26. Биологические основы осеменения, оплодотворения и инкубации икры. Инкубация икры заводским методом. Особенности инкубационных аппаратов различных конструкций.

Заводской метод—инкубация икры на рыбоводных заводах, которые строят вблизи рыбоводных пунктов по сбору икры и которые должны быть обеспечены источниками водоснабжения для питания рыбоводных аппаратов. Завод собирает икру, инкубирует ее в рыбоводных аппаратах и выдерживает личинок. Рыбоводные заводы занимаются разведением лососевых, осетровых и других рыб. При заводе имеются бассейны и пруды для выращивания молоди до покатного размера (размер, при котором молодь скатывается по рекам в море).

Этим методом инкубируют, икру рыб с осенне-зимним и осенне-летним нерестом в аппаратах, установленных в инкубаториях. Оборудованных; водосбрасывающей водоподающей сетью.

Световой поток в инкубаториях должен быть не слишком ярким,  прямой и яркий свет плохо содействует на развитие икры.

Поступаю­щая вода, в инкубационные аппараты, должна быть чистой, богатой кислородом и иметь рН и температуру, соответствующие нор­мальному развитию эмбриона того или иного вида рыб.

Существует много различных конструкций инкубационных ап­паратов.

Все эти аппараты можно разделить на следующие группы.

1. Аппараты для крупной икры лососевых (лососи, форель, дальневосточные лососевые); икра при инкубации находится в состоянии неподвижности.

2. Аппараты для мелкой икры лососевых (белорыбица, сиги, ряпушка); икра при инкубации находится в состоянии постоян­ного движения.

3. Аппараты для обесклеенной икры осетровых (осетр, севрюга, белуга, шип); икра при инкубации находится поочередно (через каждые несколько секунд) в состоянии покоя и движения.

4. Аппараты для не обесклеенной икры осетровых, которая при инкубации находится в состоянии неподвижности.

Инкубация крупной икры лососевых наибольшее приме­нение в рыбоводной практике получили аппараты Коста, Шустера, Вильямсона, а также аппараты по типу желобов и лотков.

Аппарат Коста  представляет собой ящик (дли­на 50 см, ширина 20 см, высота10 см), изготовленный из листово­го железа.

На внутренних сторонах стенок ящика, примерно в 5 см от дна, имеются выступы, на которые кладется деревян­ная рамка, обтянутая металлической сеткой.

Размер ячеи сетки 20 X 3,5 мм или 16 X 3 мм (в зависимости от размера инкуби­руемой икры). На рамку кладут в один слой икринки в количе­стве 2—2,5 тыс. шт.

Аппарат покрыт асфальтовым лаком.

Вода подается у одного края аппарата, протекает над рам­кой с икринками и сбрасывается через носик, сделанный с про­тивоположного края. Расход воды 0,6 л/мин.

В целях экономии воды и площади, предназначаемой для ин­кубатория, аппараты Коста обычно устанавливают на подстав­ках в лестничном порядке в несколько групп.

В каждую группу входят 4—6 аппаратов, снабжающихся водой от одного крана. При таком размещении аппаратов вода поступает из крана в са­мый верхний аппарат, а из него сбрасывается последовательно в нижестоящие  аппараты.

Для обеспечения правильной цирку­ляции воды в аппаратах их размещают так, чтобы сливные но­сики каждого вышестоящего и нижестоящего были в противопо­ложных краях  Установка в одну группу более шести аппаратов Коста не рекомендуется.

В противном случае нижние аппараты будут получать воду, обедненную кислородом и содер­жащую большое количество вредных продуктов обмена из верх­них аппаратов, что приведет к увеличенному отходу икры.

Инкубационный цех оборудуют относительно простыми аппаратами конструкции КрасНИИРХ или более сложными технологическими линиями — АПЛ-Дон.[ ...]

Аппараты для инкубации устанавливают на 20—25 см выше аппаратов для выдерживания предличинок. По мере выклева подвижные эмбрионы выносятся водой по шлангам сливных патрубков из двух инкубационных аппаратов в один аппарат для выдерживания. Оградительную сетку регулярно очищают от оболочек икры мягкой щеткой.[ ...]

Инкубационный аппарат Ющенко используется в основном для икры осетровых. Аппарат состоит из ряда двойных ящиков, которые монтируются на специальном столе фис. 12). Имеются несколько модификаций этого аппарата. Наиболее вместительным аппаратом является Ю-11. Он имеет 4-5 инкубационных секций. В каждой секции монтируется два металлических ящика: наружный металлический прямоугольный и внутренний с закругленными углами и сетчатым дном для размещения икры. Дно внутреннего ящика приподнято над дном наружного для обеспечения свободного проникновения воды через сетку.[ ...]

В инкубационные аппараты подают чистую воду, не содержащую взвесей и с температурой 6...10°С. Содержание растворенного кислорода не должно быть ниже 7 мг/л. С повышением температуры скорость эмбрионального развития увеличивается, а выживание эмбрионов снижается. Икра форели в процессе эмбрионального развития чувствительна к воздействию света. Эта чувствительность увеличивается после оплодотворения до стадии пигментации глаз, а затем снижается, поэтому икру и свободных эмбрионов нужно содержать в темноте.[ ...]

В инкубационных аппаратах сапролегниевые грибы вначале поселяются на мертвых икринках, а затем распространяются на соседние живые. Пораженные икринки становятся белыми, покрытыми пушистым налетом мицелия гриба, который прорастает глубоко внутрь. Пораженные икринки всплывают на поверхность воды или находятся в ее толще и хорошо заметны на фоне здоровых прозрачных икринок (см. рис. 43).[ ...]

27. Биологические основы осеменения, оплодотворения и инкубации икры. Особенности процесса инкубации икры. Уход за икрой, критические периоды в развитии эмбриона.

Во всех существующих способах необходимые для инкубации условия осуществляются за счет непрерывной подачи воды, как правило, артезианской или водопроводной, что в свою очередь требует создания соответствующих гидротехнических сооружений. Это не всегда возможно при мелкомасштабном производстве рыбы в садках, на рыбоводных судах, частных декоративных бассейнах, малых прудовых и других хозяйствах.

Наиболее близким способом того же назначения к заявленному изобретению по совокупности признаков является способ инкубации икры и выдерживания эмбрионов рыб, при котором икру размещают в лотках, скрепленных в лестничном порядке металлической рамой (лотковый инкубатор Садова-Коханской), в процессе инкубации икру содержат в тонком слое проточной воды, подаваемой сверху, а перед вылуплением свободных эмбрионов лотки с икрой помещают в бассейны с проточной водой (Привезенцев Ю.А., Власов В.А. Рыбоводство. - М.: Мир, 2004, 455 с., стр.106-107).

Известный способ применяют для инкубации необесклеенной икры осетровых рыб. Икра приклеивается к лоткам и находится в состоянии неподвижности. Воду, поступающую из трубопровода, предварительно отстаивают для осаждения взвеси, освобождают от планктона и стерилизуют бактерицидной установкой. Вода самотеком проходит от верхнего лотка к нижнему, омывая на своем пути икринки, и отводится в канализацию. Перед вылуплением эмбрионов лотки с икрой помещают в бассейны с проточной водой, где в условиях постоянной проточности воды происходит появление свободных эмбрионов, их выдерживание на протяжении определенного времени, переход вначале на смешанное, а затем целиком на экзогенное питание.

Икру предпочтительно размещать в емкости таким образом, чтобы площадь, приходящаяся на одну икринку, была не менее общей площади ее поверхности.

Икру и эмбрионов желательно содержать в слое воды, толщина которого не превышает 30 мм, а над поверхностью икры составляет 5-10 мм.

Покачивание емкости целесообразно осуществлять 1 раз в 3-5 часов.

Смену воды в емкости предпочтительно осуществлять от одного до трех раз в сутки.

Размещение икры рыб в емкости в один слой и содержание икры и эмбрионов в тонком слое непроточной воды позволяет обеспечить насыщение воды кислородом через ее поверхность путем абсорбции из атмосферы. Содержание в непроточной воде позволяет расширить сферу применения способа на икру неклейкую, обесклеенную, находящуюся в кладках, а также на яйца других гидробионтов.

Для лучшего снабжения кислородом желательно, чтобы площадь емкости, приходящаяся на одну икринку, была не менее общей площади ее поверхности. При более плотном размещении икры возрастает опасность поражения ее сапролегниевыми грибами и усложняется процесс удаления из емкости мертвой и пораженной грибами икры, а при менее плотном - недостаточно эффективно используется площадь емкости.

При абсорбции кислорода из атмосферы существенную роль играет площадь водной поверхности и толщина слоя воды. Чем больше поверхность воды по сравнению с ее общим объемом, тем быстрее кислород может поступать в воду. Поэтому желательно, чтобы общая толщина слоя воды не превышала 30 мм, а над поверхностью икры составляла 5-10 мм.

При меньшей толщине слоя воды велика вероятность быстрого осушения икры в результате испарения воды, а при большей толщине абсорбированный кислород медленно диффундирует в толщу воды и ее насыщение кислородом будет недостаточным.

На протяжении всего времени инкубации проводят постоянные визуальные наблюдения за икрой и кладками яиц с использованием микроскопов, луп, других увеличительных приборов. При установлении начала разрушения оболочек икры при ее гибели или вылуплении эмбрионов дополнительно проводят смену воды до трех раз в сутки и удаляют из лотков оболочки икры. При обнаружении сапрофитных грибов на неоплодотворенной и погибшей икре предпринимают меры по ежедневному удалению пораженной сапролегнией икры. После завершения процесса вылупления всех эмбрионов из емкостей удаляют решетки, субстраты и другие приспособления для размещения икры. В этих же емкостях продолжают процесс выдерживания свободных эмбрионов.

Подготовка воды и применение профилактических средств

Вода, предназначенная для инкубации икры, по температуре и своим гидрохимическим свойствам должна максимально приближаться к природным водам. Чтобы снизить риск поражения икры и личинок болезнетворными микроорганизмами, воду желательно простерилизовать при помощи ультрафиолетового облучения или путем озонирования. При отсутствии ультрафиолетовой лампы или озонатора можно использовать различные профилактические препараты, например <Фунджи стоп>, <Нески профилактик> или же раствор метиленовой синьки. Для этого из рыбоводного или химически чистого метиленового синего красителя готовится трехпроцентный раствор (3 г красителя растворяют в 97 мл воды). Указанный раствор малотоксичен, поэтому добавляется в воду аквариума-инкубатора из такого расчета, чтобы можно было различать икру в аквариуме - в этом случае передозировка практически невозможна.

Побелевшие, неоплодотворенные и деформированные икринки следует по возможности быстро удалять из инкубатора при помощи стеклянной пипетки подходящих размеров. В этом основа так называемой переборки икры. Впоследствии такую же операцию производят с личинками, удаляя уродливых, с выраженными дефектами развития, а также личинок с частично или полностью пораженным грибковыми заболеваниями желточным мешком, который является внутренним источником питания развивающегося организма. По мере развития личинок, уменьшения желточного мешка концентрацию профилактического раствора в инкубаторе постепенно снижают (к моменту перехода личинок на самостоятельное питание она должна быть равна нулю).

Меры гигиены в инкубаторах

В аквариуме, где будет инкубироваться икра, необходимо заранее очистить внутренние стенки и стекла при помощи кристаллов соли или соды. Подобная операция осуществляется периодически (иногда ежедневно) в случае появления загнивающей икры или погибших личинок. Очевидно, что от соблюдения правил гигиены во многом будет зависеть успех в деле разведения рыб в аквариуме.

В случае появления признаков массовой гибели икры по неизвестным причинам следует произвести полную дезинфекцию всего аквариума и используемого в нем оборудования с помощью озона или антисептиков (см. книгу первую).

Подготовка кормовых культур

К моменту перехода личинок на самостоятельное питание в распоряжении аквариумиста должен быть полный набор живых или искусственных, измельченных до нужного размера (их еще называют <пульверизованными>) кормов. Ориентируясь на ожидаемый приплод и основываясь на инструкциях по разведению кормовых культур - инфузорий, коловраток, микрочервя, гриндаля, артемии, - следует заранее подготовить необходимый ассортимент. Поздно думать о подготовке стартовых кормов, если личинки уже начали переходить на самостоятельное питание. Все решают первые часы, а не дни, когда надо, как выражаются профессионалы, <разогнать> кормовую культуру.

Так, в развитии рыб проявление три критические периоды: первый - в начале или посередине дробления, второй - в начале гастроляции и третий - на стадии формирования осевых органов. Икринки на этих стадиях развития особо чувствительные к недостатку кислорода, высокой или низкой температур, механических воздействий и т.п.

28. Биологические основы выращивания посадочного материала. Личиночный период.

Личиночный период начинается с момента перехода на внешнее питание.

Спектры питания обоих видов толстолобиков сходны в личиночном периоде и существенно различаются по мере роста. Различие особенно ярко проявляется, когда в составе планктона преобладают организмы, доступные для белого и не доступные для пестрого толстолобика.

Продолжительность подращивания определяется временем, необходимым для завершения личиночного периода развития.

Эмбрионы с такими нарушениями желтка обычно доживают до выклева, но при переходе в личиночный период развития оказываются нежизнеспособными и погибают в значительных количествах.

Снижение содержания кислорода за пределы оптимума вызывает задержку роста, приводит к увеличению продолжительности личиночного периода развития.

Личиночный период начинается с момента перехода на питание внешним кормом. Личинка вначале сохраняет остатки желточного пузыря, который вскоре рассасывается. Парные конечности у личинки в зачаточном состоянии, по спине и брюшной стороне тянется непрерывная плавниковая складка, служащая как для передвижения, так и для дыхания. Плавниковая складка постепенно дифференцируется (разрывается) на части, из которых развиваются характерные для рыбы плавники Чешуя у личинки в зачаточном состоянии. Личиночный период заканчивается, когда образуются все плавники и тело покрывается чешуей. Обычно конец личиночного периода выражен очень ясно

29. Биологические основы выращивания посадочного материала. Мальковый период, ювенильный период.

Период неполовозрелого организма характеризуется неразвитостью половых органов и отсутствием или слабым развитием вторичных половых признаков. Разделяется этот период на два подпериода: мальковый, когда половые железы в зачаточном состоянии, вторичные половые признаки отсутствуют, и подпериод полувзрослого организма (ювенильный), когда половые железы начали развиваться, можно различить яичники и семенники, но рыбы не способны к размножению. Граница между мальковым и ювенильным подпериодами размыта.

Мальковый период – внешний облик близок к облику взрослого организма. Исчезают личиночные органы, появляются характерные для взрослых органы и функции. Половые органы почти неразвиты. Энергетические ресурсы расходуются главным образом нарост. Вторичнополовые признаки обычно отсутствуют.