- •Часть I
- •Содержание
- •Тема 1. Физиология растительной клетки 7
- •Тема 2. Водный обмен растений 29
- •Тема 3. Минеральное питание 41
- •Тема 4. Фотосинтез 51
- •Общие методические указания
- •Тема 1. Физиология растительной клетки
- •Ход работы
- •Краткие сведения
- •Ход работы
- •Краткие сведения
- •Ход работы:
- •Работа 4. Влияние температуры на проницаемость клеточных мембран для бетацианина
- •Краткие сведения:
- •Ход работы:
- •Краткие сведения
- •Ход работы
- •Краткие сведения
- •Ход работы
- •Работа 7. Определение сосущей силы (водного потенциала) тканей растений по изменению их размеров (метод Уршпрунга)
- •Краткие сведения
- •Ход работы
- •Работа 8. Определение водного потенциала растительных тканей по изменению концентрации внешнего раствора методом «струек» (по Шардакову)
- •Краткие сведения
- •Ход работы
- •Вопросы и задачи по теме «физиология растительной клетки»
- •Тема 2. Водный обмен растений
- •Работа 1. Определение поглощения воды растением потометрическим методом
- •Краткие сведения
- •Ход работы
- •Работа 2. Изучение состояния устьичного аппарата растений
- •Краткие сведения:
- •Ход работы
- •Метод отпечатков (по Полачи-Молотковскому).
- •Работа 3. Определение интенсивности транспирации весовым методом по л.А. Иванову
- •Краткие сведения:
- •Ход работы
- •Вопросы и задачи по теме «водный обмен растений»
- •Тема 3. Минеральное питание
- •Краткие сведения
- •Ход работы
- •Краткие сведения
- •Ход работы
- •Вопросы и задачи по теме «минеральное питание»
- •Тема 4. Фотосинтез
- •Краткие сведения
- •Ход работы
- •Работа 2. Разделение пигментов листа хроматографическим методом
- •Краткие сведения
- •Ход работы
- •Краткие сведения
- •Ход работы
- •Краткие сведения
- •Ход работы
- •Работа 5. Определение содержания основных пигментов фотосинтетического аппарата в листьях высших растений
- •Краткие сведения
- •Ход работы
- •Работа 6. Образование крахмала в зеленых листьях на свету
- •Краткие сведения
- •Ход работы
- •Ход работы
- •Работа 8. Значение хлорофилла для образования в листьях крахмала
- •Краткие сведения
- •Ход работы
- •Вопросы и задачи по теме «фотосинтез»
- •Литература
- •Практикум по физиологии растений
- •Часть I
- •220050, Минск, Советская, 18.
- •220007, Минск, Могилевская, 37.
Краткие сведения
Биомембрана обладает избирательной проницаемостью. Избирательная проницаемость — способность мембраны пропускать различные вещества с неодинаковой скоростью. Избирательная проницаемость свойственна только живым мембранам. При высокой температуре, действии кислот, щелочей, растворителей липидов, вследствие коагуляции белковых компонентов мембран или вымывания их липидного матрикса она теряет это свойство и беспрепятственно пропускает вещества. Проницаемость мембраны увеличивается при повышении температуры и освещения, при водном дефиците, а также при старении клетки — в результате нарушения естественной структуры мембран.
Установлено, что краска нейтральный красный проникает в живую клетку и накапливается там в значительном количестве. Однако цитоплазма живой клетки имеет слабое сродство к красителю. Одной из причин аккумуляции нейтрального красного в вакуолях живых клеток связана с разностью рН между цитоплазмой и вакуолярным соком. Нейтральный красный накапливается в «кислом компартменте» клетки, так как сам является слабым основанием. Окрашивание цитоплазмы и ядра – признак повреждения клетки. В то же время живая цитоплазма непроницаема для индигокармина и кислого фуксина. На окрашивании этими красителями основано определение жизнеспособности тканей клубней, семян и их зародышей и т.д. Имеется разница в проницаемости пограничных мембран цитоплазмы __ плазмалеммы и тонопласта __ для одних и тех же веществ.
Ионы К+ сравнительно хорошо проникают через плазмалемму и значительно хуже через тонопласт. Накапливаясь в цитоплазме, калий увеличивает ее оводненность, вследствие чего она набухает и приобретает вид колпачков, хорошо различимых на концах плазмолизированного протопласта (колпачковый плазмолиз).
Колпачковый плазмолиз можно наблюдать при использовании гипертонического раствора какой-нибудь калиевой соли, чаще всего нитрата калия. Цитоплазма, обычно покрывающая тонким слоем вакуоль, при набухании становится хорошо видимой. Это позволяет определить локализацию красителя в клетке. Если краситель накапливается в вакуоли, то колпачки цитоплазмы сероватого цвета. В случае накопления красителя в цитоплазме она окрашивается более интенсивно, чем вакуоль. Появление «колпачков» обусловлено разжижающим действием ионов калия, которые относительно быстро проходят через плазмалемму в протопласт, накапливаясь в мезоплазме, и гораздо медленнее проникают из протопласта в вакуоль.
Рис. 1. Колпачковый плазмолиз. 1 – набухшая протоплазма, образовавшая колпачки; 2 – ядро; 3 – вакуоля с окрашенным клеточным соком.
Ход работы
Обнаружение проницаемости пограничных слоев цитоплазмы по отношению к тем или иным веществам основано на выдерживании ткани в соответствующих растворах в течение определенного времени с последующим микроскопированием для выявления локализации этих веществ в клетке. Изучение проницаемости тонопласта и плазмалеммы для разных соединений требует специальных методических приемов. Поэтому они рассматриваются конкретно в каждой задаче.
Задача. Изучить проницаемость пограничных мембран цитоплазмы:
1) для нейтрального красного. Несколько кусочков бесцветного эпидермиса вогнутой стороны луковичной чешуи поместить на два предметных стекла в каплю воды. Убить клетки на одном из стекол, проведя его несколько раз над пламенем спиртовки. Фильтровальной бумагой убрать воду с обоих стекол и нанести на них по капле 0,02% раствора нейтрального красного. Через 10 мин убрать краситель, отмыть ткань водой с помощью пипетки, убрать остатки воды, капнуть на стекло 1 М раствор КNО3. Через 20—30 мин просмотреть клетки под микроскопом. Отметить, одинаковая ли окраска ткани на стеклах, наблюдается ли плазмолиз, какая часть клетки (вакуоль, цитоплазма) окрасилась красителем. (Следует иметь в виду, что среди клеток эпидермиса лука, не подвергавшихся нагреванию, также могут быть нежизнеспособные клетки). Результаты записать по образцу табл. 1.
Таблица 1
Общий вид клетки (рисунок) |
|
без нагревания |
с нагреванием |
|
|
2) для индигокармина. Обработать ткань, как указано в задаче 1. Нанести на два стекла по капле 0,05% раствора индигокармина. Через 20 мин убрать краситель кусочком фильтровальной бумаги и отмыть ткань. Нанести на стекла по капле 1 М раствора КNО3. Через 20—30 мин просмотреть клетки под микроскопом. Сравнить окраску убитой и живой ткани. Отметить, какая часть клетки (цитоплазма, вакуоль) окрасилась красителем, имеется ли плазмолиз. Результаты записать в табл. 2 (аналогичной таблице 1). Сделать вывод о проницаемости пограничных мембран цитоплазмы живой и убитой клетки для индигокармина.
3) для ионов калия. Кусочки эпидермиса выпуклой стороны мясистой чешуи синего лука поместить на предметные стекла в 1 М растворы сахарозы и КNО3. Через 30—40 мин просмотреть клетки под микроскопом. В варианте с сахарозой вакуоль окружена тонким слоем цитоплазмы, тогда как в КNО3 слой цитоплазмы, особенно со стороны поперечных стенок, приобретет значительную толщину в виде «колпачков». Требуется объяснить наблюдаемое явление, а результаты (рисунок клетки) записать по форме табл. 3
Таблица 3
Действующее вещество |
1 М сахароза |
1 М КNО3. |
1М сахароза + 1 М КNО3. |
Общий вид клетки (рисунок) |
|
|
|
4) для эозина. Кусочки эпидермиса вогнутой стороны чешуи бесцветного лука поместить на предметные стекла в 1 М растворы сахарозы + эозин и КNО3 с эозином. Через 30 мин просмотреть клетки под микроскопом. Отметить появление колпачкового плазмолиза, окраску вакуоли и цитоплазмы на обоих стеклах. Результаты записать по форме табл. 4;
Таблица 4
Действующее вещество |
1 М сахароза + эозин |
1 М КNО3 + эозин |
Общий вид клетки (рисунок) |
|
|
Общие результаты работы записать по образцу табл. 5.
Таблица 5
Действующее вещество |
Нейтральный красный |
Индигокармин |
Эозин |
К+ |
Плазмалемма Тонопласт |
|
|
|
|
Отметить наличие проницаемости пограничных мембран цитоплазмы для вещества знаком «+», а отсутствие ___ знаком «___».
Сделать выводы о характере проницаемости пограничных слоев цитоплазмы к различным веществам.
Работа 3. Явления плазмолиза и деплазмолиза
Цель: изучить особенности явлений плазмолиза и деплазмолиза и веществ, их вызывающих
Объекты, реактивы, оборудование: луковица синего лука, 10% глицерин; пинцеты, препаровальные иглы, предметные и покровные стекла, кусочки фильтровальной бумаги, стаканчики с водой, пипетки глазные, микроскопы.
