96. Вказати основні схожості та відміності рибосом еукаріот і прокаріот.

97.Білки мембран . Поверхневі транс мембрані. Структура та функції .

Белки могут быть частично или полностью погружены в мембрану (интегральные белки) либо располагаться на ее поверхности (периферические белки).Погруженная часть интегральных белков гидрофобна, содержит большое количество аминокислот с гидрофобными радикалами. Гидрофобные взаимодействия обеспечивают удерживание белков в липидном слое мембраны и их определенную ориентацию: белок с гидрофильной выступающей частью не может повернуться этой частью в гидрофобный слой.

Часть мембранных белков представлена углеводсодержащими белками гликоп-ротеинами. Гликопротеины обнаруживаются преимущественно в плазматических мембранах. Углеводную часть (простетическую группу) этих белков составляют ко-валентно присоединенные моносахаридные остатки или олигосахаридные цепи.

Многие интегральные белки прошивают мембрану насквозь, выступая за ее пределы по обе стороны. Примером может служить углеводсодержащий белок глико-форин, входящий в состав плазматической мембраны эритроцитов. На

его долю в этой мембране приходится около 10 % от всех белков. Пептидная цепь гликофорина содержит примерно 200 аминокислотных остатков; к пептиду присоединено около 20 олигосахаридных цепей длиной по 12 моносахаридов.При этом гидрофильная концевая часть с углеводами оказывается на наружной поверхности мембраны, а С-концевая часть, тоже гидрофильная, но без углеводных цепей — на внутренней поверхности. Мембрана каждого эритроцита содержит около 300 тысяч молекул гликофорина.

Белковый состав разных мембран различен. Например, плазматическая мембрана клеток печени содержит сотни разных белков, а мембраны наружных сегментов палочек сетчатки глаза — лишь несколько белков, в основном родопсин (зрительный пурпур).

В мембране эритроцитов белки занимают 25 % поверхности мембраны; остальные 75 % приходятся на липиды. В некоторых других мембранах площадь, занимаемая белками, больше, до 2/3 всей поверхности.

Белки мембран выполняют разные функции: это могут быть и структурные белки, и ферменты, и белки, осуществляющие трансмембранный перенос веществ, и рецепторы гормонов или других сигнальных молекул. Упомянутый выше родопсин зрительных палочек улавливает свет: это первый акт в цепочке молекулярных событий, ведущих к зрительному ощущению.

98.Мейоз особливості метафази 1 Анафази 1 телофази 1.

В метафазе мейоза I биваленты хромосом располагаются в экваториальной плоскости клетки. В этот момент спирализация их достигает максимума. Содержание генетического материала не изменяется (2п2хр).

В анафазе мейоза I гомологичные хромосомы, состоящие из двух хроматид, окончательно отходят друг от друга и расходятся к полюсам клетки. Следовательно, из каждой пары гомологичных хромосом в дочернюю клетку попадает только одна — число хромосом уменьшается вдвое (происходит редукция). Содержание генетического материала становится 1n2хр у каждого полюса.

В телофазе происходит формирование ядер и разделение цитоплазмы — образуются две дочерние клетки. Дочерние клетки содержат гаплоидный набор хромосом, каждая хромосома — две хроматиды (1n2хр).

Интеркинез — короткий промежуток между первым и вторым мейотическими делениями. В это время не происходит репликации ДНК, и две дочерние клетки быстро вступают в мейоз II, протекающий по типу митоза.

99.Принцип будови фазоконтрасного мікроскопа.

Светлопольный метод дает хорошие результаты для окрашенных и контрастных объектов. Но для увеличения контрастности изучаемых объектов необходимо сильно закрывать диафрагму конденсора, что приводит к уменьшению разрешающей способности микроскопа.

Увеличение контрастности в темном поле тоже имеет свои недостатки. При темнопольном методе исследования наблюдается картина противоположная контрастному изображению в светлом поле. Темные места в темном поле будут светлыми, а светлые - темными. Кроме того, темнопольная микроскопия позволяет увидеть только контуры микрообъекта, но не дает возможности изучить внутреннюю структуру клетки или микроорганизма.

Перечисленные недостатки исключает метод фазово-контрастной микроскопии. Основное достоинство данного метода заключается в том, что при его помощи получают чрезвычайно контрастные изображения в светлом поле живых неокрашенных клеток и тканей.

Впервые фазово-контрастный микроскоп был разработан в начале ХХ века Фрицем Цернике. Ученый разработал систему колец, которые были расположены в линзах объектива и конденсора. Новый ультрамикроскопический метод стал востребованным лишь после окончания войны и оказался настолько продуктивным и прогрессивным, что первооткрывателю, в 1953 году, была присуждена Нобелевская премия по физике.

Сущность фазово-контрастного метода заключается в преобразовании фазовых смещений светловых волн, которые образуются при прохождении через полупрозрачные элементы препарата в колебания с иной амплитудой.

Практическое осуществление метода фазового контраста достигается следующим образом. В передней фокальной плоскости конденсора вместо ирисовой диафрагмы установлена кольцеобразная диафрагма, которая изображается в выходном зрачке объектива вблизи заднего фокуса. Фазовая пластинка с фазовым кольцом помещается в плоскости зрачка выхода объектива. Размеры кольца равны размерам изображения кольцевой диафрагмы конденсора. Фазовое кольцо поглощает значительную часть прямо прошедшего света и сдвигает амплитуду световых колебаний.

Фазовое кольцо представляет собой вытравленную канавку. Таким образом, лучи, не отклоненные объективом, проходят в пластине несколько меньший слой стекла, чем диафрагмированные лучи и фаза прямо прошедшего света опережает фазу диафрагмированного. Элементы препарата с большим коэффициентом преломления становятся более темными. Описанная выше методика носит название «позитивный фазовый контраст».

Если фазовое кольцо представляет собою тонкую кольцеобразную пленку из прозрачного вещества, то прямые лучи проходят с некоторым запаздыванием и элементы препарата с большим коэффициентом преломления выглядят более светлыми. Данная методика получила название «негативный фазовый контраст»

В основном фазово - контрастный микроскоп применяется в микробиологических и цитологических исследованиях - изучении различных видов живых микроорганизмов на различных стадиях жизненного цикла, в исследованиях структуры клеток (хромосомы, ядра, аппарат Гольджи) и при анализе изменений, вызванных различными химическими агентами.

Широко используется фазово-контрастный микроскоп в клинических лабораториях при изучении осадков мочи, вагинальных выделений, эякулята, для счета и изучения рекулоцитов и кровяных пластинок, для исследования простейших и их цист, живых бактерий, процессов агглютинации, вирусов и вирусных телец, кроме того при исследовании материала биопсий.

Ведущие компании по разработке и производству микрооптических систем комплектуют биологические микроскопы оборудованием для проведения фазово - контрастной микроскопии. Компания «Micros» предлагает подобный набор для микроскопов МС 100, МС 300 и MC 300X ERGO.