- •Глава I. Обзор литературы…………………………………………5
- •Глава II. Материалы и методы исследования …………………..13
- •Глава III. Результат исследования и его обсуждение ……………16
- •Глава I. Обзор литературы.
- •Теоретические основы о туберкулезе
- •Медико-биологические аспекты о лейкозе
- •Глава II. Материалы и методы исследования
- •Глава III. Результат исследования и его обсуждение
Глава II. Материалы и методы исследования
Эффективность лечения туберкулеза, лейкоза и борьбы с внутрибольничным заражением пациентов лекарственно-устойчивыми штаммами МБТ решающим образом зависит от скорости обнаружения возбудителя, его идентификации и определения лекарственной чувствительности. До последнего времени для этой цели использовали только классический метод посева анализируемого материала на плотные питательные среды, содержащие чистые субстанции основных противотуберкулёзных препаратов (ПТП) в стандартных концетрациях. Этот метод считается «золотым стандартом» в диагностике туберкулеза и используется практически во всех противотуберкулезных учреждениях России. Для учреждений Российской Федерации применение метода регламентировано приказом Министерства здравоохранения РФ №109 от 2003 г. Однако ответ о наличии возбудителя и его лекарственной чувствительности при использовании этого метода может быть получен не ранее 6-8 недель и чаще всего больным назначают ПТП независимо от того, каким по лекарственной чувствительности штаммом они заражены, хотя подбор схемы лечения с учётом характера устойчивости МБТ, в значительной степени определяет ее эффективность.
Применение автоматизированных систем с использованием жидких сред - Bactec MGIT 960 (Becton Dickinson) или BacT/Alert 3D (BioMerieux) сокращает время обнаружения возбудителя до 1-2 недель, определение чувствительности МБТ к ПТП 1-го ряда продлевает время анализа еще на 1-2 недели.
Принципиальное решение проблемы быстрого обнаружения, идентификации возбудителя туберкулеза и определения его лекарственной чувствительности было найдено в результате разработки технологии биологических микрочипов.
Идея создания биологического микрочипа возникла в конце 1980-х годов одновременно в Великобритании, Югославии и СССР. В Советском Союзе эти работы были инициированы и проводились в Институте молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта РАН под руководством выдающегося ученого, академика А.Д. Мирзабекова. В 1999 году американская газета «Sunday Times» опубликовала имена 20 ученых, работы которых окажут наибольшее влияние на развитие технологий XXI века. Возглавлял этот список академик РАН А.Д. Мирзабеков - «русский изобретатель первого в мире биочипа, который революционизирует медицинскую диагностику».
Суть этой технологии заключается в следующем. Биочип представляет собой подложку с ячейками, в каждой из которых иммобилизована (закреплена) индивидуальная биомолекула, служащая зондом для проведения реакции с целью распознавания определенной мишени в анализируемом образце. Зонды расположены в определенном порядке и взаимодействуют с исследуемым образцом по принципу «ключ-замок». В ячейке биочипа, в которой возникло соответствие (комплементарность) между зондом и фрагментом анализируемой молекулы-мишени, образуется устойчивый комплекс, регистрируемый с использованием специального оборудования. Распределение ячеек биочипа в виде изображения (картины) является индивидуальной характеристикой анализируемого образца.
Первые биологические микрочипы появились в конце прошлого века, а сейчас уже десятки компаний выпускают различные типы чипов, отличающихся друг от друга по методике изготовления и по методу, с помощью которого регистрируют результат взаимодействия чипа с образцом.
В основе технологии биочипов, разработанной под руководством А.Д. Мирзабекова, зонды располагаются не на плоской поверхности подложки, а в трехмерном объеме специального геля.
Биочип, содержащий трехмерные ячейки, обладает существенными преимуществами по сравнению со стандартными двумерными чипами.
Взаимодействие исследуемых образцов с зондами, иммобилизованными в геле, имеет больше сходства с процессами, протекающими в растворе, чем в том случае, когда иммобилизованные зонды находятся на поверхности стекла, вследствие чего достигается высокая специфичность их взаимодействия с молекулами из анализируемого образца. Каждая ячейка содержит гораздо большее количество молекул зонда по сравнению с зондами, прикрепленными к двумерной поверхности. В водном окружении молекулы сохраняют свою активность, с ними можно проводить любую ферментативную реакцию. Трехмерные биочипы позволяют изучать кинетику и термодинамику реакций, протекающих в индивидуальных ячейках, в том числе образование дуплексов нуклеиновых кислот.
