Окрашивание препарата

Для окрашивания препарата чаще всего предлагается воспользоваться стандартным красителем – флороглюцином. Этот краситель в кислой среде окрашивает мертвые растительные ткани, в том числе ксилему, в темно-красный цвет. На препарате, окрашенном флороглюцином, четко выделяются сосуды и мертвые механические элементы (склеренхима).

Если в задании указано окрасить срез, нужно капнуть на него флороглюцин, потом соляную кислоту (осторожно, при окрашивании используется концентрированная HCl). Капли нужно делать небольшие, избегая избытка красителя и особенно кислоты, но такие, чтобы весь срез оказался покрытым красителем.

Не смывая красителя, накройте препарат покровным стеклом, стараясь не допустить возникновение пузырьков воздуха. Для этого поставьте покровное стекло одним краем рядом с препаратом и осторожно опускайте его препаровальной иглой до момента, когда покровное стекло образует с плоскостью предметного угол в 45 градусов. После этого можно опускать покровное стекло. Если пузырьки все же образовались, можно попытаться отогнать их, слегка нажимая препаровальной иглой на покровное стекло.

Ф лороглюцин, или 1,3,5-триоксибензол – органический краситель. Спиртовой раствор флороглюцина, используемый в анатомии растений – бесцветная прозрачная жидкость, хранится в темных флаконах. Флороглюцин широко распространен в растительном мире, его гликозидные производные входят в состав антоциановых и флавоновых пигментов, определяющих окраску цветов.

Микроскопическое исследование и зарисовка

Препарат необходимо рассмотреть сначала на малом увеличении, и только затем перевести на большое. Следует отметить характерные анатомические особенности листа (наличие полостей, вместилищ, аэренхимы, колленхимы; расположение проводящих пучков, их вид, выраженность механической ткани в обкладке пучков; выраженность паренхимы; подразделение мезофилла на столбчатый или губчатый). Если объектом исследования является не лист, нужно определить, что перед вами – стебель или корень, если корень – то какого строения – первичного или вторичного и т.п. Согласно анатомическим особенностям, нужно попытаться определить систематическую принадлежность растения, которому принадлежал исследуемый орган (до отдела, если отд. Покрытосеменные – до класса, желательно как можно больше рассказать о систематическом положении растения).

Зарисовывать контуры органа нужно на малом увеличении, дальше следует перевести микроскоп на большое увеличение и внутри контура добавить детали. Необязательно зарисовывать все, что видно – так никакого времени не хватит. Обычно органы растений симметричны и содержат повторяющиеся элементы строения, поэтому достаточно зарисовать один такой элемент (один проводящий пучок, сектор стебля или листа и т.п.). Рисунок должен отражать реальность, предпочтительней рисунок, похожий на оригинал, а не схема. Контуры клеток нужно показать четко – «спиральки» и незамкнутые контуры клеток недопустимы. Для выделения отдельных деталей можно использовать штриховку и цветные карандаши, однако штриховка не должна заменять собой рисунка клеток.

Ниже приведены несколько правильных рисунков срезов.

Э ти рисунки взяты из учебников:

Рис. 1. Поперечный срез стебля рдеста, демонстрирующий аэренхиму.

Р ис. 2. Поперечный срез листа кукурузы.

Рис. 3. Поперечный срез стебля лютика ползучего.

А эти сделаны участниками олимпиад:

Рис. 5. Поперечный срез листа осоки.

Ниже приведен неправильный рисунок – контуры клеток на нем не замкнуты, клетки не прилегают одна к другой, к тому же зарисованный срез явно сделан косо (о чем свидетельствуют удлиненные клетки в правой части среза):

Рис. 6. Поперечный срез листа олеандра