- •«Бруцеллез дигностикасындағы жайылмалы агглютинация реакциясы (Райт реакциясы)»
- •«Комплементті байланыстыру реакциясы (кбр) – Вассерман реакциясы»
- •«Хламидиялық инфекция диагностикасындағы иммунофлюоресценция реакциясы (риф)»
- •«Гепатит в вирусы hBs антигеннің пассивті гемагглютинация реакциясында анықтау (пгар)»
- •«Ифа – аив/вич қарсы антиденелерді анықтау»
- •«Туберкулез диагностикасында аллергиялық сынама қою»
- •«Капсуланы Бурри-Гинс бойынша бояу»
- •«Ожешко бойынша спораны бояу»
- •«Циль-Нильсен бояу әдісі»
- •«Микроскопиялық зерттеулер»
- •«Дригальский бойынша таза дақыл бөлу әдісі»
- •«Кох бойынша таза дақыл бөлу әдісі»
- •«Аэробтардың таза дақылын бөлу (зерттеудің 1-2 күндері)»
- •«Аэробтардың таза дақылын бөлу (зерттеудің 3-4 күндері)»
- •«Анаэробтардың таза дақылын бөлу (зерттеудің 1-2 күндері)»
- •Анаэробтардың таза дақылын бөлу (зерттеудің 3-4 күндері)
- •«Анаэробтардың таза дақылын бөлу (Фортнер әдісі)»
- •«Микробтардың антибиотиктерге сезімталдылығын дискі-диффузиялық әдіспен анықтау»
- •«Шыныдағы болжамды агглютинация реакциясы»
- •«Патогенді микрофлораға зерттеу үшін нәжісті алу ережесі»
- •«Бекітілмеген жағынды-препарат дайындау»
- •«Стерилдікке қанды себу»
- •«Грам бойынша бояу»
Анаэробтардың таза дақылын бөлу (зерттеудің 3-4 күндері)
Шаг 1 Үшінші күн. Инкубациядан кейін қанды қантты агарда, пробиркадағы ұзын қантты агарда, темір-сульфитті агарда (Вильсон-Блер ортасы) өскен колонияларды талдау. |
Шаг 2 Анаэробқа типті колонияларды Китта-Тароцци ортасына немесе тиогликоль ортасына қайтара себеді (таза дақыл алу). |
Шаг 3 Таза дақыл бөлуге қоректік орталарды анаэробтық жағдайда термостатта 370С температурада 24-48 сағат инкубациялау. |
Шаг 4 Инкубациядан кейін таза дақылды биохимиялық белгілерін тест-жүйелерде арнайы бактериялық ферменттер немесе метаболиттерін анықтау бойынша немесе классикалық тәсілдермен анықтау. |
Шаг 5 Дақылдардың вирулентті факторлар өнімдерін анықтау: бейтараптау реакциясында экзотоксиндердің серологиялық идентификациясы |
Шаг 6 Қатал анаэробтық жағдайда микробтың антибиотиктерге сезімталдығын анықтау. |
Шаг 7 Соңғы қорытындысы. |
«Анаэробтардың таза дақылын бөлу (Фортнер әдісі)»
Шаг 1 Бактериялық ілмекті жалынның үстінде стерилдеу |
Шаг 2 Стерилді бактериялық ілпекпен қанды қантты агарды ортасынан екіге бөледі |
Шаг 3 Стерилді бактериалық ілпекпен Китта-Тарроци ортасынан анаэроб дақылын немесе зерттеу материалынан тамшы алынады, оны қоректік ортаның бір жартысына себеді. |
Шаг 4 Бактериялық ілмекті жалынның үстінде стерилдеу, аэроб дақылын, мысалы ішек таяқшасын (Escherichia coli) алып және қоректік ортаның екінші жартысына себеді. |
Шаг 5 Материалы бар Петри табақшаларын жауып, анаэробтық жағдайда инкубация жасайды: СО2 инкубаторда, эксикаторда немесе анаэростатта температурасы 370С - 24-48 сағатта. |
Шаг 6 Екінші күні. Инкубациядан кейін себінділерді қарайды, анаэробты бактериялар өсу бөлігінде шыққан күдікті колонияларды белгілейді. |
Шаг 7 Күдікті колониялардан жағынды-препарат дайындап Грам әдісімен бояйды, микроскоптан қарау |
Шаг 8 Қорытынды. Микроскопта ірі спорасы бар грамоң таяқшалар көрінеді |
«Микробтардың антибиотиктерге сезімталдылығын дискі-диффузиялық әдіспен анықтау»
Шаг 1 Пипеткамен немесе дозатормен қоректік орта бетіне микроорганизм қоспасын 0,5 мл көлемде тамызады. Қолданған пипетканы, дозатор наконечнигін дезинфекция ертіндісіне салады. |
Шаг 2 Стерилді бактериологиялық шпательмен микроб тамшысын қоректік агар бетіне жайяды. Қолданған шпательді дезинфекция ертіндісіне салады |
Шаг3 Сәл ашық Петри табақшаларын 10 мин кептіру. |
Шаг 4 Стерилді пинцетпен антибиотик дискілерін микробы бар қоректік орта бетіне салу, егер Петри табақшасы диаметрі 100 мм болса, дискілер 6 аспау керек. Дискілер арасындағы ара-қашықтық 20 мм. |
Шаг 5 Термостатта 37ºС температурада 18-24 сағат инкубация жасау |
Шаг 6 Қорытындысы. Оң нәтижеде антибиотик дискі айналасында микроорганизмнің өсуі тоқтаған (лизис аймағы). Теріс нәтижеде антибиотик дискі айналасында микроорганизмнің өсуі байқалады (лизис аймағы жоқ). |
