- •Содержание
- •Сокращения
- •Введение
- •Глава 1. Литературный обзор влияние засухи на микоризацию растений
- •1.1. Роль микоризы в жизни растений
- •1.2. Последствия влияние засухи на сельскохозяйственные растения
- •1.3. Ростстимулирующие бактерий и их влияние на продуктивность и устойчивость растений
- •2.2. Методы исследования
- •2.2.1. Методика посадки семян
- •2.2.2. Обработка семян бактериями Bacillus subtilis
- •2.2.3. Условия произрастания растений в условиях засухи
- •2.2.4. Методика сбора образцов
- •2.2.5. Методика окрашивания корней
- •Глава 2. Объект и методы исследования
- •2.1 Объект и предмет исследования
- •2.2.6. Методика оценки колонизации арбускулярной микоризы растения
- •2.3. Статистическая обработка результатов
- •Глава 3. Результаты и обсуждение влияние почвенной засухи и бактерий bacillus subtilis на рост и микоризацию корней растений
- •3.1. Влияние засухи и бактерий Bacillus subtilis на морфометрические показатели растений
- •3.2. Влияние влажности почвы на показатели микоризации корней растений
- •Список литературы
Глава 2. Объект и методы исследования
2.1 Объект и предмет исследования
В качестве объекта исследования была выбраны сельскохозяйственные культуры: горох ((Pisum sativum L.), сорта Чишминская-99) , кукуруза ((Zea mays L.), сорта РИК-340).
Предметом исследования служила арбускулярная микориза растений и влияние засухи.
2.2. Методы исследования
2.2.1. Методика посадки семян
Для посадки были отобраны крупные ровные семена (по 3 г. семян пшеницы). После отбора и предварительной обработки бактериями производили посев семян в почву. Для эксперимента использована черноземная почва (верхний гумусовый слой) Стерлитамакского района. Поливали почву дистиллированной водой, и накрывали полиэтиленом до наклевывания. На 3-й день, когда семена наклюнулись, убирали пленку. Выращивали в течение 60 дней.
2.2.2. Обработка семян бактериями Bacillus subtilis
Обработку семян бактериями проводили в стерильных условиях (в ламинар-боксе). Готовый препарат бактерий B. subtilis 26Д 109 кл/мл разводили в растворе KCl (0,01%) до концентрации 106 кл/мл. Семена обрабатывали раствором бацилл из расчета на 1г семян 20 мкл клеток бактерий, выдерживались в течение часа, затем производили посадку семян в почву.
Штаммы B.subtilis 26Д (ВНИИСХМ №128) и 11ВМ (ВНИИСХМ №519) предоставлены сотрудниками Башкирского государственного аграрного университета г. Уфа. Разведением в стерильном 0,9%-ном растворе NaCl получали культуры с такой концентрацией, чтобы в сосудах с водорослями число клеток бацилл составляло 106 в 1 см3 .
2.2.3. Условия произрастания растений в условиях засухи
Почвенную засуху имитировали следующим способом. После посева семян почву во всех сосудах поливали дистиллированной водой до влажности 70% от полной полевой влагоемкости, которую определяли расчетным методом [ГОСТ Р 53764-2009 (ИСО 11461:2001). Качество почвы. Определение содержания почвенной влаги в виде объемной доли с применением трубок для отбора пробы грунта. Гравиметрический метод, 2010].
После появления всходов контрольными растениями служили те, которые поливались из расчета создания 70% влажности почвы. Опытные растения (имитация засухи) выращивались в сосудах, в которых влажность почвы поддерживалась на расчетном уровне 30%. Полив проводили через каждые три дня (или по мере начала визуального завядания листьев). Растения выращивали на светоплощадке с фотопериодом 16 ч, при температуре воздуха 22-25оС.
2.2.4. Методика сбора образцов
Через 60 дней извлекали растения из земли аккуратно, не повреждая корней и листьев, промывали в проточной воде. На весах определяли массу побегов. Корни отмывали, окрашивали и анализировали на наличие микоризы.
2.2.5. Методика окрашивания корней
Окрашивание корней производилось по следующему методу [Trouvelot, Kough, Gianinazzi-Pearson, 1986, с. 217-221]:
1. Отбирали корни 10-20 шт. с одного образца.
2. Промывали под проточной водой (при помощи сита), помещали в марлевые мешочки.
3. Раствор 10% КОН доводили до кипения, выключали плитку, помещали марлевые мешочки с образцами в этот раствор на 10 мин. Покоричневение раствора свидетельствовало о процессе очистки.
4. Промывали водой 4-5 раз.
5. Большинство гистологических красителей являются кислыми, поэтому подкисляли корни 2% НСl в течение 15-20 мин.
6. Готовили краситель трепановый синий и добавляли в приготовленный раствор (вода, глицерин, молочная кислота в соотношении 1:1:1 по объему). Нагревали его до кипения, выключали плитку, помещали образцы на 3-4 мин.
7. Промыли 4-5 раз водой. Краситель используется несколько раз.
8. Образцы хранили при температуре 4°С в воде.
