Мпк (мин. Концентрация лекарства, подавляющая рост бактерий)

Для количественного определения чувствительности выделенных штаммов бактерий к антибиотикам используют метод последовательных разведении. Взвесь бактерий высевают на жидкие или плотные питательные среды, содержащие возрастающие концентрации антибиотика. О чувствительности бактерий судят по минимальной концентрации антибиотика, подавляющей их рост, - МПК. Содержимое пробирок (чашек Петри), в которых бактериального роста не было, пересевают на свежие питательные среды. Концентрация антибиотика в пробирке (чашке Петри), из которой получить субкультуру не удалось, является минимальной бактерицидной - МБК.

МПК - минимальная подавляющая концентрация лекарственных средств.

3.4 . Борьба с лекарственной устойчивостью

Для борьбы с лекарственной устойчивостью, т. Е. Преодоления резистентности микроорганизмов к химиопрепаратам, существует несколько путей:

создание новых химиотерапевтических средств, отличающихся механизмом антимикробного действия (например, созданная в последнее время группа химиопрепаратов - фторхинолоны) и мишенями, 

постоянная ротация (замена) используемых в данном лечебном учреждении или на определенной территории химиопрепаратов (антибиотиков), 

комбинированное применение бета-лактамных антибиотиков в комбинации с ингибиторами бета-лактамаз (клавулановая кислота, сульбактам, тазобактам), 

и главное - соблюдение принципов рациональной химиотерапии. 

4.2 Стерилизация — обеспложивание, т. е. полное уничто­жение вегетативных форм микроорганизмов и их спор в различных материалах. Стерилизацию проводят физическими методами: 1) воздействием высокой температуры: 2) путем ультрафиолетового облучения; 3) механическим путем — фильтра­цией жидкостей через бактериальные фильтры, а также хи­мическими методами.

Физические методы стерилизации. 1. Прокаливание в пламени спиртовки или газовой горелка Данный способ применяется ограниченно, например для' стерилизации бактериологических петель, препаровальных игл, пинцетов.

Стерилизация кипячением. Этим методом стери­лизуют шприцы, мелкий хирургический инструментарий, пред­метные и покровные стекла и некоторые другие предметы. Их помещают в стерилизаторы, в которые наливают воду. Для устранения жесткости и повышения температуры кипения к воде добавляют 1—2% раствора бикарбоната натрия Кипячение производят не менее чем 30 мин. Однако данный метод не обеспечивает полной стерилизации, так как некоторые вирусы (например, вирус гепатита) и споры бактерий могут остаться жизнеспособными.

Стерилизация сухим жаром, или суховоз- душная стерилизация в сушильном шкафу (пе­чи Пастера). Метод основан на бактерицидном действии нагретого до 165—180°С воздуха. При более высокой температу­ре происходит обугливание ватных пробок, бумаги, в которую завернута посуда, а при более низкой температуре требуется больший срок стерилизации. Сухим жаром стерилизуют стек­лянную посуду: чашки Петри, пробирки, пипетки и др.

Стерилизация паром под давлением в ав­токлаве (см. рис. 2).

Один из наиболее эффективных методов стерилизации, который широко применяется не только в микробиологической практике, но и в клинической медицине. Работа с автоклавом требует точного выполнения специальной инструкции и соблюдения правил безопасности. Многие питательные среды, перевязочный материал, белье стерилизуют при давлении 1 атм в течение 15—20 мин, питательные среды с углеводами—при 0,5 атм в течение 15 мин, а обеззараживание инфицированного материала производят при 1,5—2 атм в течение 20—25 мин (табл. 3).

Максимальную температуру пара измеряет максимальным термометром, который помещают в автоклав вместе со стери-

лизуемым материалом. В некоторых случаях используют хими­ческие вещества с определенной температурой плавления: бен­зонафтол (110°), бензойную кислоту (120°С).

Стерилизация текучим паром в аппарате Коха или в автоклаве. Данный вид стерилизации (при незавинченной крышке и открытом выпускном кране) основан на антибактериальном действии пара в отношении вегетативных клеток. Он применяется в тех случаях, когда стерилизуемый материал не выдерживает высокой температуры, например питательные среды с витаминами, углеводами. Для полного обеспложивания применяют принцип дробной стерилизации, т. е. стерилизуют материал при 100°С (или 80-90°С) в течение 20—30 мин 3 дня подряд. При этом вегетативные клетки поги­бают, а споры сохраняются и за супси прорастают. Последующее двукратное прогревание обеспечивает достаточно надежную стерильность материала.

Тиндализация. Дробная стерилизация материалов при 58—56°С в течение часа 5-6 дней подряд. Применяется для стерилизации легко разрушающихся при высокой температуре веществ (сыворотка крови, витамины и др.).

Пастеризация. Данный метод основан на антибакте­риальном действии температуры в отношении вегетативных клеток, но не бактериальных спор. Нагревание материала про­изводится при температуре 50-65°С в течение 15—30 мин или 70—80°С в течение 5—10 мин с последующим быстрым охлажде­нием. Обычно пастеризуют напитки и пищевые продукты (вино, пиво, соки, молоко и др.).

Стерилизация ультрафиолетовыми лучами. Метод основан на бактерицидном действии УФ-лучей с дли­ной волны 260—300 мкм. Для стерилизации воздуха в боксах, операционных, детских учреждениях используют бактерицидные лампы разной мощности (БУВ-15, БУВ-30).

Механическая стерилизация (фильтрование). Данный метод основан на механической задержке микроорганизмов и их спор мелкопористыми фильтрами с определенным диаметром

пор. В лабораторной практике широко применяется фильтра­ция материала через асбестовые и мембранные фильтры с разным диаметром пор. Эти фильтры помещают в разъемную часть цилиндрической воронки Зейтца, обе части которой скрепляются барашкообразными болтами. Трубчатый конец воронки через резиновую пробку вставляют в колбу Бунзена. Перед фильтрацией вся смонтированная система с асбестовым фильтром стерилизуется в автоклаве. Мембранные фильтры стерилизуют отдельно кипячением, а потом вставляют в стерильную воронку Зейтца. Фильтрация проводится с помощью вакуум-насоса, к которому присоединяют колбу Бунзена (рис. 28).

Асбестовые фильтры выпускаются диаметром 35 и 140 мм; различают фильтрующую марку (ф) и стерилизующую (сф). Мембранные фильтры представляют собой пластинки толщи­ной около 0,1-0,5 мм и диаметром 35 мм из нитроклетчат­ки или ацетилцеллюлозы. В зависимости от размеров пор эти фильтры имеют номера 1—5 (размеры пор соответствен­но равны 350—1200 нм). Оба типа фильтров рассчитаны на однократное применение. Фильтрование используют для стерилизации жидких материалов, не выдерживающих нагре­вания (сыворотка крови, антибиотики), для получения бакте­риальных токсинов, фагов и разных продуктов жизнедеятель­ности бактерий.

Химические методы стерилизации. Используют различные химические вещества (см. с. 37), обладающие бактерицидным свойством, но в лабораторной практике применяют ограни­ченно.

Изучение антибактериального действия высоких температур.

В три пробирки с питательным бульоном поместить шелко­вые нити, смоченные смесью споровой и неспоровой куль­тур. Первую пробирку подвергнуть автоклавированию, вто­рую — кипячению; третью (контроль) никакому воздействию не подвергать. Посевы выдержать в термостате при 37°С в течение 24 ч. Отметить результат поставленного опыта и сделать заключение.

Изучение антибактериального действия Уф-лучей. Суспен­зию стафилококка или Е. coli в изотоническом растворе хлорида натрия в объеме 1 мл поместить на стерильное часовое стекло и облучить лампой БУВ-30 в течение 15 мин на расстоянии 10—20 см от центра лампы. Облученную и не- облученную (контроль) суспензии бактерий засеять в пита­тельный бульон и инкубировать при 37°С в течение 16—24 ч, после чего отметить результаты: отсутствие помутнения среды связано с гибелью облученной культуры бактерий, в контроле — наличие роста (помутнение).

Определение антимикробного действия антисептических и дезинфицирующих веществ. 1. Приготовить два вида тест-объек- тов: а) шелковые нити, смоченные культурой Е. coli; б) шел­ковые нити, смоченные спорообразующей культурой (с боль­шим содержанием спор). Нити поместить в растворы фено­ла (5%), лизола (5%), хлорной извести (10%) на 5 и 60 мин, после чего отмыть от исследуемых веществ, засеять в пита­тельный бульон и поместить в термостат до следующего дня. Контрольные тесты не подвергать действию химических веществ. Отметить результат поставленного опыта и сделать заключение.

Диски из фильтровальной бумаги смочить растворами исследуемых веществ и поместить на поверхность питатель­ ного агара в чашке Петри, засеянной (газоном) тест-культу­рой стафилококка или кишечной палочки. Чашки инкубиро­вать в течение суток при 37°С. Об антибактериальном дейст­вии исследуемых веществ судят по зонам задержки роста бактерий, образующихся вокруг дисков.

4.3,4 Асептика —система мероприятий, предупреждающих вне­сение (попадание) микроорганизмов из окружающей среды в ткани или полости человеческого организма при лечебных и диагностических манипуляциях, а также в материал для исследования, в питательные среды и культуры микроорганиз­мов при лабораторных исследованиях. Асептика предусмат­ривает стерилизацию инструментов и материалов, спе­циальную обработку рук медицинских работников, соблю­дение особых санитарно-гигиенических правил и приемов работы. Методы и правила асептики должны строго соблю­даться при производстве лечебных и профилактических пре­паратов, а также в работе микробиологических Лабораторий. Антисептика — комплекс лечебно-профилактических мероприятий, направленных на уничтожение микроорганизмов, способных вызвать инфекционный процесс на поврежденных или интактных участках кожи и слизистых оболочек. В ка­честве антисептиков используются различные химические сое­динения, оказывающие антимикробное действие: 70% этило­вый спирт, 5% спиртовой раствор йода, 0,5—2 % раствор хлорамина, 0,1% раствор КМп0₄, 0,5—1% раствор формалина, 1—2% спиртовые растворы метиленового синего или бриллиан­тового зеленого, различные детергенты. Антимикробные вещества добавляют также к различным материалам используемым для изготовления перевязочных средств, лейкопластырей, для пломбирования зубов, изготов¬ления зубных протезов и т. а с целью придания им бак¬терицидных свойств.

5.1 Микрофлора организма человека

Организм человека заселен (колонизирован) примерно 500 видами микроорганизмов, составляющими его нормальную микрофлору, в виде сообщества микроорганизмов (микробиоце­ноз). Они находятся в состоянии равновесия (эубиоз) друг с другом и организмом человека. Микрофлора колонизирует по­верхность тела и полости, сообщающиеся с окружающей средой. В норме микроорганизмы отсутствуют в легких, матке и во всех внутренних органах. Различают нормальную микрофлору различ­ных биотопов — кожи, слизистых оболочек рта, верхних ды­хательных путей, пищеварительного тракта и мочеполовой си­стемы.

В организме человека выделяют резидентную и транзиторную микрофлору. Резидентная (постоянная, облигатная) микрофлора представлена микробами, постоянно присутствующими в орга­низме. Транзиторная (непостоянная) микрофлора не способна к длительному существованию в организме. Организм человека и его нормальная микрофлора составляют единую экологическую систему.

Формирование микрофлоры новорожденных начинается с попадания микроорганизмов в процессе родов на кожу и сли­зистые оболочки. Дальнейшее формирование микрофлоры опре­деляется санитарным состоянием среды, в которой проходили роды, типом вскармливания и др. Нормальная микрофлора становится устойчивой к 1—3 мес жизни и сходной с микро­флорой взрослого. Количество микроорганизмов у взрослого человека составляет около 10^м, причем значительно преоблада­ют облигатные анаэробы.

Микроорганизмы, составляющие нормальную микрофлору, заключены в высокогидратированный экзополисахаридно-муци- новый матрикс, образуя биологическую пленку, устойчивую к различным воздействиям. На коже в ее более глубоких слоях (волосяных мешочках, просветах сальных и потовых желез) анаэробов в 2—10 раз больше, чем аэробов. Кожу колонизируют пропионибактерии, коринефюрмные бактерии, стафилококки, стрептококки, дрожжи, дрожжеподобные грибы Malassezia, редко микрококки, Мус. fortuitum. В норме на 1 см² кожи при­ходится менее 80 ООО микроорганизмов, и это количество не увеличивается в результате действия бактерицидных стерилизу­ющих факторов (в поте кожи обнаружены иммуноглобулины классов А и G, трансферрин, лизоцим, органические кислоты и другие противомикробные вещества). Процесс самоочищения кожи усиливается на чисто вымытой коже. Усиленный рост мик­роорганизмов происходит при загрязнении кожи; при снижении сопротивляемости организма размножающиеся там микроорга­низмы определяют запах тела. Через грязные руки происходит контаминация (загрязнение) лекарственных средств микроорга­низмами, что приводит к порче препаратов.

Микрофлора кожи имеет большое значение в распростране­нии микроорганизмов в воздухе. В результате десквамации (ше­лушения) кожи несколько миллионов чешуек, несущих каж­дая по несколько микроорганизмов, загрязняют окружающую среду.

В верхние дыхательные пути попадают пылевые частицы, «на­груженные» микроорганизмами, большая часть которых задер­живается в носо- и ротоглотке. Здесь обитают бактероиды, ко­ри неформные бактерии, гемофильные палочки, пептококки, лак­тобактерии, стафилококки, стрептококки, непатогенные нейс- серии и др. Трахея и бронхи обычно стерильны.

Микрофлора пищеварительного тракта является наиболее представительной по качественному и количественному составу Микроорганизмы свободно обитают в полости пищеварительно­го тракта, а также колонизируют слизистые оболочки в виде биологической пленки.

В полости рта анаэробов больше, чем аэробов, в 10 раз и более. Здесь обитают бактероиды, бифидобактерии, эубактерии, фузобактерии, лактобактерии, актиномицеты, гемофильные палочки, лептотрихии, нейссерии, спирохеты, стрептококки, стафилококки, вейлонеллы и др. Обнаруживаются также грибы рода Candida и простейшие. Ассоцианты нормальной микрофло­ры и продукты их жизнедеятельности образуют зубной налет.

Микрофлора желудка представлена лактобактериями и дрож­жами, единичными грамотрицательными бактериями. Здесь мик­рофлора несколько беднее, чем, например, в кишечнике, так как желудочный сок имеет низкое значение pH, неблагопри­ятное для жизни многих микроорганизмов. При гастритах и яз­венной болезни желудка обнаруживаются изогнутые формы бак­терий, относящихся к роду Helicobacter, которые являются эти­ологическими факторами многих патологических процессов.

В тонкой кишке микроорганизмов больше, чем в желудке. Здесь обнаруживаются бифидобактерии, клостридии, эубакте­рии, лактобактерии, анаэробные кокки. Наибольшее количество микроорганизмов накапливается в толстой кишке. В 1 г фекалий содержится до 250 млрд микробных клеток. Около 95 % всех видов микроорганизмов составляют анаэробы. Основными пред­ставителями микрофлоры толстой кишки являются: грамполо- жительные анаэробные палочки (бифидобактерии, лактобакте­рии, эубактерии); грамположительные спорообразующие ана­эробные палочки (клостридии перфрингенс и др.); энтерокок­ки; грамотрицательные анаэробные палочки (бактероиды); грам- отрицательные факультативно-анаэробные палочки (кишечные палочки и сходные с ними бактерии сем. Enterobacteriaceae — цитробактер, энтеробактер, клебсиеллы, протей и др.). В мень­ших количествах обнаруживаются фузобактерии, пропионибак- терии, вейлонеллы, пептококки, стафилококки, синегнойная палочка, дрожжеподобные грибы, а также простейшие, вирусы, включая фаги. На эпителии хорошо развиваются спирохеты.

Нормальная микрофлора влагалища включает бактероиды, лактобактерии, пептострептококки, бифидобактерии и др.

Микрофлора организма человека служит своеобразным «эк­стракорпоральным органом», играющим важную роль в жизне­деятельности человека. Она является антагонистом гнилостной микрофлоры, так как продуцирует молочную и уксусную кислоты, антибиотики и др. Известна ее роль в водно-солевом обмене, регуляции газового состава кишечника, обмене белков, углеводов, жирных кислот, холестерина и нуклеиновых кислот, а также в продукции биологически активных соединений — ан­тибиотиков, витаминов, токсинов и др.

Микрофлора выполняет морфокинетическую роль в разви­тии различных органов и систем организма; она участвует в физиологическом воспалении слизистой оболочки и смене эпи­телия; переваривании, детоксикации экзогенных субстратов и метаболитов, что сравнимо с функцией печени. Нормальная мик­рофлора выполняет также антимутагенную роль, разрушая кан­церогенные вещества в кишечнике. В то же время некоторые бактерии могут продуцировать сильные мутагены. Пристеночная микрофлора кишечника колонизирует слизистую оболочку, об­разуя своеобразную биологическую пленку, состоящую из мик­робных тел и экзополисахаридного матрикса. Экзополисахариды микроорганизмов, называемые гликоксшиксом, защищают мик­робные клетки от разнообразных физико-химических и биоло­гических воздействий. Слизистая оболочка кишечника также на­ходится под защитой биологической пленки.

Микрофлора кишечника оказывает значительное влияние на формирование и поддержание иммунитета. В кишечнике содер­жится около 1,5 кг микроорганизмов, антигены которых сти­мулируют иммунную систему. Естественным неспецифическим стимулятором иммуногенеза является мурамилдипептид, образу­ющийся из пептидогликана микрофлоры под влиянием лизоци- ма и других литических ферментов, которые находятся в ки­шечнике.

Важнейшей функцией нормальной микрофлоры является ее участие в колонизационной резистентности, под которой пони­мают совокупность защитных факторов организма и конкурен­тных, антагонистических и других свойств анаэробов кишечни­ка, придающих стабильность микрофлоре и предотвращающих колонизацию слизистых оболочек посторонними микроорганизма­ми. При снижении колонизационной резистентности увеличива­ются количество и спектр аэробных условно-патогенных микро­бов. Их транслокация через слизистые оболочки может привести к развитию эндогенного гнойно-воспалительного процесса.

Для предотвращения инфекционных осложнений, при пони­жении сопротивляемости организма и повышенном риске ауто­инфекции, при обширных травмах, ожогах, иммунодепрессив- ной терапии, трансплантации органов и тканей проводят мероп­риятия, направленные на сохранение и восстановление колони­зационной резистентности. Осуществляют селективную деконта­минацию — избирательное удаление из пищеварительного тракта аэробных бактерий и грибов для повышения сопротивляемости организма к инфекционным агентам. Селективную деконтами­нацию проводят путем назначения для приема внутрь малоад- сорбируемых химиопрепаратов, подавляющих аэробную микро­флору и не влияющих на анаэробы (например, комплексное назначение ванкомицина, гентамицина и нистатина).

Представители нормальной микрофлоры при снижении сопро­тивляемости организма могут вызывать гнойно-воспалительные процессы, т.е. нормальная микрофлора может стать источником аутоинфекции, или эндогенной инфекции, она также является хранилищем и источником хромосомных и плазмидных генов, в частности генов лекарственной устойчивости к антибиотикам. Кроме этого, как отмечалось выше, кишечная микрофлора может заг­рязнять почву, воду, воздух, продукты питания и т.д., поэтому ее обнаружение свидетельствует о загрязнении окружающей сре­ды выделениями человека (см. раздел 4.5).

5.3 Гнотобиология (греч. gnōtos указанный, известный + биология; син. гнотобиотика) — отрасль экспериментальной биологии и медицины, занимающаяся получением и выращиванием стерильных животных, а также животных, микрофлора которых состоит из точно известных одного или нескольких видов микроорганизмов, с целью изучения механизмов и форм взаимодействия микроба с макроорганизмом.

5.4.

применение антибиотиков, гормонов, иммунодепресантов, лу­чевой терапии;

хирургические операции, особенно на органах желудочно-ки­шечного тракта;

длительное воздействие неблагоприятных экологических фак- ■ оров в быту и на производстве;

острые кишечные инфекции, различные хронические заболе- миния желудка, кишечника и печени;

нервно-психический стресс;

голодание, нерациональное питание, авитаминоз.

Дисбактериоз-клиническо-микробиологический синдром, который характеризует патологически изменённое состояние микробиоценоза конкретного биотопа. При дисбактериозе происходят количественные и качественные из­менения бактерий, входящих в состав нормальной микрофлоры. При дисбиозе изменяются и другие группы микроорганизмов (вирусов, грибов и др.). Дисбиоз и дисбактериоз считаются эн­догенными инфекциями, возникающими чаще всего в резуль­тате нарушения антимикробными препаратами нормальной мик­рофлоры или в результате указанных выше воздействий.

6.1. Эубиотики относятся к иммунобиологическим препаратам. Они получили широкое применение в медицинской практике для профилактики и лечения дисбактериозов. Эубиотики входят в более обширную группу препаратов пробиотиков, т.е. препара­тов, влияющих на состав и качество микрофлоры человека. К ним, кроме эубиотиков, относятся некоторые антибиотики, ферменты, фармацевтические вещества.

Эубиотики представляют собой живую культуру не­патогенных бактерии, относящихся к нормальным представителям микрофлоры человека. Эубиотики получают путем выращивания бактерий на искусст­венных питательных средах, концентрирования, суш­ки, стандартизации и изготовления готовой формы в виде порошка или таблеток.

В качестве бактерий в эубиотиках чаще всего используют наи­более распространенные в организме человека кишечную палоч­ку, бифидумбактерии, лактобациллы или их комбинации. От­сюда препараты эубиотиков имеют названия «колибактерин», «бифидумбактерии», «лактобактерин», «бификол» и др. Одна доза эубиотиков составляет I0⁷—10⁸ микробных клеток. В последнее время налажен выпуск кисломолочных продуктов (кефир, ря­женка, йогурт), содержащих эубиотики. Как и другие иммуно­биологические препараты, эубиотики готовят и контролируют по утвержденной нормативно-технической документации.

Эубиотики назначают по указанию врача после бактериоло­гического исследования материала (содержимого кишечника, урогенитального тракта, верхних дыхательных путей) и выяв­ления характера нарушений нормальной микрофлоры (дисбак­териоза). Эубиотики используют при заместительной терапии и профилактике, так как они восполняют видовой и количествен­ный состав бактерий, нарушенный в результате дисбактериоза.

Препараты эубиотиков применяют перорально 2—3 раза в день длительными курсами (1—6 мес). Профилактика и лечение дисбактериозов с помощью эубиотиков довольно эффективны и безвредны. В России создана крупная промышленная база по производству коммерческих препаратов эубиотиков.

Пробиотики — микроорганизмы, приём которых может быть полезен для здоровья. Большинство пробиотиков — бактерии, но это могут быть и другие микроорганизмы

Сухие пробиотики — это лиофилизированные (высушенные) микроорганизмы, которые могут находиться в порошке, капсулах, таблетках. Связующим веществом для возможности производства капсул или таблеток может служить, например, желатин. После употребления сухого пробиотика необходимо от 1 до 4 часов для выхода бактерий из анабиоза (спящего состояния) после чего препарат начинает проявлять своё действие (адгезию, антагонизм и т. д.).

Жидкие пробиотики

Жидкие пробиотики — это первоначальная, не подвергшаяся лиофилизации (сушке) форма пробиотиков. Жидкие пробиотики состоят из:

бактерий или других микроорганизмов, находящихся в физиологически активном состоянии, и при попадании в организм действуют немедленно.

Специальной питательной среды (питательная среда служит источником питания физиологически активных бактерий, которые находятся во флаконе).

Тех или иных дополнительно введённых ингредиентов, усиливающих эффективность препарата.(Дополнительные ингредиенты — водорастворимые витамины,микро- и макроэлементы, аминокислоты и т. д.)

Метаболитов. Метаболиты — это продукты жизнедеятельности микроорганизмов, находящихся во флаконе (микроорганизмы, находясь в физиологически активном состоянии, поедают питательную среду во флаконе, в результате чего, функционируя, выделяют метаболиты, необходимые организму).

Жидкая форма позволяет одновременно применять пробиотик на все слизистые и кожу (вагинально, перорально, закапывать в нос, полоскать ротовую полость и глотку, ректально (в задний проход), наносить на кожу и на волосистую часть головы, закапывать в уши).

7. Санітарна мікробіологія - це наука про мі­крофлору довкілля (води, повітря, ґрунту) і пов’язані з нею процеси, які можуть несприятливо впливати на здоров'я людей. Предметом вивчення санітарної мікробіології є мікрофлора навколиш­нього середовища та її вплив на здоров’я людей.

Задачі санітарної мікробіолога:

1. Розробка, удосконалення, оцінка мікробіо¬логічних методів дослідження об’єктів на¬вколишнього середовища. При цьому сані¬тарна мікробіологія базується на класичних методах загально? мікробіології, широко використовуються останні досягнення ме¬дичної, ветеринарної мікробіології, гігієни, епідеміології, імунології, хімії тв інших наук, а також комп’ютерної техніки.

2. Оцінка шляхів впливу людини і тварин на оточуюче середовище. Ця проблема ціка¬вить санітарних мікробіологів у зв’язку з тим, що і людина, і тварини є джерелом за¬бруднення навколишнього середовища як патогенними мікроорганізмами, так і іншими мікробами, які можуть шкідливо впливати на об'єкти довкілля.

3. Вивчення умов потрапляння, надходження, тривалості виживання патогенних мікробів у навколишньому середовищі.

4. Розробка рекомендацій щодо оздороалення навколишнього середовища шляхом впливу на його мікрофлору і оцінка ефективності заходів, проведених у цьому напрямку.

5. Використання кориснихмікроорганізмів (мїк- робів-деструкторїв) для очистки навколиш­нього середовища від шкідливих речовин.

8. Санітарно-показові мікроорганізми-мікроби, які є представниками нормальної мікрофлори тіла людини і служать показниками санітарного неблагополуччя об’єкта.

К санитарно-показательным бактериям относятся предста¬вители облигатной микрофлоры организма человека и теплокровных животных, для которых средой обитания является кишечник или респираторный тракт. Они обладают следующими свойствами: 1) постоянно выделяются в большом количестве с калом или капельками слизи из респираторного тракта; 2) не имеют других мест обитания; 3) способны сохраняться в окружающей среде в течение тех же сроков, что и патогенные бактерии, паразитирующие в кишечнике или респираторном тракте; 4) неспособны интенсивно размножаться на каких-либо объектах вне организма хозяина и изменять свои свойства. Перечисленные признаки присущи ряду бактерий, которые признаны санитарно-показательными для различных объектов окружающей среды

9.1. Почвы являются важнейшей средой и природным резервуа- ||цм обитания микроорганизмов. Вместе с растениями и животными пни составляют сложные и многообразные биогеоценозы, состав, плот- мпсть, функциональная активность и прочие характеристики которых тиисят от типа и структуры почвы, состава минеральных и органи- чгских веществ, физико-химического состояния, температуры, pH, книжности, концентрации углекислого газа, других факторов.

В слое пахотной почвы толщиной 15 см на площади в 1 га может | "держаться от 1 до 5-6 тонн микробной массы. Она максимальна на ■ чубине 10-20 см. На глубине свыше 1-2 м микроорганизмы уже м» фечаются в незначительном количестве, начиная с 5-6 м, почва может быть стерильной.

Патогенные микроорганизмы чаще всего попадают в землю с ■к мражнениями, мочой, гноем, мокротой, слюной и другими выделе­ниями, с трупами людей и животных, погибших от инфекционных ш()олеваний. Патогенные и условно-патогенные микробы контамини- I'yiot почву при сбросе фекально-бытовых и сточных вод различных предприятий.

Сроки переживания патогенных для человека микробов в почве и 111 роко варьируют. Неспорообразующие бактерии — возбудители ди- нчперии, брюшного тифа, холеры, чумы, бруцеллеза, туляремии, ту- |м ркулеза — выживают в почве от нескольких дней до нескольких месяцев. Споры возбудителей столбняка, сибирской язвы, газовой ган­грены могут сохраняться много лет. Более того, для споробразующих бактерий рода Clostridium почва является естественной средой оби­тания. Поэтому попадание земли в раны чревато возникновением газовой гангрены или столбняка. Размножение в пищевых продуктах С. botulinum таит смертельную угрозу отравления ботулотоксином.

Отмирание патогенных бактерий в почве обусловлено недостат­ком влаги, отсутствием необходимых питательных субстратов, анта­гонизмом почвенных микробов, действием солнечных лучей.

Санитарно-микробиологическое исследование почвы проводят с целью предупредительного санитарного надзора (выбор места для строительства детского сада или игровой детской площадки), теку­щего санитарного надзора и по эпидемическим показаниям (при рас­следовании причин вспышек инфекционных заболеваний и послед­ствий экологических аварий).

В зависимости от задачи анализ может быть кратким или расши­ренным. При проведении текущего санитарного надзора ограничива­ются установлением факта и оценкой степени фекального загрязне­ния почвы. Почвы с преобладанием бактерий, свидетельствующих о фекальном загрязнении, рассматривают как санитарно неблагополуч­ные. Для определения давности фекального загрязнения почвы опре­деляют несколько санитарно-показательных микроорганизмов. При­сутствие в почве определенных концентраций кишечной палочки (Е. coli) и фекального стрептококка (Streptoccocus faecalis) указывает на свежее, бактерий родов Citrobacter и Enterobacter — на несвежее, a Clostridium perfringens — на давнее фекальное загрязнение.

Санитарно-микробиологическое исследование почвы с целью пре­дупредительного надзора проводят по расширенному перечню показа­телей. Определяют копи-индекс — количество бактерий группы кишеч­ной палочки (БГКП), обнаруженных в 1 г почвы, перфрингенс-титр — наименьшую массу почвы в граммах, в которой обнаруживаются осо­би Clostridium perfringens, общую численность сапрофитных, термо­фильных и нитрифицирующих бактерий в 1 г почвы.

При интерпретации результатов исследования руководствуются нормативными документами, в которых учитываются не только об­щие критерии оценки, но и состав почвы, климатическая зона, дру­гие факторы. Единого стандарта санитарно-микробиологической оцен­ки почв нет.

9.2 Микрофлора воды

Вода открытых морских и пресноводных водоемов, как и почва, является естественной средой обитания разнообразных бакте­рий, грибов, вирусов, микроскопических водорослей, простейших.

II иодоемах различают собственную (аутохтонную) и заносную (ал- похтонную) микрофлору, поступающую из почвы, воздуха, живых ц|>| анизмов. В воде, как и в почве, происходят биологические про­цессы очищения от несвойственной (аллохтонной) микрофлоры.

Концентрация водных микроорганизмов определяется главным •■('•разом содержанием в воде органических веществ. Наиболее чисты грунтовые подземные воды, так как после просачивания через почву 'ншьшинство микробов задерживается в фильтрующем слое. Значи- ггпьно больше микробов в открытых водоемах, что связано с высо­ким содержанием растворенных питательных органических веществ, иогорые поступают со сточными и канализационными водами, отхо- ннми предприятий. Сегодня в реки, озера, моря выбрасывается такое ■иличество сточных вод с микробами и огромным количеством орга­нических веществ, что вода не успевает самоочищаться. В 1 мл такой ■оды количество микробов может достигать нескольких миллионов.

Вода имеет важное санитарно-эпидемиологическое значение как фнктор передачи возбудителей многих инфекций, особенно кишечных I («рюшного тифа, дизентерии, сальмонеллезов, холеры, гепатита А, полиомиелита), которые с испражнениями больных и носителей посту- миют в открытые водоемы, а оттуда нередко и в питьевую воду.

Хотя вода не особенно благоприятна для патогенных и условно­патогенных микробов, многие из них способны переживать в ней определенное время. Сроки выживания патогенных микробов в воде шнисят главным образом от их вида и концентрации микробной взве- ги, температуры воды и содержания органических веществ.

Споры возбудителя сибирской язвы годами могут сохраняться в ■оде; месяцы переживают в воде сальмонеллы, лептоспиры, вирусы полиомиелита и гепатита А. Меньше (дни, недели) выживают возбу- цители дизентерии, холеры, бруцеллеза, туляремии, условно-патоген­ные энтеробактерии. В теплое время года благодаря большей актив­ности процессов самоочищения воды продолжительность жизни бак- |ерий короче, в холодной воде соответственно дольше. Во льду возбудители кишечных инфекций могут сохраняться в течение не­скольких недель и месяцев.

Санитарно-микробиологическое исследование воды прово­дится с целью текущего надзора, т.е. в плановом порядке, а также но специальным эпидемиологическим показаниям. Основными объектами такого исследования являются:

питьевая вода централизованного водоснабжения (водопровод­ная вода),

питьевая вода нецентрализованного водоснабжения,

вода поверхностных и подземных водоисточников,

сточные воды,

вода прибрежных зон морей,

— вода плавательных бассейнов.

Требования к качеству воды разных объектов, методы исследова­ний и критерии оценки результатов представлены в нормативных ак­тах — государственных стандартах (ГОСТ), санитарных правилах и нормах, методических указаниях.

Основными официально регламентированными показателями ка­чества санитарно-микробиологического состояния воды в настоящее время являются:

Общее микробное число (ОМЧ) — количество мезофильных бактерий в 1 мл (см³) воды,

Индекс бактерий группы кишечных палочек (бывший «коли- индекс») — количество БГКП в 1 л воды.

Согласно ГОСТ-2874-82 в России в питьевой водопроводной воде допускается ОМЧ в 1см³ не более 100, индекс БГКП не более 3.

Раньше использовали еще один показатель фекального загрязне­ния — «коли-титр» — наименьший объем воды, в котором обнаружи­вается хоть одна особь бактерий группы кишечных палочек (БГКП). При необходимости расследования водных вспышек инфекционных заболеваний проводят более детальное санитарно-микробиологичес­кое исследование воды, определяя наличие энтерококков, сальмонелл, холерного вибриона, энтеровирусов.