- •Задание 2. Гель-хроматография на колонке сефадекса g-75
- •Практические указания:
- •Задание 4. Электрофорез белков в полиакриламидном геле в присутствии ддс-Na
- •Практические указания:
- •Сборка сэндвич-кассеты для заливки геля.
- •Формирование пааг (размер геля 8 х 7,3 см):
- •3. Сборка электрофоретического модуля:
- •4. Нанесение проб:
- •5. Подключение электрофоретической камеры к источнику питания и проведение электрофореза:
Задание 4. Электрофорез белков в полиакриламидном геле в присутствии ддс-Na
Принцип метода: Диск-электрофорез представляет собой метод разделения, в котором используется неоднородная («прерывистая») разделяющая система с полиакриламидным гелем в качестве носителя. При диск-электрофорезе применяют пары буферов разного состава и с разными значениями рН, а носитель состоит из отдельных слоев геля, отличающихся друг от друга по размерам пор. Благодаря этому разделяемые вещества концентрируются сначала в очень узкой стартовой зоне в полосе крупнопористого геля, что имеет решающее значение для четкого разделения в мелкопористом геле по величине, форме и заряду молекул. Таким образом, высокая разрешающая способность диск-электрофореза базируется на двух физических явлениях: эффекте концентрирования и эффекте молекулярного сита. Диск-электрофорез в ПААГ с ДДС-Na позволяет фракционировать белки в зависимости от значений только одного параметра – их молекулярной массы. Сравнивая ЭФ-подвижность полипептидов образца с подвижностью белков-маркеров с известной молекулярной массой можно определить молекулярную массу анализируемых полипептидов. С этой целью строят график зависимости десятичного логарифма молекулярной массы от относительной электрофоретической подвижности Rf для белков маркеров. Определив теперь Rf интересующего нас полипептида, на графике можно найти для него величину lgM и подсчитать молекулярную массу.
Практические указания:
С помощью диск-электрофореза в ПААГ в присутствии ДДС-Na по методу Лэммли (Laemmli, 1970) получить электрофоретический спектр анализируемых проб, содержащих хромосомальные белки (гистоны и негистоновые белки), охарактеризовать их в сравнении с ЭФ-спектром белков-маркеров с известными молекулярными весами.
Необходимое оборудование:
Камера Mini-protean®3 cell (фирма Bio-Rad)
Источник питания PowerPac Basic или PowerPac HC, фирмы «Bio-Rad»
Шейкер – UltraRocker Rocking Platform фирмы Bio-Rad
Система для визуализации и регистрации результатов электрофореза – система гель-документирования высокого разрешения ChemiDoc XRS фирмы «Bio-Rad»
Шприц «Гамильтон» для нанесения проб или механический дозатор (0,2 – 10 мкл) со сменными пластмассовыми наконечниками для нанесения проб на ПААГ.
Необходимые реактивы:
1) Раствор для приготовления разделяющего геля: 15%-ный акриламид – 0,4%-ный N,N′-метиленбисакриламид на буфере 0,1%-ный ДДС-Na – 0,375 М трис-HCl, рН 8,8. Непосредственно перед формированием геля к этому раствору добавляют ТЕМЕД и персульфат аммония (ПСА) до конечной концентрации 0,025%.
2) Раствор для приготовления концентрирующего геля: 3%-ный акриламид – 0,16%-ный N,N′-метиленбисакриламид на буфере 0,1%-ный ДДС-Na – 0,125 М трис-HCl, рН 6,8. Непосредственно перед формированием геля к этому раствору добавляют ТЕМЕД и ПСА до конечной концентрации 0,05%.
3) Электродный буфер: 0,1%-ный ДДС-Na – 0,192 М глицин – 0,025 М трис, рН 8,3.
4) Раствор для приготовления пробы: Перед электрофорезом к каждой пробе добавляют равный объем раствора для проб: 4%-ный ДДС-Na – 10%-ный 2-β-меркаптоэтанол – 0,25 М трис-HCl, рН 6,8. Смесь инкубируют на кипящей водяной бане в течение 1,5-2 мин, охлаждают и уплотняют кристаллической сахарозой до конечной концентрации 9%-ов. Кроме того, к пробе добавляют лидирующей краситель бромфеноловый синий до конечной концентрации 0,01%.
5) Растворы 10%-ного ТЕМЕД и 10%-ного ПСА (!свежеприготовленный)
6) Раствор для фиксации полиакриламидного геля – 50%-ный этанол
7) Раствор для окрашивания белков в ПААГ – 0,125%-ный Кумасси G-250 на 40%-ном этаноле
8) Раствор для отмывки и хранения геля – 7%-ная уксусная кислота
Ход работы:
