- •7.1.3. Отбор образцов готового препарата
- •7.3. Техника проведения контроля стерильности
- •2. Запрещается производить посев пипеткой без груши (ртом).
- •7.4.2. Метод мембранной фильтрации
- •7.5. Учет результатов контроля стерильности
- •7.6. Требования, предъявляемые к боксам
- •9. Испытание на пирогенность
- •11.2.4. Контроль на куриных эмбрионах
- •11.2.2. Контроль на новорожденных мышах
- •11.2.3. Контроль на морских свинках
- •11.3. Контроль на отсутствие микоплазм
- •11.4.2. Контроль на отсутствие микобактерий туберкулеза
- •13. Определение остаточного кислорода в ампулах и флаконах
- •14.2. Метод с использованием фосфорно-вольфрамовой кислоты
- •2. Приготовление 10 и 20%-ного растворов трихлоруксусной кислоты проводят в соответствии с разделом 14.1.1.X
- •18. Определение аминного азота формольным титрованием
- •20. Определение о-ацетильных групп
- •25. Определение агрегатов и фрагментов в препаратах
- •31.2. Спектрофотометрический метод
- •34. Определение гидроксиламина
- •37. Определение натрия хлорида
- •39.2. Анализ препаратов с содержанием сульфат-ионов менее 50 мкг/мл
- •40. Определение ионов аммония
- •41. Определение гликокола
- •47. Определение равномерности розлива
- •48. Методика контроля жидких инъекционных мибп
- •49. Методика контроля на механические включения сухих мибп
7.3. Техника проведения контроля стерильности
Перед внесением в бокс ампулы (флаконы) с препаратами должны быть проверены на герметичность путем тщательного просмотра, а препараты, высушенные под вакуумом, должны быть проверены на вакуум. После этого ампулы (флаконы) обрабатывают методом погружения в 3%-ный раствор перекиси водорода не менее чем на 2 мин.
Лица, проводящие контроль стерильности, непосредственно перед работой в боксе тщательно моют руки с мылом при помощи щетки. В предбокснике обувь меняют на специальную боксовую, надевают стерильный халат, колпак или косынку и 4-слойную марлевую повязку (маску), которая должна закрывать нос и рот. При работе в боксе движения, разговоры, перемещения должны быть максимально ограничены.
В начале и в конце посева образцов каждой серии проводится обработка рук 70° спиртом, а поверхности рабочего стола 96° спиртом с последующим прожиганием (при посеве, насчитывающем более 30 емкостей одной серии, подобная обработка проводится также и в середине посева этой серии).
Перед вскрытием ампул или флаконов оттянутый конец ампулы или горлышко флакона смачивают 96° спиртом и обжигают в пламени горелки.
Исследуемый препарат набирают стерильной пипеткой при помощи ножной или ручной груши, предварительно автоклавированной. Перед забором препарата пустая пипетка проводится через пламя горелки, но не прокаливается. Посев каждого образца препарата производят отдельной стерильной пипеткой на внутреннюю стенку пробирки у раздела сред (необходимо избегать вдувания воздуха в питательную среду). Использованные пипетки, ампулы и флаконы от препаратов помещают в 3%-ный раствор перекиси водорода и оставляют на 24 часа, после чего производится их дальнейшая обработка.
Примечания. 1. Запрещается прокаливать ампулы и пастеровские пипетки в пламени горелки.
2. Запрещается производить посев пипеткой без груши (ртом).
Перед посевом жидких препаратов содержимое ампул или флаконов необходимо встряхивать (т.к. микробы-контаминанты могут осесть на дно).
Образцы сухих препаратов предварительно растворяют тиогликолевой средой или стерильным растворителем (изотонический раствор хлорида натрия, дистиллированная вода и т.п.) в объеме, предусмотренном технической документацией, и после растворения засевают на питательную среду. Стерильность используемого растворителя проверяют путем его посева (по 1 мл) на 2 пробирки, содержащие по 20 мл тиогликолевой среды. Пробирки выдерживают при температуре 30 - 35 °С и 20 - 22 °С соответственно 14 сут. одновременно с опытными пробирками. Посев растворителя для контроля стерильности производят до начала работы и после ее окончания. Если при посеве сухих препаратов используют несколько флаконов растворителя, стерильность каждого должна быть проверена аналогичным способом.
Примечание. Растворение препаратов тиогликолевой средой не используют для метода мембранной фильтрации.
7.4. Схема контроля стерильности
7.4.1. Метод прямого посева
Контролируемый на стерильность образец засевают пипеткой по 1 мл на две пробирки, содержащие по 20,0 мл тиогликолевой среды, одну из которых инкубируют при температуре от 30 до 35 °С для выявления аэробных и анаэробных микроорганизмов, а другую - при температуре от 20 до 25 °С для выявления грибов и бактерий с оптимумом роста в данном температурном режиме. Продолжительность инкубации посевов составляет не менее 14 сут. В течение всего срока проводится их периодический просмотр.
Для препаратов, вызывающих помутнение питательной среды (препараты, содержащие сорбенты, микробную массу, мозговую ткань и т.п.), посев производят по указанной выше схеме, но на 5 - 7 сутки из каждой пробирки производят пересев приблизительно по 0,5 мл на две пробирки, содержащие по 10,0 мл тиогликолевой среды. Все пробирки выдерживают после пересева при соответствующих температурах до окончания инкубации (14 сут.) со дня первичного посева.
Примечание. При необходимости, с учетом особенностей технологии изготовления отдельных видов препаратов, в соответствующей технической документации могут быть регламентированы дополнительные экспериментально обоснованные требования в отношении срока и режима инкубации.
