Транспорт в митохондрии и пластиды
Митохондрии и пластиды имеют собственную ДНК и самостоятельно синтезируют некоторые белки. Однако многие из основных белков митохондрий и пластид синтезируются в цитозоле. Белки проникающие в митохондрии должны нести сигнал, определяющий локализацию - внутрення или наружная мембрана, или матрикс. Белки преднозначенные для матрикса несут сигнал на N-конце, который узнается рецепторами на внешней мембране. Рецептор связан с комплексом переноса белка, который разворачивает белок и переносит его через мембрану. После переноса белка сигнальная последовательность отрезается и белок снова сворачивается. Белки шапероны связываются с вновь синтезированным белком предотвращая его сворачивание. Шаперонины связываются с белком после его транспортировки к месту доставки и способствуют правильному сворачиванию. В ответ на различные стрессовые воздействия (например повышение температуры) в клетке синтезируются шапероны называемые белками теплового шока - hsp (heat-shock proteins), которые стабилизируют клеточные белки. Hsp обнаружены во всех клеточных компартментах эукариот и у бактерий.
Везикулярный транспорт
Из
одной органеллы в другую перемещение
происходит в везикуле или на ее поверхности
в виде интегральных белков.
Донорый
компартмент –
органелла от которой отрывается мембрана
в составе везикулы, акцепторный
компартмент –
принимает везикулу.
конститутивная
секреция –
происходит постоянно и не зависит от
внешних сигналов.
регулируемая
секреция –
под ПМ происходит накопление пузырьков,
которые сливаются с ПМ при наличии
внешних сигналов – гормоны, нервы – и
повышении конц. Ca2+ до 1мкм
ретроградный
транспорт –
возвращение рецепторных белков и липидов
из АГ в Эр - восполнение мембраны
ЭР.
антероградный
транспорт –
растворимые грузовые белки двигаются
по секреторному пути ЭР. Окаймленные
везикулы - покрыты белками, кот узнают
и концентрируют специфич. м-ные белки
и отделяют м-ну пузырька, формируют
решетку и придают форму везикуле:
клатриновые, COPI, COPII:
Клатриновые
везикулы – ~0,1мкм, транспорт из АГ и
ПМ,клатрин - 3типа, 3 большие и 3 малые
субъединицы формирующие трискелетон
– собирающиеся на поверхности м-ны со
стороны цитоплазмы в пента- и гексагоны,
кот спонтанно формируют сферу. Адаптин
– связывает клатрин с м-ной и ловит
различные трансм-ные белки в том числе
грузовые рецепторы, кот. захватывают
р-римые грузовые белки, кот попадают
внутрь везикулы. Имеетя по крайней мере
4 типа адаптинов
динамин - GTP-аза,
р-римый цитоплазматический белок,
образует кольцо на отделяющейся
клатриновой везикуле – регулирует
кол-во клатрина отщепляющееся вместе
с м-ной в составе везикулы, ассоциирует
другие белки помогающие выпучить м-ну
и белки модификаторы липидов, изменяющие
локально липидный состав м-ны для
выпучивания.
После отделения везикулы
от м-ны клатрин и адипин отделяют шапероны
- ATP-азы hsp70 семейства. Ауксилин –
прикрепляется к везикуле и активирует
АТФ-азу. Т.к кайма формирующейся везикулы
сущ. дольше чем кайма отделенной –
имеется стабилизирующий механизм.
Клатриновая оболочка обеспечивает
значительную силу для изгибания м-ны,
т.к. везикулы из внутриклеточных
компартментов образуются на уже
выпученной м-не
COP-I – транспорт от
АГ и ЭР, 8субъединиц, GTP-белок – фактор
рибозилирования АДФ –ARF – транспорт
COP-II
– транспорт из АГ и ЭР, 5 субъединиц
Везикулы
мб не только сферические, часто образуются
трубчатые везикулы в которых высокое
соотношение S/V
Образование клатриновых
и COP везикул регулируется GTP-связывающими
белками, которые могут находится в
активном GTP- и неактивном GDP-состоянии
Два
класса белков обменивают GDP-GTP:
GEF-гуанин-нуклеотид-фактор обмена
активирует белки заменяя GDF?GTF, GAP- белок
активирующий GTP-азы – инактивирует
GTP-связывающие белки меняя GTP?GDP.
GTP-азы
необходимые для сборки окаймленных
везикул перед сборкой пузырьков:
мономерные GTP-связывающие белки
(GTP-азы):
ARF-белки – необх для клатриновой
и COP сборки на пов-ти м-ны АГ. Sar1 белок,
необходим для COPII сборки на на ЭР
м-не
тримерные (G белки).
GTP-азы
находятся в цитозоле в неактивном
состоянии, перед сборкой GEF встраивается
в м-ну ЭР и связывает цитозольный SarI,
кот обменивает GDF?GTP. В GTP состоянии SarI
встраивается остатком жирной к-ты в
м-ну ЭР. Ассоциирует белки об-ки и
инициирует отпочковывание везикулы.
GTP-азы попавшие в м-ну активируют
фосфолипазу D, кот преобразует фосфолипиды
в фосфотидную к-ту, что усиливает
связывание оболочных белков. Вместе
белок-белковые и белок-липидные
взаимодействия изгибают м-ну
SNARE –
белки – отвечают за слияние донорной
и акцепторной м-н, более 20, каждая на
специфич пов-ти м-ны, трансмембранные
белки на пов-ти везикулы - v-SNAR, на пов-ти
донора – t-SNAR. Взаимодействуя v- и t-SNAR
обвиваются др на друга в транс-SNAR-комплекс,
обеспечивающий слияние м-н. SNF-белок
разрушает транс-SNAR-комплексы – цитозольный
шаперон ATP-аза, использует адаптирующие
белки для связывания с комплексом-SNAR
Rab-белки
– мономерные GTP-азы, более 30, каждая
органелла имеет хотя бы один Rab на м-не
со стороны цитоплазмы, регулируют
стыковку везикул и связывание v-SNAR-ов и
t-SNAR-ов необходимых для слияния м-н. В
состоянии GDP-не активны, нах в цитозоле,
в состоянии GTP-активны и переходят на
пов-ть м-ны органеллы или везикулы. В
активном состоянии Rap связываются с
м-ной липидным якорем и собирают другие
белки участвующие в слиянии м-н
неактивный
Rab-GDP связан с GDI – GDP-диссоциирующий
ингибитор. Rab-GDP связывается с GEF-гуанин
нуклеотид меняющий фактор, связанный
с м-ной донорного компартмента – меняет
GDP на GTP. Rab-GTP связывается с м-ной
формирующейся везикулы и ассоциирует
v-SNARE, которые в составе везикулы
транспортируются к органелле и связываются
с Rab-эффекторами и t-SNARE, связанными с
м-ной акцепторного компартмента и
обеспечивают слияние м-н
белок
органелла
Rab1 ЭР и АГ
Rab2 цис-АГ
Rab3A
синаптич везикулы, секрет гранулы
Rab4
ранние эндосомы
Rab5A ПМ, клатриновые
везикулы
Rab5C ранние эндосомы
Rab6
промежуточный- и транс-АГ
Rab7 поздние
эндосомы
Rab8 секреторные везикулы
(базолатеральные)
Rab9 поздние эндосомы,
trans-АГ
Слияние м-н происходит не только
при везикулярном транспорте: слияние
спермия с яйцом, слияние миобластов во
время развития мышечной клетки.
Образование
клатринового пузырька. Диаметр
клатринового пузырька ~0,3 мкм
клатриновая везикула
Транспорт белков из аппарата Гольджи на наружную мембрану
Белки, встроившиеся в мембрану ЭПС и попавшие оттуда в составе везикул в АГ, могут перемещаться на наружную мембрану клетки. Их направление к мембране осуществляется благодаря взаимодействию везикул с микротрубочками цитоскелета и благодаря особым стыковочным белкам, которые обеспечивают слияние везикул с мембраной
Экзоцитоз и трансцитоз
Экзоцитоз есть как у эукариот, так иу прокариот. Экзоцитоз (от греч. Έξω — внешний и κύτος — клетка) у эукариот — клеточный процесс, при котором внутриклеточные везикулы (мембранные пузырьки) сливаются с наружной клеточной мембраной. При экзоцитозе содержимое секреторных везикул (экзоцитозных пузырьков) выделяется наружу, а их мембрана сливается с клеточной мембраной. Практически все макромолекулярные соединения (белки, пептидные гормоны и др.) выделяются из клеток эукариот этим способом. У прокариот везикулярный механизм экзоцитоза не встречается, у них экзоцитозом называют встраивание белков в клеточную мембрану (или в наружную мембрану у грамотрицательных бактерий), выделение белков из клетки во внешнюю среду или в периплазматическое пространство [4]. Экзоцитоз может выполнять различные задачи:
доставка на клеточную мембрану липидов, необходимого для роста клетки;
доставка на клеточную мембрану мембранных белков, таких как рецепторы или белки-транспортёры. При этом часть белка, которая была направлена внутрь секреторной везикулы, оказывается выступающей на наружной поверхности клетки;
выделение различных веществ из клетки; это могут быть, например, непереваренные остатки пищи у фаготрофных протистов, пищеварительные ферменты у животных с полостным пищеварением, белки межклеточного вещества у животных и материал клеточной стенки у растений, сигнальные молекулы (гормоны или нейромедиаторы).
У эукариот различают два типа экзоцитоза:
Кальций-независимый конститутивный экзоцитоз встречается практически во всех эукариотических клетках. Это необходимый процесс для построения внеклеточного матрикса и доставки белков на внешнюю клеточную мембрану. При этом секреторные везикулы доставляются к поверхности клетки и сливаются с наружной мембраной по мере их образования.
Кальций-зависимый неконститутивный экзоцитоз встречается, например, в химических синапсах, где служит для выделения нейромедиаторов. При этом типе экзоцитоза секреторные пузырьки накапливаются в клетке, а процесс их высвобождения запускается по определённому сигналу, опосредованному быстрым повышением концентрации ионов кальция в цитозоле клетки. В пресинаптических мембранах процесс осуществляется специальным кальций-зависимым белковым комплексом [w:[SNARE|]].
Заключение. Сложная организация эукариотических клеток требует налаженных механизмов внутриклеточного везикулярного транспорта. Новейшие исследования показали, что механизмы, лежащие в основе таких функционально важных процессов как эндо- и экзоцитоз уникальны и, сохранившись в процессе эволюции, эффективно действуют как в клетке дрожжей, так и в нейроне гиппокампа. Как эндоцитоз лиганд-рецепторного комплекса с поверхности плазматической мембраны, так и транспорт вновь синтезируемых секреторных белков из эндоплазматического ретикулума через цис-, медиал-, транс- Гольджи к поверхности плазматической мембраны осуществляются в везикулах. Транспортные везикулы формируются и отпочковываются от донорной мембраны и после осуществления раунда внутриклеточного транспорта сливаются с акцепторной мембраной. Специализированные белки цитоплазмы покрывают вновь образованные везикулы. Согласно современным представлениям, формирование транспортной везикулы на мембране внутриклеточного компартмента начинается после взаимодействия белков, переносимых везикулой, с трансмембранным рецептором. Изменение структурного состояния связанного рецептора может распознаваться цитоплазматическими белками, которые ассоциируются с мембраной и инициируют образование транспортной везикулы. Используемая литература: 1. Альбертс Б., Брей Д. и др. Молекулярная биология клетки. – М., 1994. 2. Горышина Е.Н., Чага О.СЮ. Сравнительная гистология тканей внутренней среды с основными иммунологами. – Л., 1990. 3. Заварзин А.А. Основы сравнительной гистологии. – Л., 1985. 4. Балахонов А.В. Ошибки развития. - Л., 1990. 5. Гилберт С. Биология развития: в 3-х т. – М., 1993-95. 6. Светлов П.Г. Физиология (механика) развития. - Л., 1978. т.1, 2. 7. Станек И. Эмбриология человека. – Братислава, 1977. 8. Юрина Н.А., Торбек В.Э., Румянцева Л.С. Основные этапы эмбриогенеза позвоночных животных и человека. – М., 1984.
