31. Скласти супровідну на пересилку патологічного матеріалу в ветлабораторію.

1. Патологічний матеріал необхідно відбирати стерильними інструментами, від кожної тварини в окремий стерильний посуд.

2. Поверхню органу або тканини, з яких відбирають патологічний матеріал, на місці розрізу слід припалити над полум'ям або припалити нагрітою металевою пластинкою.

3. Патологічний матеріал повинен бути взятий від забитої тварини, яка не підлягала лікуванню, або від трупа в перші години після загибелі тварини, особливо в теплу пору року (розкладання трупа робить матеріал непридатним для дослідження).

4. Патологічний матеріал направляти в лабораторію бажано в неконсервованому вигляді в тих випадках, коли неможливо доставити його в лабораторію на протязі 24 годин, патологічний матеріал надсилають тільки в замороженому або консервованому вигляді).

5. Для бактеріологічного дослідження патологічний матеріал (органи або їх частини) консервують 30 % - вим водним розчином хімічно чистого гліцерину. Воду для приготування розчину попередньо стерилізують кип'ятінням на протязі 30 хвилин. Матеріал можна консервувати також в стерильному вазеліновому маслі. Консервуючу рідину беруть в співвідношенні 5 частин рідини і 1 частина матеріалу.

Для вірусологічного дослідження матеріал відбирають не пізніше 2 години після загибелі тварини, упаковують в поліетиленовий пакет і поміщають в термос зі льодом або заливають 30-50% - вим розчином хімічно чистого гліцерину на фізіологічному розчині. Фізіологічний розчин попередньо стерилізують автоклавуванням при 120 °С па протязі 30 хвилин. Трупи дрібних тварин краще надсилати цілими у вологонепроникній тарі і можна використовувати поліетиленові мішки. Трубчасті кістки направляють на дослідження в цілому вигляді, з непошкодженими кінцями, ретельно очищеними від м'язів і сухожилля. Кістки завертають в марлю або полотно, змочене дезінфікуючою рідиною (5%—вий розчин фенолу). Кістки також можна посипати кухонною сіллю і завернути в полотно або марлю.

На дослідження надсилають частини кишечнику з найбільш характерними патологічними змінами. Кишечник перед цим (для бактеріологічного і вірусологічного досліджень) звільняють від фекалій і поміщають в банки окремо від інших органів, при необхідності консервують 40%—вим водним розчином гліцерину. Об'єм консервуючої рідини повинен перебільшувати об'єм взятого матеріалу в 5 разів. При необхідності уражені ділянки тонкого кишечнику надсилають в неконсервованому вигляді із вмістом, попередньо перев'язавши їх кінці з обох боків.

32. Приготувати 3 %-ний розчин формальдегіду для проведення дезінфекції

Робочі розчини формальдегіду, як правило готують із формаліну (35-40% формальдегід). Для цього наявний формалін попередньо перевіряють на процентний уміст формальдегіду, а потім розчиняють водою до необхідної концентрації.

Наприклад, у наявному формаліні міститься 40% формальдегіду, а потрібно приготувати 4%-й розчин формальдегіду.

Кількість формальдегіду, яку необхідно взяти для отримання вказаного розчину формальдегіду, визначається за пропорцією:

100 мл формаліну містить – 40% формальдегіду

Х мл формаліну містить – 4% формальдегіду

Це означає, що для одержання 100 мл 4%-го розчину формальдегіду необхідно взяти 10 мл наявного 40%-го формальдегіду і 90 мл води.