3.2 Фунгицидные свойства покрытий на примере Mucor Mucedo

Проверка фунгицидных свойств покрытия проводилась согласно пункту  2.5.

Результаты эксперимента показаны в таблице 3.

Таблица 3 – Результаты по определению фунгицидной активности

Название	Количество колоний через 48 ч.
	1 повторность	2 повторность	Среднее количество колоний
Контроль	2	15	8,5
MnCl2	9	38	23,5
PbCl2	5	6	5,5
CdCl2	0	4	2
KMnO4	8	6	7
ZnCl2	20	16	18
AgNO3	32	6	19
CuCl2	2	14	8

Из таблицы 3 видно, что у покрытия с CdCl₂ лучшие результаты по сравнению с контролем. А часть покрытий оказало стимулирующее действие на рост плесени.

Согласно известным данным соли тяжелых металлов оказывают неоднозначное воздействие на рост и морфологию Mucor Mucedo, играя роль либо стимулятора, либо сильного токсиканта в зависимости от концентрации и вида металла. Высокой токсичностью обладали сульфаты меди (в концентрациях 5-15 мг/л) и цинка (в концентрациях 10-15 мг/мл). Малые концентрации большинства растворов оказывали стимулирующее влияние на данный тест-объект. По результатам проведенного эксперимента был составлен градиент токсичности солей тяжелых металлов по мере их убывания: Cu – Zn –Mn [5].

Обдумывая процесс воздействия поверхности покрытия с Mucor Mucedo, допускается еще одна теория, согласно которой полупроводники (в этом случае ими являются покрытия) с фотокаталитическими свойствами обладают самостерилизующимися свойствами. При внесении дополнительной энергии (чаще всего кванта ультрафиолета), превышающей ширину запрещенной зоны происходит возбуждение электрона (ē) и его переход из валентной зоны в зону проводимости, где он акцептируется кислородом. В результате в валентной зоне формируется электронная вакансия – дырка (h+), которая также принимает участие в формировании активных форм кислорода (АФК). Образуемые на поверхности покрытия АФК окисляют мембрану адсорбированных микроорганизмов, что приводит к бактериолизу. Среди механизмов бактерицидности фотоиндуцированных покрытий отмечены также: окисление бактериальных ферментов, перекисное окисление как мембранных, так и не мембранных ненасыщенных жирных кислот, снижение рН, окисление нуклеоида и плазмидной ДНК, а также РНК бактериальных клеток.

Согласно этой теории, были проведены тесты, в ходе которых испытываемая поверхность освещалась видимым и УФ-светом в течение 1 часа.

В результате облучения видимым светом были получены следующие результаты, представленные в таблице 4 и 5.

Таблица 4 – Фунгицидная активность покрытий, индуцированных видимым светом, рост колоний 38 часов

Название	Количество колоний через 38 ч.
	1 повторность	2 повторность	Среднее количество колоний
Контроль	15	6	10,5
MnCl2	15	2	8,5
PbCl2	12	–	12
CdCl2	3	5	4
KMnO4	13	8	10,5
ZnCl2	3	8	5,5
AgNO3	40	10	20
CuCl2	12	1	6,5
SnCl4	33,25	21	26,3

Таблица 5 – Фунгицидная активность покрытий, индуцированных видимым светом, рост колоний 48 часов

Название	Количество колоний через 48 ч.
	1 повторность	2 повторность	Среднее количество колоний
Контроль	65	50	57,5
MnCl2	50	24	37
PbCl2	20	–	20
CdCl2	20	23	21,5
KMnO4	39	23	31
ZnCl2	8	13	10,5
AgNO3	80	65	72,5
CuCl2	35	14	24,5
SnCl4	64	110	87

После облучения видимым светом, лучшую фунгицидную активность проявили CdCl₂, PbCl₂, ZnCl₂, CuCl₂. Это объясняется полупроводниковыми свойствами этих покрытий.

В результате облучения УФ-светом были получены следующие результаты, представленные в таблице 6.

Для отсечения «жесткого» ультрафиолета, обладающего собственной бактерицидной активностью (λ <340 нм), необходимо использовать светофильтр УФС-6.

Таблица 6 – Фунгицидная активность покрытий, индуцированных УФ- светом, рост колоний 48 часов

Название	Количество колоний через 48 ч.
	1 повторность	2 повторность	Среднее количество колоний
Контроль	44	21	32,5
MnCl2	19	6	12,5
PbCl2	0	15	7,5
CdCl2	6	0	3
KMnO4	8	7	7,5
ZnCl2	0	15	7,5
AgNO3	36	62	49
CuCl2	3	0	1,5
SnCl4	8,5	17	11,3

После облучения УФ-светом все образцы, кроме AgNO₃, проявили фунгицидную активность.