3.3. Заключительная часть

Заключительная часть включает в себя следующие подпункты:

1. Патологоанатомические диагнозы (выводы).

2. Дополнительные исследования – гистологические, бактериологические, вирусологические, токсикологические (результаты, где проводились, номер экспертизы и дата исследования).

3. Заключение о причине гибели животного.

3.3.1. Патологоанатомические диагнозы

Патологоанатомические диагнозы представляют собой перечень обнаруженных при вскрытии прижизненных патологоанатомических изменений в виде отдельных диагнозов, которые определяются специальными патологоанатомическими терминами. Вначале необходимо описать наиболее важные изменения, которые явились главной причиной смерти животного, например: «жировая дистрофия печени», «кровоизлияние под эпикардом», «острый катаральный энтерит» и т.д.

Затем перечисляются изменения, которые способствовали развитию основного заболевания и ускорили наступление смерти. В завершение перечисляются второстепенные и сопутствующие изменения, не имеющие прямого отношения к смерти животного. Все патологоанатомические диагнозы должны соответствовать описательной части протокола и вытекать из нее.

3.3.2. Дополнительные исследования

В данном подпункте необходимо указать, какой патологический материал направляется в лабораторию, для каждого исследования: химическое – на какие яды, бактериологическое и вирусологическое – на какую инфекцию, гистологическое – написать результат исследования, номер экспертизы, дату получения ответа, название лаборатории. Образец сопроводительной карточки к патологическому материалу, направляемому на исследование в лабораторию, порядок оформления и отправки сопроводительных документов к материалу, а также правила упаковки и пересылки патологического материала смотри в «Приложении».

При взятии патологического материала необходимо соблюдать следующие правила (извлечение из Правил Главного управления ветеринарии Министерства сельского хозяйства СССР, утвержденных 24 июня 1971 г.):

♦ взятие и пересылка патологического материала для бактериологического и вирусологического исследования. Патологический материал берут стерильными инструментами в стерильную посуду. Патологический материал берут как можно раньше после смерти животного, особенно в теплое время года. При начавшемся разложении материал для исследования негоден. В лабораторию материал отправляют в неконсервированном виде. Если доставить в лабораторию в течение ближайших 24-30 часов материал невозможно, то его консервируют. Для бактериологического исследования патологический материал (органы или их части) консервируют в 30 % водном растворе химически чистого глицерина. Воду предварительно стерилизуют кипячением или автоклавированием в течение 30 минут. В качестве консерванта можно применять также стерильное вазелиновое масло. Материал заливают консервирующей жидкостью в количестве, в 4-5 раз превышающем его объем. Материал, предназначенный для вирусологических исследований, консервируют в 30-50 % растворе химически чистого глицерина на физиологическом растворе поваренной соли. Физиологический раствор предварительно стерилизуют в автоклаве при 120 ⁰С в течение 30 минут. Небольшие трупы животных (поросята, телята, ягнята), а также трупы мелких животных посылают целиком в непроницаемой таре. Трубчатые кости направляют целыми с неповрежденными концами. Предварительно их тщательно очищают от мышц и сухожилий и заворачивают в марлю или полотно, смоченные дезинфицирующей жидкостью (раствор формалина, спирта). Кости можно также посыпать поваренной солью и завернуть в марлю или полотно. Кишечник перед посылкой для бактериологического и вирусологического исследований освобождают от содержимого, а концы его перевязывают. На исследование посылают части кишечника с наиболее характерными патологическими изменениями. Помещают в банки с 30-40 % водным раствором глицерина или насыщенным водным раствором натрия хлорида (поваренной соли). Объем консервирующей жидкости должен в 5-7 раз превышать объем взятого материала. Кал для исследования отправляют в стерильных стаканах, пробирках или банках, которые закрывают пергаментной бумагой. От трупов животных кал можно послать в отрезке невскрытого кишечника, завязанного с обоих концов. В лабораторию кал должен быть доставлен не позднее 24 ч после взятия. При посылке для исследования участков кожи берут наиболее пораженные ее части размером 10 х 10 см и кладут в стерильную, герметически закрывающуюся посуду. Кровь, гной, слизь, мочу, желчь и другой жидкий патологический материал для бактериологического и вирусологического исследований посылают в запаянных пастеровских пипетках, стерильных пробирках или во флаконах, плотно закрытых стерильными резиновыми пробками. Кроме того, выделения из различных полостей, естественных отверстий и др., предназначенные для микроскопического исследования (для обнаружения в них микробов, кровепаразитов и для определения лейкоцитарной формулы), посылают в виде мазков. Предметные стекла кипятят в течение 10-15 минут в 1-2 % водном растворе соды, затем тщательно промывают чистой водой, насухо вытирают и помещают в раствор спирта и эфира, взятых в равных частях, где и хранят до употребления. Кровь берут из вены ушной раковины или края верхушки уха, у птиц – с поверхности гребня или из подкрыльцовой вены. Шерсть на месте взятия крови выстригают, кожу протирают ватными тампонами, смоченными сначала спиртом и затем эфиром. Инструменты (иглы, скальпель) должны быть стерильными. Первую каплю крови удаляют стерильной ватой (исключение делается при исследовании крови на пироплазмидозы, когда для мазка берут первую каплю крови), а следующую свободно выступившую каплю берут на предварительно подготовленное предметное стекло быстрым и легким прикосновением к капле поверхности стекла. Затем стекло быстро поворачивают вверх каплей и удерживают между пальцами левой руки в горизонтальном положении. К левому краю капли прикасаются под углом 45⁰ шлифованным краем другого предметного (или покровного) стекла. Как только капля равномерно распределится по ребру этого стекла, его проводят с равномерным ускорением по поверхности предметного стекла справа налево, не доводя до края на 0,5-1 см. Ширина мазков должна быть уже предметного стекла. Для каждого нового мазка берут свежую каплю крови. Готовые мазки крови высушивают только на воздухе. В холодное время года мазки делают в теплом помещении или на стеклах, подогретых на крышке теплого стерилизатора. Метод фиксации мазков зависит от цели исследования. Правильно приготовленные мазки крови должны быть тонкими, равномерными и достаточной длины. На высушенных мазках и отпечатках острым предметом делают надпись с указанием номера или клички животного и даты приготовления мазка. Мазки из тканей, гноя, органов и различных выделений готовят путем размазывания материала на предметном стекле стерильной палочкой или ребром другого предметного стекла до тонкого слоя. Частицы органов плотной консистенции, твердые узелки, а также вязкий материал заключают между двумя предметными стеклами и растирают. Затем стекла разъединяют, растаскивают их в противоположные стороны в горизонтальном направлении. Получаются два довольно тонких мазка. Иногда делают препараты отпечатки. Для этого вырезанный острым скальпелем кусочек органа захватывают пинцетом и свободной поверхностью кусочка делают на стекле несколько тонких отпечатков.

♦ взятие материала для патологогистологического исследования. Материал берут от свежих трупов или вынужденно убитых животных не позднее 12, а летом 2-3 часов после смерти от тех органов или тканей, где обнаружены патологические изменения, а также из главнейших паренхиматозных органов. Из разных участков патологически измененных органов (тканей) вырезают небольшие тонкие (не более 1-2 см толщиной) кусочки. Вместе с пораженными участками ткани захватывают и граничащую с ней нормальную ткань. При иссечении кусочка учитывают микроскопическое строение (структуру) того или иного органа (ткани). Так, кусочки из почки, надпочечника лимфатического узла берут с таким расчетом, чтобы попадали оба слоя – корковый и мозговой; из головного мозга – серое и белое вещество; из селезенки – белая и красная пульпа; из легкого – часть органа с бронхами и плеврой. Из сердца берут несколько кусочков: из мышцы правого и левого желудочков, правого и левого предсердий, папиллярных мышц и области клапанов. Из всех органов при иссечении захватывают и их капсулу. Из разных отделов желудочно-кишечного тракта вырезают небольшие кусочки размером 2 х 3 см и перед погружением в фиксирующую жидкость их растягивают на картон и прошивают белыми нитками. Взятый материал помещают в фиксирующую жидкость (10 % водный раствор нейтрального формалина), объем которой в 4-5 раз превышает объем взятого материала. В холодное время года во избежание промерзания при пересылке материал, фиксированный в формалине, перекладывают в 30-50 % раствор глицерина (приготовленный на 10 % растворе формалина), в 70 % спирт или в насыщенный раствор натрия хлорида. Если формалина нет, то в качестве фиксирующей жидкости используют 96 % этиловый спирт или ацетон. При применении спирта толщина кусочков не должна превышать 0,5 см. Для гистохимических исследований патологический материал можно фиксировать также в жидкости Карнуа (спирт абсолютный - 60 мл, хлороформ – 30 мл и ледяная уксусная кислота – 10 мл) или в жидкости Буэна (концентрированная пикриновая кислота – 15 мл, формалин – 5 мл, ледяная уксусная кислота – 1 мл). Фиксирующую жидкость меняют каждые сутки до тех пор, пока она не станет прозрачной. Оптимальная температура фиксации 37 ⁰С. Патологический материал фиксируют в стеклянной или, в крайнем случае, в глиняной посуде. На банку с кусочками органов и тканей наклеивают этикетку, на которой указывают номер или кличку животного и кому принадлежит, а внутрь ее опускают кусочек плотной бумаги или картона с написанным на нем простым (не химическим) карандашом номером животного. Помещать в посуду несколько объектов исследования от разных животных можно только при том условии, если каждый из них завязывают в марлю вместе с отдельной этикеткой.