- •Биологическая безопасность при работе с микобактериями туберкулеза
- •1. Общие положения
- •2. Устройство и содержание помещений лабораторий
- •2.1. Устройство лабораторий
- •2.2. Отделка помещений лабораторий
- •2.3. Планировка помещений лабораторий
- •2.4. Вентиляция помещений лаборатории
- •3. Оборудование, аппаратура и приборы
- •4.1. Риск инфицирования, связанный с методикой работы Риск вдыхания инфекционных частиц
- •4. Организация работы с инфекционным материалом
- •Риск заглатывания инфекционных частиц
- •Риск инокуляции инфицированных частиц
- •4.2. Персонал лабораторий. Средства индивидуальной защиты.
- •4.3. Организация работы с инфекционным материалом
- •5. Средства и методы дезинфекции и утилизация инфекционного материала
- •5.1. Дезинфицирующие средства
- •5.2. Обработка контаминированных лабораторных принадлежностей
- •5.3. Уборка помещений
- •6. Обработка лабораторной посуды
- •7. Контроль стерилизации и дезинфекции
- •Мероприятия, проводимые при авариях во время работы с инфекционным материалом
- •В случае образования небольшого объема аэрозоля:
6. Обработка лабораторной посуды
Патологический материал от больных, использованную посуду (пипетки, баночки, резиновые пробки, резиновые груши) собирают в ведра или биксы и подвергают автоклавированию в 2,5% мыльно-содовом растворе при режиме 2,0 кгс/см2 (132,9оС) в течение 60 минут. После автоклавирования посуду моют проточной водой, стеклянную посуду погружают в 3% раствор соляной кислоты на 30-40 минут, затем промывают проточной и дистиллированной водой.
Пробирки с культурами МБТ собирают в ведра и подвергают автоклавированию при режиме 2,0 кгс/см2 (132,9оС) в течение 60 минут. После автоклавирования пробирки погружают в 2,5% мыльно-щелочной раствор на 48 часов, затем моют проточной и дистиллированной водой.
Перед повторным использованием посуды она подвергается стерилизации в сухожаровом шкафу при 180оС в течение 60 минут. При отсутствии сушильного шкафа посуду можно стерилизовать в автоклаве при режиме 2,0 кгс/см2 (132,9оС) в течение 30 мин. Стерильная посуда в случае неиспользования через 3 суток подлежит повторной стерилизации.
Предметные стекла с микропрепаратами (мазками) погружают в 5% раствор карболовой кислоты на 5 часов, затем заливают моющим раствором (50 г моющей пасты и 100 мл пергидроля добавляют к 2 л воды), ставят на слабый огонь и кипятят в течение 20 минут от момента закипания. После кипячения стекла ополаскивают проточной водопроводной водой и погружают в 3% раствор соляной кислоты на 30-40 минут, затем промывают проточной и дистиллированной водой. Предметные стекла с микропрепаратами (мазками) кислотоустойчивых бактерий погружают в 5% раствор карболовой кислоты на 30 минут, затем автоклавируют при режиме 2,0 кгс/см2 (132,9оС) в течение 60 минут, после чего разбивают и закапывают.
Использованные ватно-марлевые пробки складывают в кассету и стерилизуют в сухожаровом шкафу в течение 180 минут при температуре 160оС.
7. Контроль стерилизации и дезинфекции
Контроль стерилизации предусматривает проверку параметров режимов стерилизации и оценку ее эффективности. Контроль работы стерилизаторов осуществляют тремя способами:
- физический метод предусматривает контроль параметров работы стерилизационного оборудования таймерами, датчиками температуры, давления и относительной влажности и др. Проводится при проведении каждого цикла стерилизации. Проверку температурного режима осуществляют с помощью максимальных термометров, которые помещают в контрольные точки стерилизатора.
- химический метод: принцип действия химических индикаторов основан на изменении агрегатного состояния индикаторного вещества и (или) цвета индикаторной краски при действии определенных параметров стерилизации, строго специфичных для каждого типа индикаторов в зависимости от метода и режима стерилизации. Химические индикаторы размещают в контрольные точки стерилизатора. Проводится ежедневно при проведении каждого цикла стерилизации.
- бактериологический метод основан на гибели споровых форм тест-культур, специфичных для каждого из используемых методов стерилизации. Проводится ежемесячно, а также обязательно после установки и наладки оборудования, проведения любого объема ремонтных работ, при получении неудовлетворительных результатов химического мониторинга. Для проведения бактериологического контроля можно использовать приготовленные в лаборатории и готовые биологические индикаторы, которые используются в соответствии с прилагаемой инструкцией по применению.
Результаты всех методов контроля работы стерилизаторов регистрируют в журнале. Основанием для заключения об эффективности работы стерилизаторов является отсутствие роста тест-культуры при бактериологическом исследовании всех биотестов в сочетании с удовлетворительными результатами физического и химического контроля.
Для контроля работы воздушных стерилизаторов используют левомицетин (160оС), кислоту винную, гидрохинон и тиомочевину (180оС), для контроля работы паровых стерилизаторов – D(+) маннозу, никотинамид и мочевину (132оС). Полностью химические тесты для контроля температурных параметров режима работы паровых и воздушных стерилизаторов, а также требования к приготовлению биотеста и проведению бактериологического контроля работы стерилизаторов изложены в СП 17-129 РБ 2000 «Безопасность работы с микроорганизмами II-IV групп патогенности и гельминтами».
