- •Предисловие
- •4 Практикум по фармакогнозии
- •6 Практикум по фармакогнозии
- •Условные сокращения
- •8 Введение
- •1 0 Введение
- •Монография на лекарственное растительное сырье в PhEur.
- •1 2 Введение
- •1 4 Введение
- •Фармакогностические методы анализа
- •Общие требования к фармакогностическому анализу
- •1 6 Введение
- •1 8 Введение
- •Растворители, часто применяемые в фитохимическом анализе
- •2 2 Введение
- •Хроматографические методы фармакогностического анализа
- •2 6 Введение
- •2 8 Тема 1. Определение подлинности растительного сырья
- •Работа в лаборатории
- •Листья — Folia (гф хi, вып.1, с. 252)
- •Цветки — Flores (гф хi, вып. 1, с. 257)
- •Контрольные вопросы
- •Микроскопический анализ лрс
- •3 2 Тема 1. Определение подлинности растительного сырья
- •3 4 Тема 1. Определение подлинности растительного сырья
- •Работа в лаборатории
- •3 6 Тема 1. Определение подлинности растительного сырья
- •Контрольные вопросы
- •Соединения с гликозидной связью: полисахариды и гликозиды
- •4 0 Тема 2. Соединения с гликозидной связью: полисахариды и гликозиды
- •4 4 Тема 2. Соединения с гликозидной связью: полисахариды и гликозиды
- •Контрольные вопросы
- •Макро? и микроскопический анализ лрс, содержащего полисахариды
- •Корни алтея — Radices Althaeae
- •4 8 Тема 2. Соединения с гликозидной связью: полисахариды и гликозиды
- •Основные отличия алтея лекарственного и алтея армянского
- •5 0 Тема 2. Соединения с гликозидной связью: полисахариды и гликозиды
- •Трава алтея лекарственного — Herba Althaeae officinalis
- •Листья подорожника большого — Folia Plantaginis majoris
- •Семена подорожника блошного — Semina Psyllii
- •Листья мать?и?мачехи — Folia Farfarae (Folia Tussilaginis farfarae)
- •5 8 Тема 2. Соединения с гликозидной связью: полисахариды и гликозиды
- •Семена льна — Semina Lini (Semina Lini usitatissimi)
- •6 0 Тема 2. Соединения с гликозидной связью: полисахариды и гликозиды
- •Слоевища ламинарии (морская капуста) — Thalli Laminariae
- •Ные, волнистые.
- •Контрольные вопросы
- •Анализ жирных масел
- •6 6 Тема 3. Липиды
- •7 2 Тема 3. Липиды
- •7 4 Тема 3. Липиды
- •Приготовление смеси веществ, применяемых для калибровки*
- •7 6 Тема 3. Липиды
- •Контрольные вопросы
- •8 0 Фенольные соединения. Тема 4. Простые фенолы и их производные
- •Листья брусники — Folia Vitis idaeaе
- •Трава фиалки — Herba Violae
- •8 8 Фенольные соединения. Тема 4. Простые фенолы и их производные
- •Корневища и корни родиолы розовой — Rhizomata et radices Rhodiolae roseae
- •9 0 Фенольные соединения. Тема 4. Простые фенолы и их производные
- •Кора ивы — Cortex Salicis
- •9 2 Фенольные соединения. Тема 4. Простые фенолы и их производные
- •Трава эхинацеи пурпурной — Herba Echinaceae purpureae
- •Корневища щитовника мужского (папоротника мужского) — Rhizomata Filicis maris
- •9 4 Фенольные соединения. Тема 4. Простые фенолы и их производные
- •Контрольные вопросы
- •Кумарины
- •9 8 Фенольные соединения. Тема 5. Кумарины
- •Химический анализ лрс, содержащего кумарины
- •1 0 2 Фенольные соединения. Тема 5. Кумарины
- •Плоды амми большой — Fructus Ammi majoris
- •1 0 4 Фенольные соединения. Тема 5. Кумарины
- •Плоды пастернака — Fructus Pastinacae sativae
- •Корневища с корнями дудника обыкновенного — Rhizomata cum radicibus Angelicae
- •1 0 6 Фенольные соединения. Тема 5. Кумарины
- •Листья смоковницы обыкновенной (инжира) — Folia Fici caricae
- •1 0 8 Фенольные соединения. Тема 5. Кумарины
- •Хромоны
- •1 1 0 Фенольные соединения. Тема 6. Хромоны
- •1 1 2 Фенольные соединения. Тема 6. Хромоны
- •25 Мл раствора фильтруют и измеряют оптическую плотность на фото-электроколориметре в кювете с толщиной слоя 10 мм при длине волны 465 нм.
- •Контрольные вопросы к темам «кумарины и хромоны»
- •Ксантоны и лигнаны
- •1 1 6 Фенольные соединения. Тема 7. Ксантоны и лигнаны
- •1 1 8 Фенольные соединения. Тема 7. Ксантоны и лигнаны
- •5 Мл элюата прибавляют 5 мл спиртового раствора алюминия хлорида
- •Плоды расторопши — Fructus Silybi
- •1 2 0 Фенольные соединения. Тема 7. Ксантоны и лигнаны
- •Корневища и корни элеутерококка — Rhizomata et radices Eleutherococci
- •Корневища с корнями подофилла — Rhizomata cum radicibus Podophylli
- •1 2 4 Фенольные соединения. Тема 7. Ксантоны и лигнаны
- •Контрольные вопросы
- •Флавоноиды
- •1 2 6 Фенольные соединения. Тема 8. Флавоноиды
- •1 2 8 Фенольные соединения. Тема 8. Флавоноиды
- •1 3 0 Фенольные соединения. Тема 8. Флавоноиды
- •Контрольные вопросы
- •Макро? и микроскопический анализ лрс, содержащего флавоноиды
- •Отличительные признаки софоры японской и сходных видов
- •Плоды софоры японской — Fructus Sophorae japonicae
- •1 См, шириной 0,4—0,7 см; большая часть семян недоразвита. Запах отсут-ствует. Вкус горький.
- •Бутоны софоры японской — Alabastrae Sophorae japonicae
- •Цветки василька синего — Flores Centaureae cyani
- •1 3 6 Фенольные соединения. Тема 8. Флавоноиды
- •Плоды аронии черноплодной свежие — Fructus Aroniae melanocarpae recentes
- •Трава пустырника — Herba Leonuri
- •1 3 8 Фенольные соединения. Тема 8. Флавоноиды
- •Отличительные признаки видов пустырника и сходных видов
- •Трава горца перечного (водяного перца) — Herba Polygoni hydropiperis
- •Отличительные признаки горца перечного и сходных с ним видов
- •Трава горца почечуйного — Herba Polygoni persicariae
- •Трава горца птичьего (спорыша) — Herba Polygoni avicularis
- •1 4 6 Фенольные соединения. Тема 8. Флавоноиды
- •Трава сушеницы топяной — Herba Gnaphalii uliginosi
- •1 4 8 Фенольные соединения. Тема 8. Флавоноиды
- •Цветки бессмертника песчаного — Flores Helichrysi arenarii
- •Цветки пижмы — Flores Tanaceti
3 2 Тема 1. Определение подлинности растительного сырья
Препараты кожуры плодов и семян готовят после кипячения в 5%-ном растворе калия гидроксида в течение 15—20 мин, с последующим раздавли-ванием и разделением тканей.
Размягчение в растворе хлоралгидрата. Для быстрого приготовления сре-зов коры и подземных органов их размягчают и просветляют кипячением в растворе хлоралгидрата в течение 10—20 мин.
Разрушение тканей. В некоторых случаях требуется разрушение тканей (дез-интеграция). Для изучения отдельных элементов проводящих пучков и меха-нических тканей кусочки сырья длиной 1—2 см или грубый соскоб нагрева-ют (осторожно, под тягой!) в пробирке в смеси 2 мл кислоты азотной кон-центрированной и 0,3 г калия хлората (бертолетовой соли) до образования пены и оставляют на несколько минут до побеления кусочков. Сырье промы-вают несколько раз водой, помещают на предметное стекло, разделяют пре-паровальной иглой на отдельные элементы и просматривают в глицерине.
При исследовании сырья, содержащего секреторные ходы, млечники, вместилища со смолой или эфирным маслом, для разделения тканей без разрушения тонких оболочек клеток применяют следующие способы: а) ки-пячение в 3—5 %-ном растворе щелочи в течение 30 мин; б) нагревание сырья в колбе со шлифом в 25 %-ном растворе аммиака в течение 40 мин. После кипячения частицы сырья промывают водой, помещают на предмет-ное стекло и разделяют ткани препаровальными иглами.
Приготовление временных микропрепаратов. После соответствующей подготовки сырья из него готовят микропрепараты. Техника их приготовле-ния разнообразна и зависит от состояния сырья и его принадлежности к определенной морфологической группе (лист, кора, подземные органы).
Приготовление препаратов с поверхности. Для приготовления микропре-парата листа с поверхности мелкие листья используют целиком, от крупных берут отдельные участки с учетом распределения важнейших диагностиче-ских элементов: край листа, зубчик по краю листа, участок главной жилки, верхушку листа и основание. Лист или его часть вынимают лопаточкой или препаровальной иглой и помещают на предметное стекло в раствор хлорал-гидрата или глицерина. Если объект собирается в складочки, предметное стекло
воде подводят под кусочек сырья и вынимают его иглой на стекло. Если лист надо рассматривать с двух сторон, кусочек листовой пластинки режут на две части скальпелем на предметном стекле; одну часть осторожно пере-ворачивают и помещают обе части рядом.
Из толстых и кожистых листьев при необходимости готовят давленые препараты или поперечные срезы. При анализе резаных листьев выбирают несколько кусочков с крупной жилкой и краем листа.
Препараты цветков для микроскопического анализа готовят из отдель-ных частей соцветия (цветки, листочки обвертки) и частей цветка (лепест-ки, чашелистики), рассматривая их с поверхности. Для идентификации пло-дов и семян готовят поперечные срезы. Для микродиагностики коры и подзем-ных органов из предварительно размягченного сырья готовят поперечные, реже продольные срезы.
Приготовление срезов. Для изучения тканей и органов, обладающих твер-дой структурой, готовят срезы. Срезы, предназначенные для микроскопиче-ского исследования с учебными целями, делают преимущественно вручную, при помощи бритвы.
Для приготовления среза крупные объекты (корни, корневища, кору, плоды, семена, толстые кожистые листья) можно просто держать в руке. Мелкие объекты, которые неудобно держать пальцами, или тонкие, кото-
Микроскопический анализ ЛРС |
3 3 |
|
|
|
|
|
|
|
рые гнутся при нажиме бритвы, зажимают в сердцевину бузины, корковую пробку или заливают в парафин.
Сердцевина бузины используется для нежных объектов (листья, цветки, чашелистики и др.), пробка — для более твердых объектов (тонкие корни, кора, плоды, плотные листья и др.). Пробки выбирают мягкие, их предвари-тельно вываривают в воде примерно 15 мин до размягчения. Перед изго-товлением срезов кусочки сердцевины бузины 1—1,5 см длины или размяг-ченную пробку разрезают вдоль на две части. Объект зажимают между двумя половинками и делают срезы, направляя лезвие бритвы вдоль щели. Объект срезают вместе с бузиной или пробкой, кусочки которых потом отделяют иглой от срезов и выбрасывают. Обычно готовят серию срезов от нескольких разных кусочков сырья, чтобы обеспечить наличие в препарате всех диагнос-тических признаков.
Очень мелкие плоды, семена или другие объекты при необходимости за-плавляют в парафин. Из парафина готовят кубик, удобный для удерживания пальцами, затем в одну из поверхностей кубика вкладывают кончик нагре-той препаровальной иглы, в расплавленное углубление быстро погружают объект и ожидают, когда парафин застынет. Срезают верхнюю часть объекта
отбрасывают, делая затем поперечные или продольные срезы из средней части семени или плода. Их освобождают от парафина и заключают в соот-ветствующую жидкость.
Приготовление фиксированных микропрепаратов. Для хранения и длитель-ного использования готовят фиксированные микропрепараты. На нагретое предметное стекло с помощью стеклянной палочки наносят каплю расплав-ленного глицерин-желатинового реактива. В каплю сразу же помещают раз-мягченный объект или срез, который быстро накрывают покровным стек-лом, избегая образования пузырьков воздуха. К препарату приклеивают эти-кетку с наименованием.
Приготовление глицерин-желатинового реактива. К 1,0 г чистого желатина приливают 50 мл воды для набухания. Излишек воды отцеживают, прибавля-ют 6 мл очищенной воды, нагревают до растворения желатина, к раствору прибавляют 7 г чистого глицерина и перемешивают. На 100 мл реактива в качестве консерванта прибавляют 1—2 кристаллика фенола. Смесь нагревают на водяной бане в течение 10—15 мин, пока раствор не станет прозрачным. Фильтруют на горячей стеклянной воронке через фильтровальную бумагу. Реактив хранят в конической колбе, закрытой корковой пробкой, в центр которой вставлена стеклянная палочка, доходящая почти до дна колбы.
Приготовление микропрепаратов растительных порошков. Микропрепараты растительного порошка всех морфологических групп сырья готовят одинако-во. На предметное стекло вначале помещают 2—3 капли раствора хлоралгид-рата, а затем на кончике скальпеля или увлажненной препаровальной иглы вносят частицы порошка, перемешивают препаровальной иглой до равно-мерного смачивания всех частиц жидкостью, накрывают покровным стеклом
слегка придавливают ручкой иглы. Избыток жидкости удаляют полоской фильт-ровальной бумаги. Если жидкости под стеклом оказалось мало, ее добавляют пипеткой рядом с покровным стеклом (она быстро затягивается под стекло).
Микропрепараты прогревают над небольшим пламенем горелки или на электроплитке до просветления тканей, не допуская высыхания. Держать препарат при прогревании следует наклонно, под углом 10—15°,— так из объекта лучше удаляются пузырьки воздуха. Нельзя допустить резкого заки-
пания жидкости, так как при этом частицы порошка не просветляются, а препарат заполняется пузырьками воздуха.
