- •Техника посева на жидкие и плотные питательные среды
- •Метод Дригальского
- •Работа № 5. Биохимическая активность аэробов (дифференциально-диагностические признаки)
- •Биохимическая активность аэробов
- •1. Классифицировать предложенные питательные среды; результаты оформить в виде таблицы (см. Теоретическую справку)
- •Питательные среды (состав некоторых питательных сред)
- •Среды для изучения сахаролитических свойств:
- •Среды для изучения протеолитических свойств:
- •Физические методы. Методы основаны на выращивании микроорганизмов в среде без воздуха
- •Химические методы основаны на поглощении кислорода воздуха в герметически закрытом сосуде (анаэростате, эксикаторе) такими веществами, как пирогаллол или гидросульфит натрия
- •3) Биологические методы основаны на совместном выращивании анаэробов со строгими аэробами (метод Фортнера)
- •Комбинированные методы основаны на сочетании физических, химических и биологических методов создания анаэробиоза
- •4. Запишите основные принципы выделения и индикации облигатных внутриклеточных паразитов.
- •1) Куриный эмбрион
- •2) Культура тканей:
- •3) Лабораторные животные
Питательные среды (состав некоторых питательных сред)
Кровяной агар. Используют для выявления экзотоксина – гемолизина у бактерий. К расплавленному и охлажденному до 45°С МПА (2% агара) стерильно добавляют 5-10% дефибринированной стерильно взятой крови лошади, кролика или барана.
Пептонная вода. Используют для культивирования холерных вибрионов. Основной раствор пептона: пептона - 100 г, хлорида натрия -50 г, нитрата калия - 1 г, карбоната натрия - 25 г, воды дистиллированной - 1 л; рН 9,0. Стерилизуют при 120°С 20 мин. Для получения пептонной воды основной раствор разводят водой в 10 раз, доводят рН до 8,8 -8,9, стерилизуют.
Мясопептонный агар (МПА). Применяют для выращивания большинства сапрофитных бактерий. К готовому МПБ добавляют 2% агар и оставляют для набухания 30 мин. Кипятят до полного растворения агара. Стерилизуют 30 мин при 120°С.
Желточно - солевой агар (ЖСА). Среда позволяет дифференцировать стафилококки, продуцирующие лецитиназу, от стафилококков, не выделяющих данный фермент, по образованию зон помутнения с перламутровым оттенком вокруг колоний. Среда содержит повышенные концентрации хлорида натрия (8-10%), которые не препятствуют размножению стафилококков, что обеспечивает элективность среды. Готовят среду из питательного солевого агара. В расплавленный и остуженный до 45 0С агар добавляется куриный желток.
Среда 199. Используют для выращивания культур клеток. Синтетическая среда, содержащая аминокислоты, витамины, глюкозу, минеральные соли. Среду используют с добавлением 5-10% коровьей или лошадиной сыворотки.
Среды для изучения сахаролитических свойств:
Среды Гисса с углеводами. Дифференциально-диагностические среды, на которых выявляют ферментативную активнсть микроорганизмов. Под действием образующейся при расщеплении углевода кислоты индикатор изменяет окраску среды, поэтому эти среды названы «пестрый ряд». Микробы, не ферментирующие данный углевод, растут на среде, не изменяя ее. Наличие газа устанавливают по образованию пузырьков в средах с агаром или по скоплению его в «поплавке» на жидких средах.
Пептон - 10 г, хлорид натрия - 5 г, углевод - 10 г, реактив Андреде - 10 мл, вода дистиллированная до 1000 мл, рН после стерилизации 7,2-7,4.
Среда Эндо, Левина, Плоскирева. Используют как дифференциально-диагностические среды для культивирования бактерий кишечной группы. Микроорганизмы сбраживают до кислоты находящийся в этих средах молочный сахар (лактозу) и образуют окрашенные колонии - кислота изменяет цвет имеющегося в среде индикатора. Колонии микробов, не ферментирующих лактозу, бесцветны.
К 100 мл МПА (рН 7,6) при температуре 70 °С стерильно добавляют 5 мл 20% раствора лактозы и смесь 0,5 мл насыщенного раствора основного фуксина с 1,25 мл свежеприготовленного раствора сульфата натрия. Лактозоположительные колонии приобретают пигмент и металлический блеск. Лактозонегативные – непигментированные, без металлического блеска.
Среды с крахмалом определяют микроорганизмы, образующие амилазу. Об этом узнают, прибавив к культуре несколько капель раствора Люголя, - цвет среды не изменяется. Нерасщепленный крахмал дает с этим раствором синее окрашивание.
Молоко. При росте микроорганизмов, сбраживающих лактозу, свертывается.
Среда Вильсон-Блера. Для культивирования анаэробных микроорганизмов. Готовят из мясо-пептонного агара, к которому добавляют глюкозу, Na2S03, хлорид железо FeCl2. На этой среде возбудитель газовой гангрены образует почернение и разрыв агара. Рост происходит в глубине агара. При этом осуществляется восстановление Na2S03 в Na2S (сульфит натрия), который соединяясь с хлоридом железа, образует сульфат железа черного цвета. Разрыв питательной среды связан с расщеплением глюкозы до газа.
Микротест - системы (МТС). Они представляют собой полистироловые пластины с лунками, в которых содержатся стерильные дифференциально-диагностические среды. Стерилизацию МТС проводят УФ-облучением. Микротест-системы особенно удобны при массовых бактериологических исследованиях в практических лабораториях.
