- •Практическое занятие № 1. Организация работы паразитологической лаборатории. Техника безопасности.
- •I. План.
- •II. Самостоятельная работа.
- •Практическое занятие № 2 Лабораторная диагностика возбудителей амебиаза
- •I. План
- •II. Самостоятельная работа Задание №1.Изучите строение дизентерийной амебы по атласу, компьютерным слайдам. Заполните таблицу.
- •Практическое занятие № 3. «Лабораторная диагностика возбудителей балантидиаза»
- •Задание № 2Изучите жизненный цикл развития дизентерийной амебы у больного человека по компьютерному атласу, слайдам, таблицам. Запишите в дневник.
- •Задание № 4.Изучите правила сбора и доставки материала в паразитологическую лабораторию для выделения возбудителей амебиаза.. Запишите в дневник.
- •Задание № 5. Изучите способы консервации исследуемого материала.
- •Задание № 1. Изучите строение балантидия по атласу, компьютерным слайдам. Заполните таблицу.
- •Задание № 2. Изучите жизненный цикл развития балантидия у больного человека по компьютерному атласу, слайдам, таблицам. Запишите в дневник.
- •Практическое занятие № 4. «Лабораторная диагностика возбудителей лямблиоза»
- •Задание № 1. Изучите строение лямблий по атласу, компьютерным слайдам. Заполните таблицу.
- •Подготовьте рабочее место, микроскопы и экипируйтесь согласно инструкции по тб в паразитологической лаборатории Задание № 4.Приготовьте нативные мазки кала.
- •Практическое занятие №5. Лабораторная диагностика возбудителей трихомоноза
- •Практическое занятие № 6 Лабораторная диагностика возбудителей лейшманиоза, трипаносомоза
- •Задание № 1. Изучите строение лейшманий, трипаносом по атласу, компьютерным слайдам. Заполните таблицу.
- •Задание № 7.Изучите метод взятия инфильтрата из язв кожи для выделений лейшманий.
- •Практическое занятие № 7 Лабораторная диагностика возбудителей малярии
- •Практическое занятие №8 Лабораторная диагностика возбудителей токсоплазмоза
- •I. План.
- •Закрепить практические навыки по технике паразитологических исследований.
- •II. Самостоятельная работа
- •Задание № 3. Изучите правила сбора и доставки материала в паразитологическую лабораторию для выделения возбудителей токсоплазмоза. Запишите в дневник.
- •Практическое занятие №9 Лабораторная диагностика возбудителей кокцидиоза, саркоцистоза, пневмоцистоза
- •1. Жизненный цикл кокцидии:
- •2. Жизненный цикл саркоцисты:
- •3. Жизненный цикл пневмоцисты:
- •Практическое занятие №10. «Лабораторная диагностика возбудителей описторхоза, клонорхоза».
- •6. Химические консерванты для консервации и хранения взрослых гельминтов или их фрагментов:
- •Подготовьте рабочее место, микроскопы и экипируйтесь согласно инструкции по тб в паразитологической лаборатории
- •Задание № 6.Приготовьте нативные мазки из фекалий с 50%-ным водным р-ром глицерина. Задание № 7.Приготовьте нативные мазки из желчи.
- •Поместите отработанные стекла в дез. Раствор для обеззараживания. Обработайте микроскопы 70% спиртом. Уберите рабочее место. Обработайте руки согласно инструкции.
- •Практическое занятие №10. «Лабораторная диагностика возбудителей дикроцелиоза, фасциолеза».
- •1. Жизненный цикл дикроцелия:
- •2. Жизненный цикл фасциолы:
- •Подготовьте рабочее место, микроскопы и экипируйтесь согласно инструкции по тб в паразитологической лаборатории Задание № 4.Приготовьте нативные мазки из фекалий с 50%-ным водным р-ром глицерина.
- •Поместите отработанные стекла в дез. Раствор для обеззараживания. Обработайте микроскопы 70% спиртом. Уберите рабочее место. Обработайте руки согласно инструкции.
- •Практическое занятие №12. Лабораторная диагностика возбудителей парагонимоза, метагонимоза.
- •1. Жизненный цикл парагонима:
- •2. Жизненный цикл метагонима:
- •Поместите отработанные стекла в дез. Раствор для обеззараживания. Обработайте микроскопы 70% спиртом. Уберите рабочее место. Обработайте руки согласно инструкции.
- •Практическое занятие №13. «Лабораторная диагностика возбудителей трематодозов».
- •Поместите отработанные стекла в дез. Раствор для обеззараживания. Обработайте микроскопы 70% спиртом. Уберите рабочее место. Обработайте руки согласно инструкции.
- •Практическое занятие №14 «Лабораторная диагностика возбудителей шистосомоза».
- •Подготовьте рабочее место, микроскопы и экипируйтесь согласно инструкции по тб в паразитологической лаборатории Задание № 2.Приготовьте нативные мазки из мочи.
- •Поместите отработанные стекла в дез. Раствор для обеззараживания. Обработайте микроскопы 70% спиртом. Уберите рабочее место. Обработайте руки согласно инструкции.
- •Методические рекомендации к практическому занятию №15. Тема: «Лабораторная диагностика возбудителей дифиллоботриоза, тениаринхоза».
- •I. План.
- •3. Закрепить практические навыки по технике паразитологических исследований.
- •11. Самостоятельная работа
- •Класс Цестоды
- •Широкий лентец.
- •Бычий цепень
- •Подготовьте рабочее место, микроскопы и экипируйтесь согласно инструкции по тб в паразитологической лаборатории
- •Практическое занятие №16 «Лабораторная диагностика возбудителей тениоза, гименолепидоза».
- •I. План.
- •2. Овладеть методикой и техникой:
- •3. Закрепить практические навыки по технике паразитологических исследований.
- •II. Самостоятельная работа
- •Подготовьте рабочее место, микроскопы и экипируйтесь согласно инструкции по тб в паразитологической лаборатории Задание № 3 .Приготовьте нативные мазки из фекалий с 50%-ным водным р-ром глицерина.
- •Практическое занятие №17 «Лабораторная диагностика возбудителей эхинококкоза, альвеококкоза».
- •Сколекс Сколекс
- •Задание № 2.Изучите жизненный цикл развития эхинококка, альвеококка по компьютерному атласу, слайдам, таблицам. Запишите в дневник.
- •Жизненный цикл развития эхинококка:
- •Жизненный цикл развития альвеококка:
- •1. Отбор проб при паразитологическом инспектировании.
- •2. Инспектирование рыб на зараженность личинками дифиллоботриид.
- •3. Диагностические признаки плероцеркоидов.
- •4. Определение жизнеспособности личинок.
- •Результат реакции:
- •При отрицательном результате комплекс не образуется, коньюгат не связывается и после промывки «выходит» из реакции, офд его не выявляет, лунка не окрашивается.
- •Практическое занятие №18 «Лабораторная диагностика возбудителей аскаридоза, трихоцефалеза».
- •I. План.
- •II. Самостоятельная работа
- •Подготовьте рабочее место, микроскопы и экипируйтесь согласно инструкции по тб в паразитологической лаборатории.
- •Практическое занятие №19 «Лабораторная диагностика возбудителей анкилостомоза, некатороза».
- •I. План.
- •2. Овладеть методикой и техникой:
- •II. Самостоятельная работа
- •Задание № 2.Изучите жизненный цикл развития анкилостомы и некатора по компьютерному атласу, слайдам, таблицам. Запишите в дневник.
- •Подготовьте рабочее место, микроскопы и экипируйтесь согласно инструкции по тб в паразитологической лаборатории.
- •Практическое занятие № 20 «Лабораторная диагностика возбудителей стронгилоидоза».
- •I. План.
- •4. Закрепить практические навыки по технике паразитологических исследований.
- •II. Самостоятельная работа
- •Задание № 2.Изучите жизненный цикл развития стронгилоида по компьютерному атласу, слайдам, таблицам. Запишите в дневник.
- •Практическое занятие №21 «Количественные методы оценки интенсивности инвазии геогельминтами».
- •I. План.
- •1. Закрепить практические навыки по технике паразитологических исследований.
- •II. Самостоятельная работа
- •Задание № 2.
- •Метод Столла. 2.Метод Красильникова 3. Метод Подлесного и Волковой.
- •4.Метод Гуджабидзе.
- •Переваренное Непереваренное Споры Споры
- •Алгоритм работы:
- •1. Закрепить практические навыки по технике паразитологических исследований.
- •II. Самостоятельная работа
- •Задание № 2.
- •Измерение яйца гельминта с помощью окуляр-микрометра.
- •Практическое занятие №22 Определение размеров яиц (овометрия) и их жизнеспособности.
- •I. План.
- •Практическое занятие №23 Исследование объектов окружающей среды.
- •I. План.
- •2. Закрепить практические навыки по технике паразитологических исследований.
- •II. Самостоятельная работа.
- •1. Отбор проб
- •2. Хранение и доставка проб для исследования.
- •Практическое занятие №24 Лабораторная диагностика возбудителей трихинеллеза, филяриозов.
- •Задание № 1.Изучите жизненный цикл развития трихинелл, филярий по компьютерному атласу, слайдам, таблицам. Запишите в дневник.
- •1. Жизненный цикл развития трихинелл:
- •2. Жизненный цикл развития филярий:
- •Задание № 3.Изучите метод концентрации на обнаружение микрофилярий. Запишите в дневник.
- •Практическое занятие №25 «Лабораторная диагностика возбудителей энтеробиоза».
- •Задание № 2. Изучите жизненный цикл развития острицы по компьютерному атласу, слайдам, таблицам. Запишите в дневник.
- •Цикл- Задание № 3.Изучите соскоб с перианальных складок тампоном, шпателем по методу Торгушина для выявления яиц гельминтов.
- •Практическое занятие №26 «Методы обнаружения блуждающих личинок в организме человека - возбудители токсокароза, анизакиоза, цистицеркоза, ценуроза, спарганоза».
- •I. План.
- •3. Закрепить практические навыки по технике паразитологических исследований.
- •II. Самостоятельная работа.
- •Практическое занятие №27 «Методы обнаружения клещей. Чесоточный клещ, железница угревая. Метод соскоба».
- •I. План.
- •1. Закрепить практические навыки по технике паразитологических исследований.
- •II. Самостоятельная работа.
- •Задание № 2.Изучите строение ротового аппарата самки иксодового клеща по компьютерному атласу, слайдам, микропрепаратам, таблицам. Зарисуйте в дневник и подпишите.
- •Алгоритм работы:
- •Метод извлечения клеща иглой.
- •Метод тонких срезов.
- •Метод соскоба патологического материала.
- •Метод послойного соскоба (глубокого соскоба кожи) по Соловьеву.
- •Метод щелочного препарирования кожи.
- •Метод исследования с молочной кислотой.
- •Алгоритм работы:
- •Практическое занятие №28 «Методы сбора, учета и обнаружения клещей. Флажок, волокуша, веретено».
- •I. План.
- •1. Закрепить практические навыки по технике паразитологических исследований.
- •II. Самостоятельная работа.
- •Задание № 3.Изучите строение клеща-железницы по компьютерному атласу, слайдам, микропрепаратам, таблицам. Зарисуйте в дневник и подпишите.
- •Задание № 4.Изучите методы сбора и учета клещей. Запишите в дневник.
- •Практическое занятие №29 «Методы сбора и учета комаров, мух, москитов».
- •I. План.
- •1. Закрепить практические навыки по технике паразитологических исследований.
- •2. Овладеть методикой и техникой:
- •II. Самостоятельная работа.
- •Задание № 4.Изучите алгоритмы сбора и учета комаров, мух, москитов. Запишите в дневник.
- •Практическое занятие №30 «Насекомые: вши, блохи, клопы, тараканы Методы борьбы с бытовыми паразитами».
Алгоритм работы:
При любом методе предварительно кожу пациента в области очага обрабатывают 70о этанолом.
Метод извлечения клеща иглой.
Под контролем лупой иглой вскрыть слепой конец чесоточного хода на месте буроватого точечного возвышения.
Острие иглы продвинуть по направлению чесоточного хода, пытаясь при этом вывести наружу и извлечь клеща, который своими присосками прикрепляется к игле.
Клеща перенести на предметное стекло в каплю 20 % р-ра гидроксида натрия, накрыть покровным стеклом и через 5 минут исследовать под микроскопом при сухом объективе 8 или 40, окуляр 7 или 10.
Метод тонких срезов.
Острым лезвием или скальпилем срезать участок рогового слоя эпидермиса с чесоточным ходом или пузырьком.
Срез перенести на предметное стекло в каплю 20% р-ра гидроксида натрия, накрыть покровным стеклом и через 5 минут исследовать под микроскопом при сухом объективе 8 или 40, окуляр 7 или 10.
Метод соскоба патологического материала.
Лезвием, скальпилем или ложкой Фолькмана (глазная) соскабливают чесоточный элемент.
Содержимое переносят на предметное стекло в каплю глицерина или 20 % р-ра гидроксида натрия.
Накрывают покровным стеклом и оставляют на 10 мин.
Исследуют под микроскопом при сухом объективе 8 или 40, окуляр 7 или 10.
Метод послойного соскоба (глубокого соскоба кожи) по Соловьеву.
Глазной ложкой Фолькмана с заостренными краями поочередно с 3-4 однородных свежих элементов делают соскоб. Соскабливают легкими движениями, послойно продолжая операцию и после появления капли крови.
Материал переносят на предметное стекло в каплю 20% р-ра гидроксида натрия с глицерином в равных объемах.
Накрывают покровным стеклом, слегка прижимая и подвигая вправо и влево и через 10-20 мин. исследуют под микроскопом при сухом объективе 8 или 40, окуляр 7 или 10.
Метод щелочного препарирования кожи.
10% р-р гидроксида натрия (калия) наносят на чесоточные высыпания на коже на 2 мин.
Мацерированный эпидермис соскабливают скальпелем, переносят на предметное стекло в каплю воды и исследуют под микроскопом при сухом объективе 8 или 40, окуляр 7 или 10.
Метод исследования с молочной кислотой.
Каплю молочной кислоты наносят на чесоточный ход, пузырек, папулу, корочку на 5 минут.
Разрыхленный эпидермис соскабливают острой глазной ложкой Фолькмана до появления крови с захватом участка на границе со здоровой кожей.
Материал переносят на предметное стекло в каплю молочной кислоты, накрывают покровным стеклом исследуют под микроскопом при сухом объективе 8 или 40, окуляр 7 или 10.
Задание № 4.Изучите метод соскоба кожи Кешелевой для обнаружения клещей-железниц. Запишите в дневник.
Алгоритм работы:
Вату смочить очищенным керосином и наложить тонким слоем на участок кожи, где предполагается наличие клещей (на высыпные элементы).
Через 3-5 мин. снять вату и ложкой Фолькмана произвести соскабливание обследуемого участка кожи и высыпных элементов.
Материал перенести на предметное стекло, добавить несколько капель керосина для просветления.
Через 2-3 мин. предметное стекло с препаратом микроскопировать при сухом объективе 8 или 40, окуляр 7 или 10.
Домашнее задание:
Учебник «Медицинская паразитология» Д.Е.Генис стр. _____________
Замечания преподавателя_____________________
Подпись преподавателя ___________________
