3. Подготовка и проведение исследования
Мокрота собирается утром в специально подготовленную чистую емкость утром до приема пищи. Для этого больной тщательно полоскает ротоглотку водой, после чего глубоко вдыхает воздух через рот и продолжительно откашливается. Нередко мокроты отделяется недостаточно, в этих случаях накануне исследования проводятся раздражающие ингаляции, например, с йодидом калия. Собранная мокрота доставляется в лабораторию.
Лаборант наносит мокроту на предметное стекло и подробно последовательно просматривает под световым микроскопом большое количество полей зрения. Атипичные клетки имеют ряд особенностей строения, позволяющих отличить их от клеток нормального эпителия:
клеточный полиморфизм представляет собой значительные различия в строении, размерах и форме клеток одного класса;
крупные, гиперхромные (интенсивно окрашенные) ядра, при этом соотношение площади ядра и цитоплазмы сдвигается в сторону ядра (так называемый ядерно-цитоплазматический сдвиг);
ядра атипичных клеток различаются по размерам и внешнему виду (ядерный полиморфизм);
появляются крупные ядрышки;
нередко встречаются многоядерные клетки;
присутствуют картины патологического деления (патологических митозов).
4. Как подготовиться к исследованию?
Правила подготовки к исследованию кала на скрытую кровь:
исключить из рациона мясо, рыбу, зеленые овощи, томаты за 72 часа до сдачи кала;
исключить прием слабительных препаратов, введение ректальных свечей, масел, ограничить прием медикаментов, влияющих на перистальтику кишечника (белладонны, пилокарпина и др.) и на окраску кала (железа, висмута, сернокислого бария), в течение 72 часов до анализа;
исследование проводить перед выполнением ректороманоскопии, фиброгастродуоденоскопии (ФГДС) и других диагностических манипуляций в области кишечника и желудка;
в течение 24 часов до сбора кала не следует чистить зубы, так как из поврежденных десен может выделиться количество крови, достаточное для ложноположительного результата;
непригоден для исследования материал, полученный после клизмы, после приема рентгеноконтрастных веществ (бария при рентгеновском обследовании)
5. Правила подготовки к общеклиническому исследованию кала (копрограмме):
за 3-4 дня необходимо прекратить прием слабительных препаратов, введение ректальных свечей, масел, других препаратов;
необходимо ограничить прием медикаментов, влияющих на перистальтику кишечника (белладонны, пилокарпина и др.) и на окраску кала (железа, висмута, сернокислого бария);
непригоден для исследования материал, полученный после клизмы, после приема рентгеноконтрастных веществ (бария при рентгеновском обследовании).
7, 1. Емкость для сбора рвотных масс.
2. Полотенце.
3. Фартук клеенчатый – 2 шт.
4. Перчатки резиновые.
5. Стакан с кипяченой водой.
6. Грушевидный баллон.
7. Стерильная баночка с крышкой.
8. Дезинфицирующие растворы.
9. Емкости для дезинфекции.
Последовательность действий м/с для обеспечения безопасности
1. Информируйте пациента о предстоящей манипуляции и ходе ее выполнения.
2. Успокойте пациента.
3. Наденьте на него клеенчатый фартук или повяжите салфетку.
4. Усадите пациента, если позволяет его состояние.
5. Наденьте на себя клеенчатый фартук и перчатки.
6. Поставьте таз или ведро к ногам пациента.
7. Придерживайте голову пациента, положив ему ладонь на лоб.
8. Дайте пациенту стакан с водой для полоскания рта после рвоты.
9. Снимите с пациента клеенчатый фартук или салфетку.
10. Помогите пациенту лечь.
11. Уберите емкость с рвотными массами из палаты, предварительно показав их врачу.
12. Уберите все на полу, проветрите палату.
13. Снимите фартук и перчатки.
14. Обработайте их в соответствии с требованиями сан эпидрежима.
Сбор кала на исследование на яйца глистов:
1) на сухую чистую банку с широкой горловиной наклеить заполненную этикетку‑направление;
2) предложить больному шпателем собрать 30–50 г свежего теплого кала с трех разных участков выделенных экскрементов;
3) если больной принимает противогельминтные препараты, направить на исследование всю порцию кала.
10. Антропометрия (греч. antropos – человек, metreo – измерять) – оценка телосложения человека путём измерения ряда параметров, из которых основными (обязательными) выступают рост, масса тела и окружность грудной клетки. Медицинская сестра регистрирует необходимые антропометрические показатели на титульном листе медицинской карты стационарного больного
11. .РЕГИСТРАЦИЯ ЭЛЕКТРОКАРДИОГРАММЫ
Алгоритм выполнения
I. Подготовка к процедуре
1. Обработать руки гигиеническим способом, осушить.
2. Убедиться в готовности прибора к проведению исследования (наличии электрокардиографической ленты, зарядки аккумулятора и пр.).
3. Представиться пациенту, дать полную информацию о проводимом исследовании, его цели, полной безопасности и безболезненности.
4. Зарегистрировать фамилию, имя и отчество пациента, его возраст, дату и время исследования.
5. Предложить пациенту раздеться до пояса, освободить от одежды голени.
6. Уложить пациента и придать ему удобное положение лежа на спине с вытянутыми вдоль туловища руками для максимального расслабления мышц.
7. Установить усиление электрокардиографа 1mV=10 мм. Произвести регистрацию калибровочных импульсов:
а) Установить переключатель отведений в положение «0».
б) Включить лентопротяжный механизм, нажав кнопку «50», и зарегистрировать 2-3 контрольных калибровочных импульса путем быстрого нажатия кнопки «mV».
в) Остановить лентопротяжный механизм.
8. В местах наложения электродов обезжирить кожу пациента спиртом и покрыть электроды электродным гелем или токопроводящей пастой. В случае их отсутствия, под электроды поместить марлевые салфетки, сложенные в 3-4 слоя и смоченные в 5-10% растворе натрия хлорида или воды. При наличии большого количества волос на коже пациента места наложения грудных электродов смочить водой или натереть мылом.
9. Наложить четыре электрода на внутреннюю поверхность предплечий и голеней в нижней их трети. Соблюдать порядок наложения электродов на конечности:
- черный цвет (заземляющий) - на правую ногу,
- красный цвет - на правую руку,
- желтый цвет - на левую руку,
- зеленый цвет - на левую ногу.
10. Установить электрод с белой маркировкой на область грудной клетки в положение V1 (рис. 1).
11. Зафиксировать электроды резиновыми лентами или специальными пластмассовыми зажимами. Для фиксации грудных электродов использовать резиновые груши - присоски.
II. Выполнение процедуры
1. Включить аппарат в электросеть.
2. Включить кнопку работы электрокардиографа (загорится сигнальная лампочка).
3. Установить перо пишущего устройства в центральное положение на изоэлектрическую линию.
4. Попросить пациента расслабиться и спокойно неглубоко дышать.
5. Записать ЭКГ в стандартных отведениях (I, II, III) в следующей последовательности.
а) Установить переключатель в положение отведения I, при этом загорается лампочка.
б) Включить лентопротяжный механизм путем нажатия кнопки «50» и записать не менее 4 сердечных циклов
в) Выключить лентопротяжный механизм путем отжатая кнопки «50». Произвести аналогичную запись ЭКГ в последующих стандартных отведениях: II, III и III на вдохе.
6. Записать ЭКГ в усиленных отведениях от конечностей avR, avL, avF путем последовательного переключения соответствующих кнопок электрокардиографа и запуска лентопротяжного механизма.
7. Записать ЭКГ в грудных отведениях.
При работе на одноканальном электрокардиографе установить переключатель отведений в положение V и произвести поочередную запись ЭКГ путем перемещения грудного электрода по нижеуказанным позициям на теле пациента (рис.1): V1 - четвертое межреберье у правого края грудины; V2 - четвертое межреберье у левого края грудины; V3 - между позицией V2 и V4. V4 – в пятом межреберье по левой срединно-ключичной линии; V5 - в пятом межреберье по левой передней подмышечной линии; V6 - по левой средней подмышечной линии на уровне V5. При работе на многоканальном электрокардиографе произвести одномоментную запись грудных отведений, установив предварительно все 6 грудных позиций и включив лентопротяжный механизм.
8. После завершения регистрации ЭКГ установить переключатель отведений в положение «0» и повторить запись контрольного милливольта (описание действия в пункте 7 раздела I).
12. Подготовка кожи. Не надо протирать место инъекции спиртом - спирт сушит кожу. Просто вымойте теплой водой с мылом тот участок, куда собираетесь сделать укол.
Подготовка флакона. Флакон закрыт сверху резиновой пробкой, которую снимать не надо - пробку прокалывают шприцем и набирают инсулин. Резина прочнее кожи, и при каждом прокалывании шприц тупится. Чтобы этого не происходило, возьмите толстую иглу для медицинского шприца и проколите несколько раз пробку в самом центре. В дальнейшем старайтесь ввести иглу инсулинового шприца в этот прокол.
Подготовка инсулина. Цилиндрический флакон инсулина энергично покатайте между ладонями секунд тридцать. Для инсулинов промежуточного и длительного действия эта операция обязательна, так как пролонгатор в них оседает на дно флакона, и его надо перемешать с инсулином. Но флакон с "коротким" инсулином тоже рекомендуется покатать - инсулин нагреется, а его лучше вводить теплым.
Подготовка шприца. Шприц с колпачком, предохраняющим иглу, лучше держать в стаканчике. Достаньте шприц, снимите колпачок и выдвиньте шток - так, чтобы поршень встал на отметку необходимой вам дозы.
Набор инсулина. Возьмите флакон в левую руку, а шприц - в правую. Введите иглу шприца в проколотую область в пробке и опустите шток до конца - тем самым вы введете во флакон такой объем воздуха, который равен вашей дозе инсулина. Это нужно затем, чтобы создать во флаконе избыточное давление - тогда будет легче набирать инсулин. Держа флакон по-прежнему в левой руке, а шприц - в правой, переверните флакон горлышком вниз, потяните за поршень и наберите в шприц нужную вам дозу плюс еще немного - одну-две ЕД. Вытащите иглу, отставьте флакон и установите точную дозу, аккуратно подвинув шток, - при этом на кончике иглы появится капелька инсулина. Это означает, что воздуха под поршнем нет. Внимательно делайте эту проверку; стравив лишний инсулин, еще раз проверьте точность дозы.
