- •Глава ι классификация и номенклатура
- •Источники углерода
- •Белковые реакции
- •Глава 2 основные принципы и ( этапы бактериологического исследования
- •Материал для исследования отбор материала и транспортировка проб
- •Выделение и первичная идентификация
- •Дифференциация родов
- •Глава 3 характеристика родов. Внутриродовая дифференциация
- •II биовар — ксилоза —, арабиноза —
- •Определение фаговаров s. Paratyphi a
- •Глава 4 ускоренные и упрощенные методы бактериологического исследования
- •Метод флуоресцирующих антител
- •Реакция коагглютинации (коа)
- •Глава 5 питательные среды и реактивы
- •1. Консерванты
- •Среды обогащения
- •3. Плотные среды для выделения чистых культур
- •4. Среды для первичной дифференциации
- •5. Среды для дальнейшей дифференциации
- •I 2) Калий гидро-
- •2. Среду с лактозой готовят иногда с большим содержанием
- •3. К средам может быть добавлен агар (0,2—0,4%).
- •6. Среды и реагенты
- •8. Индикаторы
- •9. Некоторые дополнительные сведения
- •Тесты для контроля стерилизации
- •2. Приложение к главе 3
Глава 5 питательные среды и реактивы
1. Консерванты
Глицериновая смесь
Состав: Натрий хлорид (NaCl) (0,85%
раствор) — 1000 мл
Глицерин нейтральный — 500 мл
Натрий гидрофосфат безводный
(Na2HPO4) 20% раствор — 150 мл
Приготовление: смешивают первые два ингредиента и добавляют раствор натрия гидрофосфата в таком количестве, чтобы довести рН до 7,8—8,0, затем разливают в пробирки или флаконы по 10 мл, стерилизуют в автоклаве при 112 0С в течение 15 мин или текучим паром 3 дня подряд. После стерилизации рН 7,6—7,8.
Фосфатно-буферная смесь
Состав: Калий дигидрофосфат (КН2РО4) — 0,45 г
Натрий гидрофосфат безводный(Na2HPO4) — 5,34 г
Вода дистиллированная — 1000 мл
Приготовление: ингредиенты смешивают, разливают по 10 мл в пробирки или флаконы, стерилизуют в автоклаве при 120 °С 30 мин.
Буферная глицерино-солевая смесь [Teague О., Clurmann A., 1916] в модификации Сакса [Sachs A., I934]
Состав: Натрий хлорид (NaCl) — 4,2 г
Калий гидрофосфат (К2НРО4) — 3,1 г
Калий дигидрофосфат
(КН2РО4) — 1 г
Глицерин нейтральный — 300 мл
Вода дистиллированная — 700 мл
Приготовление: ингредиенты растворяют, перемешивают, смесь разливают в стерильные пробирки по 5 мл и автоклавируют при 112°С 30 мин. Рекомендуется с целью лучшего прocмотpa раствор слабо подкрашивать феноловым красным.
Изотонический раствор натрия хлорида
Состав: Натрий хлорид (NaCl) — 8,5 г
Вода дистиллированная — 1000 мл
Приготовление: соль растворяют при подогревании, фильтруют, устанавливают рН 7,0—7,2, разливают в пробирки по 5—7 мл, стерилизуют при 121 °С 30 мин.
Среды обогащения
Селенитовая среда [Leifson E., 1936], модификация
Среда предназначена для накопления в материале сальмонелл.
Принцип действия: пептон является питательной основой, натрий гидроселенит — ингибитором сопутствующей микрофлоры; фосфаты обеспечивают буферные свойства, а лактоза служит компонентом, влияющим на реакцию среды.
Состав: Натрий гидроселенит (NaHSeO3)
без примеси теллура — 4 г
Пептон (желательно венгерский «Рихтер» или чехословацкий
«Спофа») — 5 г
Натрий гидрофосфат безводный
(Na2HPO4) — 7 г
Натрий дигидрофосфат безводный
(NaH2PО4) — 3 г
Лактоза — 4 г
Вода дистиллированная — 1000 мл
Приготовление: среду готовят из двух растворов.
I раствор. Предварительно определяют количественные соотношения фосфатов при данном образце пептона (гидроселенита натрия) с тем, чтобы готовая среда имела рН 6,9—7,1. Такая подтитровка нужна всегда при изменении серии любого из входящих в среду основных ингредиентов.
После установления количественных соотношений фосфатов к раствору добавляют пептон и лактозу. Разливают во флаконы по 50 мл и стерилизуют текучим паром два дня по 30 мин или такой же срок при 112°С. Количество фосфатов в рецепте среды дано в расчете на безводные препараты. При отсутствии таковых заранее заготовленные навески «выветривают» в термостате в течение 15—16 сут.
II раствор. 10% раствор натрия гидроселенита готовят на стерильной дистиллированной воде ex tempore.
Перед началом работы в каждый флакон с 50 мл основного (I) раствора добавляют 2 мл раствора натрия гидроселенита (раствора II), асептически разливают по 5—7 мл в стерильные пробирки и закрывают плотно пробками. Дальнейшая стерилизация не требуется. Основной (I) раствор среды можно хранить в холодильнике 1—2 мес. Для приготовления среды следует использовать высококачественный пептон.
Магниевая среда. [Rappaport E., Konforti N., Navon В., 1956]. Модифицирована В. Л. Шигановой и Г. П. Калиной в 1972 г. (среда М)
Среда предназначена для накопления сальмонелл и содержит три раствора.
Принцип действия: ингибирующий эффект среды для сопутствующей микрофлоры основан на влиянии бриллиантового зеленого и дегидратирующем действии магния хлорида, при этом на рост сальмонелл указанные вещества в данных количествах не влияют; пептон с дрожжевым диализатом создают достаточную питательную основу для активного размножения сальмонелл, а КН2РО4 — буферность среды.
Состав: Раствор I
Пептон — 4,2 г
Натрий хлорид (NaCl) — 7,15 г
Калий дигидрофосфат
(КН2РО4) — 1,43 г
Дрожжевой диализат — 9 мл
Вода дистиллированная — 890 мл
Раствор II
Магний хлорид (МgСl26Н2О) — 35,7 г
Вода дистиллированная — 90 мл
Раствор III
Бриллиантовый зеленый 0,5%
водный раствор — 0,9 мл
Приготовление: все три раствора смешивают, разливают определенные объемы в колбы, флаконы или пробирки, стерилизуют при 112 0С 30 мин.
Среда Мюллера [Muller L., 1923]
Тетратионатовый бульон Мюллера является средой накопления для сальмонелл.
Принцип действия: в среде при добавлении к ней тиосульфата натрия и раствора Люголя ex tempore образуется тетратионат натрия (Na2S4O6). Реакция его образования протекает по уравнению: 21 + 2Na2S2О3 = Nа2S4О6 + 2NаI. Это вещество, не влияя на развитие большинства сальмонелл, является ингибитором для эшерихий и другой микрофлоры кишечника. В среде бульон обеспечивает питательные вещества, мел обладает буферными свойствами.
Состав: Мел, стерилизованный сухим жаром, или — 45 г
Кальций карбонат (СаСО3),
сухой, стерильный — 25 г
Бульон Хоттингера, содержащий 1,2—1,3%
аминного азоnа — 900 мл
Раствор Люголя — 20 мл
Натрий тиосульфат (Na2S2O3•5Н2О)
50% стерильный раствор — 100 мл
Приготовление: в стерильные флаконы помещают по 4,5 г мела, стерилизуют сухим жаром, после чего в каждый флакон наливают по 90 мл бульона Хоттингера. Стерилизуют при 121 °С 30 мин. рН 7,2—7,4. Затем ex tempore асептически добавляют в каждый флакон точно по 2 мл раствора Люголя [калий йодид (KI) 20 г, йод кристаллический 25 г, вода дистиллированная 100 мл] и по 10 мл раствора натрия тиосульфата (натрий тиосульфат 50 г, вода дистиллированная 100 мл), хорошо смешивают и разливают по пробиркам. Готовая среда стерилизации не подлежит.
Приготовление: в измерительный цилиндр насыпают натрий тиосульфат и добавляют воду по 100 мл, растворяют, переливают во флакон, стерилизуют текучим паром 30 миy.
Среда Кауфмана [Kauffmann F., 1935]
Состав: Среда Мюллера (стерильная) — 500 мл
Желчь бычья (стерильная) — 250 мл
Бриллиантовый зеленый (0,1%
водный раствор) — 50 мл
Приготовление: ингредиенты смешивают, асептически разливают в стерильные пробирки по 10 мл. Не стерилизуют.
Желчный бульон
Состав: бульон мясопептонный Хоттингера — 800 мл
Желчь бычья нативпая — 200 мл
Приготовление: рН должен быть равен 7,6. Разливают в стерильные пробирки или флаконы. Стерилизуют текучим паром 2 дня по 30 мин.
Среда Рапопорт [Рапопорт М. и Вайнтрауб Л., 1935]
Состав: бульон мясопептонный
или Хоттингера — 900 мл
Желчь бычья — 100 мл
Глюкоза — 20 г
Индикатор Андреде — мл
Приготовление: ингредиенты смешивают, разливают во флаконы с поплавками по 50 мл. Стерилизуют текучим паром три дня по 30 мин.
Среда обогащения ЕЕ [Mossel D. et al., 1963], в модификации Г. П. Калины (1981)
Среда ЕЕ предназначена для накопления сальмонелл и эдвардсиелл.
Принцип действия: желчные соли и относительно токсичный краситель подавляют развитие сопутствующей микрофлоры.
Состав:Пептон — 10 г
Глюкоза — 5 г
Натрий гидрофосфат
(Na2HPО4H20) — 8 г
Калий дигидрофосфат (КН2РО4) — 2 г
Желчь бычья — 20 мл
или
Желчные соли (по Олькеницкому) — 3 г
Бриллиантовый зеленый 0,5%
водный раствор — 3 мл
Вода дистиллированная — 1000 мл
Приготовление: все ингредиенты, кроме красителя, растворяют в воде, стерилизуют при 112°С 15 мин. Затем добавляют бриллиантовый зеленый и разливают в стерильные пробирки по 10 мл.
Приготовление желчных солей по И. С. Олькеницкому (1957)
К 1000 мл желчи (бычьей или свиной) добавляют 40 г гидроокиси натрия (NaOH), перемешивают и помещают в автоклав. Гидролиз проводят при 1,5 атм в течение 3 ч (можно дважды по 2 ч). К гидролизату для осаждения жирных кислот прибавляют 100 мл 20% раствора бария хлорида (ВаСl22H2O) и прогревают в автоклаве 1 ч. На следующий день гидролизаn сливают с осадка и фильтруют. Затем при постоянном помешивании добавляют 20% раствор соляной кислоты (до кислой реакции) и оставляют на 18—20 ч. После этого сливают, промывают водой и прибавляют, нагревая 40% раствор гидроокиси натрия (до щелочной реакции). Полученные натриевые соля желчных кислот выливают на противень и высушивают до порошкообразного состояния в сушильном шкафу при 115 0С.
Среда Эт-1 (Калина Г. П., 1981)
Среда Эт-1 описана как среда обогащения для эдвардсиелл. Принцип действия: основан на относительной устойчивости эдвардсиелл к полимиксину.
Состав: Бульон слабощелочной
(стерильный) — 1000 мл
Глюкоза — 2 г
Розоловая кислота 5%
спиртовой раствор) — 2 мл
Полимиксин — 25 000 ЕД
Приготовление: глюкозу и розоловую кислоту растворяют в бульоне при подогревании, затем кипятят в водяной бане 15—20 мин, добавляют полимиксин и разливают асептически в стерильные пробирки или колбы.
Среда обогащения для протеев — П-1 [Калина Г. П., 1975]
Среда П-1 предназначена для преимущественного обнаружения протеев в патологическом материале и объектах окружающей среды.
Принцип действия: протеи устойчивы к полимиксину, желчным солям и токсичным красителям, подавляющим рост сопутствующей микрофлоры. Мючевина использована в качестве дополнительного источника азота.
Состав: Бульон питательный сухой — 15 г
Вода дистиллированная — 1000 мл
или
Бульон Хоттингера, стерильный — 1000 мл
Маннит — 1 г
Желчные соли (по Ольксницкому) — 5 г
Калий дигидрофосфат (КН2РО4) — 0,8 г
Кристаллический фиолетовый
(0,01% водный раствор) — 20 мл
или
Бриллиантовый зеленый
(0,1%водный раствор) — 5 мл
Мочевина (50% раствор) — 10 мл
Полимиксин — 1 000 000 ЕД
Приготовление: все ингредиенты, кроме мочевины и антибиотика, растворить, хорошо перемешать, профильтровать и стерилизовать кипячением в водяной бане (15 мин). Затем добавить полимиксин, мочевину, тщательно смешать и асептически разлить в стерильные пробирки по 5—6 мл.
Среда обогащения для клебсиелл — К-1 [Калина Г. П.1980]
Среда К-1 узконаправленного действия для обнаружения клебсиелл в патологическом материале или объектах окружающей среды.
Принцип действия: в среду ограниченного минерального состава введены рафиноза (в качестве единственного источника углерода) и мочевина (как единственный источник азота). Указанные вещества не усваиваются многими грамотрицателытыми бактериями или усваиваются лишь в присутствии дополнительных питательных ингредиентов, что делает среду высокоэлективной для клебсиелл. Развитие грамположительной микрофлоры иигибируется введением в среду кристаллического фиолетового.
Состав: Натрий хлорид (NaCl) — 5 г
Магний сульфат (MgSO47H2O) — 0,2 г
Калий дигидрофосфат (КН2РО4) — 2 г
Калий гидрофосфат (К2НРО4) — 2 г
Раффиноза — 2 г
Бромтимоловый синий (1,6%
щелочной раствор) — 2 мл
Кристаллический фиолетовый
(0,01% водный раствор) — 20 мл
Мочевина (50% раствор) — 4 мл
Вода деионизированная или
дистиллированная — 1000 мл
Приготовление: после растворения ингредиентов (кроме мочевины) и кипячения их в водяной бане 15 мин добавляют раствор мочевины и асептично разливают по 4—5 мл в стерильные пробирки.
Буферная среда обогащения для иерсиний [Ющенко Г. В., Дунаев В. И., 1980]
Среда служит при выделении иерсиний для подращивания материала перед высевом на пластинчатые дифференциальные среды.
Состав Натрий хлорид (NaCl) — 8,5 г
Натрий гидрофосфат
(Na2HPО412H20) 1/15 М-раствор — 3 мл
Калий дигидрофосфат (КН2РО4) 1/15 М-раствор — 7 мл
Вода дистиллированная — 990 мл
Приготовление: предварительно готовят по 100 мл 1/15 М-растворов указанных солей. Затем к изотоническому раствору натрия хлорида добавляют указанное количество приготовленных растворов, смешивают, фильтруют, разливают в пробирки по 5—6 мл и стерилизуют при 116 0С 10 мин или 30 мин текучим паром рН среды 7,2.
