- •Г. Архангельск, 2012
- •Введение
- •I. Основные понятия, определения, термины радиологии
- •II. Источники воздействия ионизирующих излучений на человека
- •III. Биологическое действие ии. Стохастические и нестохастические эффекты облучения.
- •Основные стадии в действии ионизирующих излучений на биологические системы
- •IV. Характеристика закрытых и открытых источников ионизирующих излучений
- •V. Гигиеническая регламентация облучения человека
- •Ограничение медицинского облучения
- •VI. Методы радиометрического контроля. Приборы. Диагностика радиационных поражений.
- •Примечание: * отмечены данные, полученные при обследовании пострадавших при аварии на чаэс
- •VII. Средства профилактики последствий внешнего облучения.
- •Средства, предназначенные для временного сохранения
- •Средства оказания неотложной помощи при инкорпорации радионуклидов
- •VIII. Практическая часть.
- •Радиометр - рентгенометр дп-5а
- •Поддиапазоны измерений приборов дп-5а, дп-5б, дп-5в
- •1. Ознакомиться с органами управления и порядком работы с дозиметром-радиометром дргб-01 «эко-1м
- •2. Провести измерение радиационной обстановки местности.
- •Методические указания
- •Методики измерений
Примечание: * отмечены данные, полученные при обследовании пострадавших при аварии на чаэс
Менее часто (обычно в условиях специализированного стационара) для уточнения степени тяжести ОЛБ используют подсчет числа ретикулоцитов. Считается, что уровень последних на 4 сутки после облучения в пределах от 0,3 до 0,6 % свидетельствует о легкой степени тяжести ОЛБ. Уровень ретикулоцитов от 0,1 до 0,2 % характерен для средней степени тяжести ОЛБ, а при тяжелой или крайне тяжелой степени регистрируются единичные ретикулоциты или их отсутствие.
Одним из самых надежных методов биологической дозиметрии до настоящего времени остается исследование хромосомного аппарата клеток костного мозга и лимфоцитов периферической крови. В многочисленных исследованиях показано, что уже спустя 18-20 ч после облучения в клетках костного мозга обнаруживаются структурные нарушения хромосом (главным образом, дицентрики, ацентрические фрагменты и центрические кольца), количество которых возрастает линейно в диапазоне доз 0,25-5 Гр (табл. 14).
Таблица 14
Зависимость частоты аберраций хромосом в клетках костного мозга человека от дозы облучения
Доза, Гр |
Число клеток с аберрациями, % |
1 |
20 |
2 |
50 |
3 |
65 |
4 |
85 |
5 |
100 |
Возможность оценки тяжести поражения по этому тесту сохраняется в течение 2-2,5 суток, поскольку в последующем миелокариоциты с хромосомными аберрациями быстро элиминируются. К числу недостатков метода относится его высокая трудоемкость и невозможность оценки общей тяжести поражения при неравномерном облучении.
Более доступен и весьма информативен (по опыту цитогенетической дозиметрии пострадавших при аварии на Чернобыльской АЭС) подсчет аберраций хромосом в культуре лимфоцитов периферической крови. Диагностическая ценность этого теста особенно высока в случаях относительно равномерного облучения и существенно снижается при неравномерных воздействиях с перепадом дозы более чем в 2-3 раза. Корреляция между выходом аберраций и дозой облучения сохраняется в дозовом диапазоне от 0,5 до 5 Гр в течение нескольких недель с момента облучения. В последующем нестабильные аберрации элиминируются и точность оценок дозы облучения снижается.
Разработанная в последние годы техника индивидуальной флуоресцентной гибридизации in situ (FISH) позволяет достаточно эффективно анализировать стабильные хромосомные аберрации в лимфоцитах, в частности, транслокации, зависимость выхода которых от дозы облучения (в диапазоне от 0,5 до 5 Гр) сохраняется в течение многих лет. В качестве одного из эквивалентов хромосомного анализа в настоящее время предложен так называемый “микроядерный тест” – определение частоты клеток с микроядрами и числа микроядер на клетку в фитогемагглютинин-стимулированных культурах лимфоцитов и полихроматофильных эритроцитах костного мозга.
Основные показатели, используемые в настоящее время для диагностики и оценки степени тяжести лучевых поражений, представлены в таблице 15.
Таблица 15
Основные показатели, используемые для диагностики и оценки степени тяжести лучевого поражения
Показатель |
Срок сохранения диагностической информации |
Диапазон определяемых доз, Гр |
Выраженность первичной реакции |
Первые 5-6 ч |
1-6 |
Уровень лимфоцитов в крови |
48-72 ч |
1-6 |
Уровень лейкоцитов в крови |
7-9 сут |
1-6 |
Уровень тромбоцитов в крови |
20 сут |
1-6 |
Хромосомные аберрации в клетках костного мозга |
24-56 ч |
0,5-5 |
Хромосомные аберрации в лимфоцитах: - нестабильные - стабильные |
24 ч – 3-4 нед Много лет |
0,5-5 0,5-5 |
ЭПР-спектрометрия |
Много лет |
0,1-2,0 |
Помимо описанных выше методов индикации и биодозиметрии лучевых поражений, определенное практическое значение (особенно для реконструкции поглощенной дозы в отдаленные сроки после облучения) имеет подход, основанный на исследовании радиационно-химических реакций, приводящих к образованию длительно живущих радикалов.
Свободные электроны, появляющиеся под влиянием облучения в эмали зубов, захватываются в дефектах кристаллической решетки с образованием свободных радикалов карбоната, регистрируемых методом электронно-парамагнитного резонанса (ЭПР). Эмаль зуба способна накапливать дозу проникающей радиации в течение всей жизни особи. С помощью метода ЭПР зубной эмали можно реконструировать дозу облучения в диапазоне от 0,1 до 20 Гр.
