- •Часть I
- •Содержание
- •Тема 1. Физиология растительной клетки 7
- •Тема 2. Водный обмен растений 29
- •Тема 3. Минеральное питание 41
- •Тема 4. Фотосинтез 51
- •Общие методические указания
- •Тема 1. Физиология растительной клетки
- •Ход работы
- •Краткие сведения
- •Ход работы
- •Краткие сведения
- •Ход работы:
- •Работа 4. Влияние температуры на проницаемость клеточных мембран для бетацианина
- •Краткие сведения:
- •Ход работы:
- •Краткие сведения
- •Ход работы
- •Краткие сведения
- •Ход работы
- •Работа 7. Определение сосущей силы (водного потенциала) тканей растений по изменению их размеров (метод Уршпрунга)
- •Краткие сведения
- •Ход работы
- •Работа 8. Определение водного потенциала растительных тканей по изменению концентрации внешнего раствора методом «струек» (по Шардакову)
- •Краткие сведения
- •Ход работы
- •Вопросы и задачи по теме «физиология растительной клетки»
- •Тема 2. Водный обмен растений
- •Работа 1. Определение поглощения воды растением потометрическим методом
- •Краткие сведения
- •Ход работы
- •Работа 2. Изучение состояния устьичного аппарата растений
- •Краткие сведения:
- •Ход работы
- •Метод отпечатков (по Полачи-Молотковскому).
- •Работа 3. Определение интенсивности транспирации весовым методом по л.А. Иванову
- •Краткие сведения:
- •Ход работы
- •Вопросы и задачи по теме «водный обмен растений»
- •Тема 3. Минеральное питание
- •Краткие сведения
- •Ход работы
- •Краткие сведения
- •Ход работы
- •Вопросы и задачи по теме «минеральное питание»
- •Тема 4. Фотосинтез
- •Краткие сведения
- •Ход работы
- •Работа 2. Разделение пигментов листа хроматографическим методом
- •Краткие сведения
- •Ход работы
- •Краткие сведения
- •Ход работы
- •Краткие сведения
- •Ход работы
- •Работа 5. Определение содержания основных пигментов фотосинтетического аппарата в листьях высших растений
- •Краткие сведения
- •Ход работы
- •Работа 6. Образование крахмала в зеленых листьях на свету
- •Краткие сведения
- •Ход работы
- •Ход работы
- •Работа 8. Значение хлорофилла для образования в листьях крахмала
- •Краткие сведения
- •Ход работы
- •Вопросы и задачи по теме «фотосинтез»
- •Литература
- •Практикум по физиологии растений
- •Часть I
- •220050, Минск, Советская, 18.
- •220007, Минск, Могилевская, 37.
Краткие сведения
Движение цитоплазмы свойственно практически всем живым активно функционирующим клеткам. У одних растений цитоплазма движется с высокой скоростью (клетки листьев водных растений, эпидермальные волоски тыквенных и глоксиниевых), у других — движение ее едва заметно.
Выделяют несколько типов движения цитоплазмы. Рассмотрим лишь два наиболее распространенных — ротационное (циклоз) и циркуляционное.
Циклоз свойствен клеткам, имеющим крупную центральную вакуоль (например, у водных растений). Он заключается в скольжении тонкого пристенного слоя цитоплазмы по периметру клетки. Вместе с током цитоплазмы перемещаются органеллы.
Циркуляционное движение присуще цитоплазме клеток, имеющих несколько крупных вакуолей (например, в волосках тычиночных нитей традесканции). Оно сводится к перемещению цитоплазмы в различных направлениях по цитоплазматическим тяжам, разделяющим вакуоли.
В организации движения цитоплазмы участвуют белки, образующие цитоскелет клетки. Структуры цитоскелета подразделяют на микротрубочки, толстые, тонкие и промежуточные микрофиламенты и микротрабекулы. Цитоскелет — это очень лабильная, постоянно меняющаяся система. Его элементы способны быстро распадаться (деполимеризоваться) и вновь собираться в структуры (полимеризоваться).
Внутриклеточное движение или движение самой клетки зависит главным образом от скольжения одного структурного элемента относительно другого. Это скольжение происходит за счет взаимодействия белков. Два основных белка, ответственных за двигательную систему, существуют во всех клетках. Это немышечные формы актина и миозина.
Движение цитоплазмы активизирует превращение метаболитов и тем самым ускоряет обмен веществ и энергии в клетке.
Движение цитоплазмы — активный процесс, сопровождающийся затратой энергии АТФ. Поэтому оно протекает при определенном температурном оптимуме и соответствующем значении рН среды (4,5—5,0). Непосредственным источником АТФ служит дыхание и фотосинтез.
Скорость движения цитоплазмы зависит также от внешних факторов. Температура, ионы, свет действуют на движение цитоплазмы косвенно, через изменение ее вязкости. При повышении температуры среды до верхней предельной для каждого вида границы вязкость цитоплазмы снижается и движение ее ускоряется. Одновалентные ионы (К+, Nа+) оводняют и разжижают цитоплазму, ускоряя тем самым ее движение, двухвалентные (Са2+, Мg2+), наоборот, замедляют и даже останавливают его. Наличие или отсутствие движения цитоплазмы, изменение его скорости могут указывать на функциональное состояние растительной клетки.
Ход работы
У предварительно подготовленного водного растения, выдержанного не менее двух часов на ярком свету, берут лист вблизи верхушечной почки растения. Помещают его на предметное стекло в каплю воды, покрывают покровным, рассматривают его под микроскопом при увеличении х10. Выбирают несколько клеток, в которых хорошо заметно движение хлоропластов. Обычно это клетки, расположенные вдоль центральной жилки. Здесь количество хлоропластов меньше, а отток ассимилятов наиболее интенсивный. Переводят объектив на увеличение х40, определяют время оборота одного хлоропласта в трех клетках, имеющих приблизительно равный объем. Данные заносят в таблицу, определяют, среднюю величину показателя.
Таблица 1
Объект исследования |
Вариант опыта |
Повторность |
Время оборота хлоропласта, с |
|
|
1 2 3 среднее |
|
Задача. Изучить зависимость скорости движения цитоплазмы от влияния различных факторов. Контролем для всех вариантов являются выдержанные в воде при обычном освещении водные растения. За 2 дня до опыта воду в аквариуме меняют, растения промывают.
От состава воды. Контрольные растения помещают на предметное стекло в воду из аквариума, опытные – в водопроводную, причем температура воды должна быть одинаковой. Определяют время оборота хлоропласта в обоих вариантах, как описано выше.
От интенсивности освещения. Определяют время оборота хлоропласта у контрольных (естественное освещение) листьев элодеи и у опытных, которые освещались в течение 2 часов лампами 60 и 300Вт.
От температуры. Определяют время оборота хлоропласта в клетках листьев элодеи, выдержанных 10 мин при температуре 100, 370, 420С а также у контрольных (комнатной температуры).
От влияния различных концентраций спирта. Молодые листья элодеи помещают на предметное стекло на 10 мин в растворы (2 и 15 капель на 10 мл воды) и определяют время оборота хлоропластов в контрольных (вода) и опытных растениях.
От влияния различных концентраций глюкозы. Листья элодеи выдерживают 10 мин в 0,1 и 0,001 М растворах глюкозы и определяют время оборота хлоропласта в контрольном (вода) и опытном вариантах.
От влияния ионов калия. Определяют время оборота хлоропластов в клетках листьев элодеи, которые находились 10 мин в 0,1 и 0,3 М растворах КNО3 и контрольных (вода).
От возраста листа. В основании, середине, верхушке веточки элодеи берут по листочку и определяют время оборота хлоропластов в различных по возрасту листьях растения.
Полученные усредненные данные записывают в итоговую таблицу.
Таблица 2
№ п/п |
Вариант опыта |
Время оборота хлоропласта, с |
||||
1 |
2 |
3 |
среднее |
|||
1. |
Интенсивность освещения |
Естественное освещение (контроль) |
|
|
|
|
60 Вт |
|
|
|
|
||
300 Вт |
|
|
|
|
||
2. |
Температура |
200С(контроль) |
|
|
|
|
100С |
|
|
|
|
||
370С |
|
|
|
|
||
420С |
|
|
|
|
||
3. |
Влияние различных концентраций спирта |
Вода (контроль) |
|
|
|
|
2 капли/10 мл воды |
|
|
|
|
||
15 капли/ 10 мл воды |
|
|
|
|
||
4. |
Влияние ионов калия |
Вода (контроль) |
|
|
|
|
0,1 М КNО3 |
|
|
|
|
||
0,3 М КNО3 |
|
|
|
|
||
5. |
Возраст листа |
Молодой |
|
|
|
|
Зрелый |
|
|
|
|
||
Старый |
|
|
|
|
||
Анализируют итоговую таблицу, делают вывод о влиянии различных факторов внешней и внутренней среды на скорость движения цитоплазмы элодеи, предварительно объяснив механизм этого влияния. Обсуждают достоинства и недостатки каждого варианта, возможность их использования при демонстрации данного явления в школе.
Работа 6. Определение потенциального осмотического давления клеточного сока методом плазмолиза
Цель: определить осмотическое давление клеточного сока синего лука плазмолитическим методом.
Объекты, реактивы, оборудование: Луковица синего лука с чешуями, 1М раствор сахарозы или KNO3, безопасные бритвы, микроскопы, предметные и покровные стекла, бюксы, градуированные пипетки на 10 мл, препаровальные иглы, часы, фильтровальная бумага, термометр.
