники содержат жи­вые микроорганизмы). В токсикологическую характеристи­ку входят следующие показатели: токсикокинетпка, генотоксичность, потенциальная аллергенность, потенци­альная колонизация в желудочно-кишечном тракте (в слу­чае содержания в генетически модифицированном источнике живых микроорганизмов), результаты субхрони­ческого (90 днем) токсикологического эксперимента на ла­бораторных животных и исследований на добровольцах.

Однако ряд исследователей полагает, что такая техно­логия опенки не гарантирует полную безопасность генети­чески модифицированных источников. Очевидно, систему оценки качества и безопасности генетически модифицированных источников, в основе которой лежит принцип композиционной эквивалентности, можно рекомендовать для продукции, полученной из этих источников, но не со­держащей ДНК и белка. К такой продукции относятся пи­щевые и ароматические добавки, рафинированные масла, модифицированные крахмалы, мальтодскстрин, сиропы глюкозы, декстрозы, изо-глюкозы и др.

Разделяя эту точку зрения и опираясь на многолетний отечественный опыт оценки качества и безопасности про­дукции, полученной методами биотехнологии, в частности микробиологического синтеза, Институт питания РАМН считает, что для оценки безопасности генетически модифицированных источников необходимо проводить пол­ный комплекс исследований, что подтверждено теоретически и экспериментально. Для выбора оценки ге­нетически модифицированных источников следует учитывать источники риска вследствие измененного генома, которые обусловлены характеристиками продукта, ис­пользуемого для генно-инженерных манипуляций, харак­теристикой введенного гена и незаданными эффектами в структуре и функции трансгенного организма. В связи с этим наибольшее значение имеют с точки зрения потенци­альной безопасности аллергены и токсичные вещества.

На основе международного и отечественного опыта в проведении исследований нового продовольственного сы­рья и пищевых продуктов в Российской Федерации разра­ботан и введен в действие порядок оценки безопасности и качества, а также регистрации пищевой продукции, полу­ченной из генетически модифицированных источников. В соответствии с этим порядком определены обязанности ведущих научных учреждений страны по отдельным на­правлениям экспертизы (Постановление №7 от 06.04.99 г. Главного государственного санитарного врача Российской Федерации). Этим постановлением предусмотрена меди­ко-биологическая, медико-генетическая и технологичес­кая экспертизы.

В настоящее время полный цикл исследовании по предлагаемой схеме проведен при государственной регист­рации генетически модифицированной сои линии 40-3-2 («Монсанто Ко», США). Эта соя содержит ген, определяю­щий устойчивость к глифосату.

Для получения заданного эффекта с помощью генной инженерии в геном сои введен ген, кодирующий синтез гербицидоустойчивого фермента 5- енолпнрувил-шикимат-3-фосфатсинтаза (ЕС 2.5.1.19).

Экспертиза регламентируемого в постановлении перечня документов показала, что генетически модифицированная соя линии 40-3-2 («Монсанто Ко»,США) зарегистрирована в установленном порядке в США, Канаде, Японии и странах ЕС и разрешена для использования в питании населения в этих странах без ограничений.

Содержание генетически модифицированного фермента 5-сполпирувил-шикимат-З-фосфатсинтаза и соевых бобах линии 40-3-2 достаточно низкое (от 0,019 до 0,040% от сухой массы продукта). Экспериментами in vitro и in vivo установ­лено, что этот фермент быстро разрушается при нагревании и не сохраняется в нативном состоянии в желудочно-кишеч­ном тракте млекопитающих. В экспериментах продолжительностью 1-1,5 мес. на рыбах, крысах, мышах, коровах и цыплятах-бройлерах обнаружена обычная переносимость кормов, полученных из генетически модифицированной сои линии 40-3-2; острой токсичности не выявлено.

Для комплексной оценки в Институте питания РАМН использовали соевые бобы из генетически модифицирован­ной сои линии 40-3-2, устойчивой к глифосату, и в качестве контроля - бобы из сои, полученной по традиционной тех­нологии, а также белковые концентраты из них (содержание белка 70%) фирмы АОМ (США).

Медико-генетическая оценка генетически модифициро­ванных соевых бобов проведена в Центре биоинженерин РАН (К.Г. Скрябин, Д.Б. Дорохов; 1999). Установленоено, что 99,9% семян генетически модифицированной сои содержит ген устойчивости к глифосату в соответствии с заявленной ге­нетической конструкцией. Результаты технологической оценки, проведенной в Московском университете приклад­ной биотехнологии (И.А. Рогов, Н. Г. Кроха; 1999), показали, что продукты, полученные из генетически модифицирован­ной сои (белковый концентрат и изолят) не отличаются по органолептическим и функционально-технологическим свойствам (растворимости, эмульсионной стабильности, критической концентрации гелеобразования, водосвязываюшей и жпроудерживающей способности) от аналогичных традиционных продуктов, что свидетельствует об их идентичности.

В Институте питания РАМН проведен химический анализ соевых бобов из генетически модифицированной сои линии 40-3-2 и белкового концентрата, полученного из нее. Результаты исследований согласуются с литературны­ми данными и подтверждают отсутствие разницы между аналогичными продуктами из сои, полученной по тради­ционной технологии.

Разделяя мнение о необходимости применения метода композиционной эквивалентности, необходимо, однако, рассматривать его как этап при проведении оценки качест­ва и безопасности генетически модифицированных источ­ников независимо от результатов.

Во всех случаях оценки генетически модифицирован­ных источников существует вероятность не обнаружения того, что какие-либо токсины или биологически активные вещества, которые присутствуют в новых продуктах или компонентах пищи, не опасны для здоровья человека. По­этому токсикологические исследования проводили на экс­периментальных животных по следующей схеме (таблица 1).

В приведенной схеме одним из наиболее информатив­ных критериев являются неспецифические характеристи­ки основных обменных и защитно-адаптационных клеточных механизмов. Продолжительность эксперимен­тального наблюдения за животными составляет не менее 5-6 мес., (а не 90 дней), что соответствует накопленному опыту по токсикологической экспертизе. В Институте Пи­тания РАМ Н изучали также влияние белкового концентра­та фирмы АДМ (США), полученного из генетически модифицированной сои линии 40-3-2 («Моисанто Ко», США), устойчивой к глифосату, на некоторые биохими­ческие показатели у крыс. В качестве контроля использо­вали белковый концентрат той же фирмы, полученный из традиционной сои.

Таблица 1

Продолжительность	5-6 месяцев эксперимента
Вид животных	Крысы, самцы линии Вистар
Количество экспери­ментальных групп	3
Исследуемые рационы	1-я группа - общевиварный раиион 2-я группа -общевиварный рацион с включением 1,25 г белкового концентрата из традиционной 3-я группа - общевиварный рацион с включением 1,25 г белкового концен­трата из генетически модифицирован­ной сои.
Исследуемые показатели
интегральные	Общее состояние крыс, масса тела, абсолютная и относительная масса внутренних органов
биохимические	Сыворотка крови: общий белок, глюкоза, активность орпшоспецифическмх фер­ментов. Моча: рН, относительная плот­ность, уровень креати-шша. Печень: общая и неседиментируемая активность ферментов лизосом, активность фермен­тов метаболизма ксенобиотиков
гематологические	Концентрация гемоглобина, показатель гематокрита, общее количество эритро­цитов и лейкоцитов, лейкоцитарная формула
морфологические	Макро- и микроскопические исследо­вания внутренних органов

В эксперименте использовали крыс самцов линии Вистар массой 72 -74 г. Животные были разделены на 3 группы. Крысы 1-й группы (контроль-1) получали общевиварный рацион на протяжении всего эксперимента (5 мес.), живот­ные 2-й группы (контроль-2) получали белковый концент­рат из сои, полученной по традиционной технологии, в количестве 1,25 г на крысу, что составило 20% от белка ра­циона, крысы 3-й группы (опыт) - белковый концентрат, полученный из генетически модифицированной сои, в та­ком же количестве.

Биохимические исследования сыворотки крови, печени и мочи проводили через 1 и 5 месяцев от начала экспери­мента. В сыворотке крови определяли содержание общего белка стандартным методом по биуретовой реакции с реги­страцией окрашивания при 540 нм, содержание глюкозы -глюкозооксидантным методом, активность аланинаминотрансферазы и аспартатаминотрансферазы - унифициро­ванными методами по оптимизированному оптическому тесту с использованием реактивов фирмы «Диаком-синтеко», активность щелочной фосфатазы — с использованием набора реактивов фирмы «Диаком-сиптеко» по прописи фирмы; содержание креатинина в моче - методом Яффе, концентрацию окрашенного комплекса измеряли при 505 нм. В гомогенатах печени и фракции цитозоля определяли соответственно общую и несендиментируемую активность ферментов лизосом: арилсульфатаз А и В, ß-галактозидазы и ß-глюкуронидазы. В микросомах, выделенных из печени, определяли содержание цитохромов Р-450 и b5, скорость О-деэтилирования 7-этоксикумарина, скорость N-деме­тилирования амидопирина, ацетилэстеразы, эпоксидгидролазы и уридиндифосфат глюкуронозилтрансферазы с р-нитрофенилом в качестве акцептора.

Биохимические показатели сыворотки кропи крыс при включении в их рацион концентрата из генетически моди­фицированной сои и сои, полученной по традиционной технологии, приведены в таблице 2.

Как следует из таблицы 2, содержание общего белка и глю­козы, активность аминотрансфераз и щелочной фосфатазы в сыворотке крови у животных опытной группы статистиче­ски достоверно не отличались от аналогичных показателей в контрольных группах на протяжении всего эксперимента. При изучении биохимических показателей мочи обнаруже­но, что у животных всех групп рН составлял 6,9-7,0, суточ­ный диурез, относительная плотность мочи и содержание креатинина в моче у крыс опытной группы не отличались от контрольных показателей и находились в пределах физио­логических норм для животных данного вида.

Таблица 2

Показатели	Продолжи­тельность эксперимента, мес	Группа животных (п=8)
		конт­роль- 1	конт­роль- 2	конт­роль- 3
Обший белок, г/л	1 5	64,2+1,8 82,4+3,7	65,2±2,9 75,2±4,9	64,8+3,3 76,8±2,2
Глюкоза, ммоль/л	1 5	8,6+0,3 6,8+0,3	9,0±0,5 6,9±0,4	9,7+0,5 6,9+0,3
Алан и нам и но-трансфераза, мкмоль/мин. л	1 5	54,4±5,4 56,5±6,3	66,1+6,4 61,8±3,5	56,0+4,8 65,8+6,0
Аспартатамино-трансфераза, мкмоль/мин. л	1 5	60,0±6,1 48,9+3,4	67,5±4,4 66,0±3,8	61,0±3,4 47,7±4,7
Щелочная фосфатаза, ед./л	1 5	805,5+89,3 509,9+60,3	722,2+65,3 522,2±45,7	822,5+36,5 529,5+38,3

Результаты изучения общей и неседементирующей ак­тивности ферментов лизосом и печени крыс свидетельст­вуют, что включение в рацион крыс концентрата из генетически модифицированной сои как в течение 1-го, так и к 5-му месяцу эксперимента не влияет на функцио­нальное состояние лизосомального аппарата печени крыс.

Общая активность ферментов лизосом печени крыс при включении в их рацион белкового концентрата из ге­нетически модифицированной сои и сои, полученной по традиционной технологии, приведена в таблице 3.

Неседементируемая активность ферментов лизосом печени крыс при включении в их рацион белкового кон­центрата из генетически модифицированной сои и сои, полученной по традиционной технологии, приведена в таблице 4.

При изучении активности микросомальных ферментов печени крыс (таблица 5) к концу первого месяца экспери­мента было обнаружено умеренное статистически значи­мое увеличение содержания цитохромов Р-450 и b5 и активности 7-этоксикумариндсэтилазы, в равной степени выраженное у животных, получавших с рационом концен­трат как из традиционной (коyтроль-2), так и из генетически модифицированной (опытная группа) сои. Очевидно, эти изменения связаны с включением в рацион белкового копцсптрата из сои независимо от его источника.

Таблица 3

Фермент, мкмоль/мин×г ткани	Продолжительность эксперимента, мес	Группа животных (n=6)
		конт­роль- 1	конт­роль- 2	опытная
Арилсульфатазы А и В	1 5	2,49+0,04 2,43+0,08	2,48+0,04 2,56±0,11	2,43+0,04 2,62+0,12
ß-галактозидаза	1 5	2,14+0,04 2,72+0,09	2,16+0,04 2,7910,07	2,17±0,04 2,65 ±0,04
ß-глюкуронидаза	1	2,45+0,06	2,57±0,07	2,49+0,05
	5	2,35+0,12	2,38+0,09	2,48±0,14

Таблица 4

Фермент, % от обшей концентрации	Продолжительность эксперимента, мес	Группа животных (п=6)
		конт­роль- 1	конт­роль- 2	опытная
Арилсульфатазы А и В	I 5	3,30±0,13 3,43+0,15	3,23±0,11 3,53+0,09	3,22+0,12 3,30±0,12
ß-галактозидаза	I 5	5,32+0,32 5,66+0,34	5,26+0,14 5,80±0,49	5,18+0,13 5,38+0,28
ß-глюкуронидаза	1 5	6,51+0,32 4,90+0,34	5,86+0,21 4,90+0,11	6,56±0,29 4,91+0,15

К концу эксперимента каких-либо существенных изме­нений между группами по уровню активности ферментов метаболизма ксенобиотиков и содержанию цитохромов Р-450 и b5 и микросомального белка в печени не наблюдалось.

В таблице 5 приведена также активность ферментов ме­таболизма ксенобиотиков и содержание белка в микросо­мах печени крыс при включении в их рацион концентрата из генетически модифицированной сои и сои, полученной по традиционной технологии.

Полученные результаты свидетельствуют о том, что включение в рацион крыс белкового концентрата из тради­ционной или генетически модифицированной сои на протяжении 5 месяцев не влияет на биохимические показате­ли сыворотки крови и мочи крыс, не вызывает каких-либо изменений активности ферментов I и II фазы метаболизма ксенобиотиков, локализованных в мембранах эпдоплазматической сети, не влияет на активность маркерных фер­ментов лизосом и не приводит к изменениям стабильности мембран лизосом.

Таблица 5

Показатель	Продолжи тельность эксперимента, мес	Группа животных (п=6)
		контроль- 1	контроль- 2	опыт
Цитохром Р-450	1	0,50+0,07	0,72+0,061	0,71+0,02*
нмоль/мг	5	0,60±0,08	0,58+0,05	0,61+0,03
Цитохром b5,	I	0,48+0,04	0,66±0,05*	0,66+0,02*
нмоль/мг белка	5	0,59±0,05	0,56+0,09	0,67±0,07
0-деэтилирование	1	2,0+0,46	3,19+0,52*	3,52±0,25*
7-этоксикумарина, нмоль/мин×мг белка	5	1,68±0,23	1,42+0,15	1,33±0,23
N-деметилирование амидопирина, нмоль/мин×мг белка	1	10,37+0,21	10,45±0,44	10,1310,38
	5	10,12+0,29	10,57+0,37	11,13+0,18
Ацетилэстераза, мкмоль/мин×мг	1	7,44±0,32	7,77±0,24	7,74±0,30
	5	6,05+0,32	5,58+0,33	5,03±0,60
Эпоксидгидролаза, нмоль/мин×мг белка	I	6,00+0,14	5,46+0,11	5 54+1,40
	5	5,55±0,14	5,05±0,53	4,87±0,47
UDPГлюкуронозилтрансфераза, нмоль/мин×мг белка	1	20,8+3,3	23,1±1,5	22,4±2,2
	5	18,1±0,4	16,1±2,1	15,9±1,7
Белок, мг/г	1	14,2±0,96	16,1+0,92	15,3±0,60
	5	14,6±0,50	16,0+0,40	15,9±0,60
* разность показателей (по сравнению с уровнем в группе контроль-1) статистически значима; р<0,05.

Длительное содержание крыс на рационе с добавлени­ем концентрата из генетически модифицированной сои, устойчивой к глифосату, не сопровождается какими-либо значительными, выходящими за рамки физиологических границ, изменениями функционального состояния мембранных структур клеток печени и активности ферментных систем, участвующих в биотрансформаиии и детоксикации токсичных соединений эндо- и экзогенного проис­хождения.

Полученные данные дополняют и подтверждают резуль­таты ранее проведенных исследований по оценке безопасно­сти устойчивой к глифосату сои линии 40-3-2. Так в течение 1 мес в экспериментах на разных животных (коровах, цыплятах-бройлерах, рыбах, крысах и мышах) установлена хорошая переносимость кормов, включающих генетически модифицированную сою линии 40-3-2, не обнаружены ка­кие-либо проявления ее токсического действия. Следова­тельно, генетически модифицированная соя линии 40-3-2 идентична традиционной сое не только по составу и пище­вым свойствам, но и по безопасности для пищи.

По нашему мнению, в число основных метаболических показателей, необходимо включить активность ряда фер­ментов, позволяющих оценить общее специфическое дей­ствие генетически модифицированных источников; общую и неседиментируемую активность ферментов лизосом, от­ражающих состояние структур мембран клетки; актив­ность ферментов микросомального окисления и других ферментов метаболизма ксенобиотиков и антиоксидантной ферментной системы, определяющих функциональное состояние клеточных зашитно-адаптационных механизмов. Отсутствие достоверных изменений изученных систем мож­но рассматривать как косвенное подтверждение полной эк­вивалентности генетически модифицированной пищи и ее традиционного аналога.

Результаты токсикологических исследований на кры­сах при включении в их рацион белкового концентрата в количестве 1,25 г/сут на крысу (20% белка рациона) на протяжении 5 мес приведены в таблице 6. Токсических про­явлении не установлено.

Токсикологическая оценка в совокупности с парал­лельным изучением аллергенного, иммуномодулирующего и мутагенного действия, а также влияния на функцию воспроизнодства (включая оценку потенциальных эмбриотоксического, гонадотоксического и тератогенного эффектов) на двух поколениях животных позволила сделать вывод о безопасности белкового концентрата из генетически модифицироиаиной сои линии 40-3-2 и провести клинические испытания.

Таблица 6

Показатели		Группа животных (п~8)
		1-я	2-я	3-я
Масса тела, г		396,0+15,1	360,1 ±28,2	375,7+22,4
Абсолютная масса внутренних органов
печень, г почки, г селезенка, г сердце, г семенники, г гипофиз, мг надпочечники, мг		13,74+0,18 2,42±0,18 1,43+0,23 1,18±0,10 3,03+0,44 11,3+0,70 25,8±0,98	12,40±0,23 1,99+0,23 1,70+0,32 1,06±0,11 2,92+0,34 10,5±0,50 28,0± 1,20	13,50±0,62 2,37+0,20 1,67±0,30 1,21 ±0,21 3,18+0,41 10,8±0,65 28,5+1,00
Относительная масса внутренних органов
печень почки селезенка сердце семенники гипофиз надпочечники		2,78+0,23 0,48±0,09 0,35±0,13 0,30±0,10 0,77+0,22 2,6 ±0,44 6,5±0,89	3,20+0,32 0,60+0,08 0,44+0,11 0,33±0,09 0,78+0,17 3,2±0,50 8,2+0,97	3,60±0,45 0,54±0,08 0,45+0,12 0,32±0,08 0,75 ±0,16 3,0±0,43 7,1 +0,98
Гематологические показатели концентрация
гемоглобина, г/л гематокрит, об. % обшее количество эритроцитов, • 10/л общее количество лейкоцитов, • 10/л		160,9±10,5 49,2+0,38 5,12+0,17 14,7+0,99	156,4±8,9 48,8±0,38 5,55±0,23 12,4±1,64	152,5±7,7 49,2±0,57 5,80±0,34 12,1±1,02
Морфологические исследования	При макро- и микроскопическом ис­следовании внутренних органон не об­наружено патологических изменении, которые можно было бы связать с включением в рацион крыс белконого концентрата из генетически модифи­цированной сои.
Примечание. Совместные исследования с И. А. Кирнатовской, А.Б.Леницкой

В наблюдениях на добровольцах, употреблявших про­дукты из генетически модифицированной сои, не обнаруже­но непереносимости, аллергических реакций, отклонений от нормы клинико-биохимических показателей.

Всесторонний анализ полученных данных позволил предложить устойчивую к глифосату генетически моди­фицированную сою линии 40-3-2 («Монсанто Ко», США) к государственной регистрации на территории Российской Федерации в установленном порядке, а методические под­ходы, апробированные в полном объеме при оценке каче­ства и безопасности этой культуры, - в качестве основы для дальнейших исследований в рамках государственной регистрации.

Мииздрав РФ письмом от 22.05.2000 г. № 2510/5752-32 установил новый порядок маркировки потребительской упаковки пищевых продуктов, полученных на основе гене­тически модифицированных источников.

Согласно этому письму пищевая продукция, получен­ная из генетически модифицированных источников, мар­кируется посредством нанесения на потребительскую упаковку товара (этикетку, лист-вкладыш, ярлык, инст­рукцию по применению) соответствующей информации.

Применение трансгенных растений - решение следую­щих проблем, стоящих перед человечеством. Многим жите­лям Земли не хватает продовольствия. Часть урожая погибает из-за болезней, вызванных патогенными грибами, вирусами, бактериями, а также из-за сорняков и насекомых - вредителей. Питание людей не всегда полноценно. В пи­ще у населения развивающихся стран мало белка, вследст­вие чего замедляется физическое и умственное развитие. В развитых странах в пище наблюдается недостаток витами­нов и ненасыщенных жирных кислот, микроэлементов, растительных волокон. Для защиты культурных растений от сорняков, болезней и насекомых-вредителей применяют пестициды. Их производство и использование наносят вред здоровью рабочих и фермеров; загрязняются почва и иода, погибают полезные насекомые и животные. Населению Земли нужно все больше растительных волокон для изго­товления одежды и тканей и для других нужд. Растения, ус­тойчивые к болезням, дают богатый урожай, снижается стоимость продукции, требуется меньше фунгицидов. Выращивание растений, устойчивых к усовершенствованным гербицидам, позволит вносить эти химикаты в меньшем ко­личестве, сократить численность рабочих, подвергающихся их воздействию. Усовершенствованные гербициды быстрее разлагаются в почве и наносят меньший вред окружающей среде. Выращивание растений, устойчивых к насекомым – вредителям, позволит отказаться от использования инсектицидов, вредных для людей и окружающей среды.

Растения с улучшенными пищевыми и технологичес­кими свойствами позволят создать более полноценную и сбалансированную пищу. Новые растения будут содержать больше витаминов, незаменимых аминокислот, ненасы­щенных жирных кислот и других полезных веществ. Инже­неры-генетики смогут уменьшить выработку и содержание естественных токсинов и других нежелательных веществ в растениях. Овощи и фрукты замедленного созревания можно будет с меньшими потерями перевозить на дальние расстояния. Растения-вакцины помогут предотвращать болезни. С помощью растений можно будет производить лекарства.