- •Введение
- •Глава 1 обзор литературы.
- •Морфологические и биологические особенности кукурузы.
- •1.2 Современная классификация
- •1.3. Пцр как один из молекулярно-генетических методов.
- •1.4. Полиморфизм нуклеотидной последовательности днк. Варианты использования пцр при выявлении полиморфизма.
- •1.5. Использование молекулярных маркеров в генетике и селекции
- •Глава II методика проведения эксперимента и характеристика объекта исследований.
- •Глава III экспериментальная часть
- •Список литературы
Глава II методика проведения эксперимента и характеристика объекта исследований.
На кафедре общей генетики, селекции и семеноводства имеются самоопыленные линии мутантной сахарной кукурузы, которые были использованы для анализа:
31-40 кремнисто-зубовидная, со средней шириной листа, белым, средним овальным зерном, среднепоздняя, КБГУ
68 – лопающаяся, бордовая, var. japonica, Германия. К - 23296
11-20– сахарная, среднерослая, с узкими листьями, с белым сильно морщинистым зерном средним зерном, удлиненной формы, среднеспелая, КБГУ
70 – восковидная, желтая, США.
66 – крахмалистая, серая, местная США. К - 6897
67 – восковидная, желтая Мадагаскар. К - 21690
49 – кремнистая, желтая, Турция. К - 12217
1-10 - среднерослая, с узкими листьями, с белым сильно морщинистым средним зерном, удлиненной формы, среднеспелая
Д 39 – кремнистая среднерослая, со средней шириной листа, белым, средним овальным зерном, среднепоздняя, КБГУ
Д 17 – сахарная высокорослая, с широкими листьями, со слабоморщинистым белым зерном, средних размеров, овальной формы, среднепоздняя, КБГУ
Д 15 – сахарная, среднерослая, с узкими листьями, с белым слабоморщинистым зерном средним зерном, овальной формы, среднеспелая, КБГУ
69 –пленчатая, США
Выделение ДНК проростков, полученных из семян кукурузы на 5-8 день проводили по следующей методике:
пробподготовка : исследуемую ткань поместить в фарфоровую ступку , добавить физ раствор и гомогенезировать фарфоровым пестиком. Отобрать 50 мкл гомогената для выделения ДНК.
1. Буфер для лизирующего реагента и раствор для отмывки 1 (если они хранились при от 2 – 8 ˚С) прогреть при температуре 64 ˚С до полного растворения кристаллов.
2. Отобрать необходимое количество одноразовых пробирок объемом 1,5 мл (включая отрицательный контроль выделения). В пробирки внести исследуемые пробы. В пробирку отрицательного контроля (ОК) выделения ДНК внести 100 мкл ОКО.
3. Отдельными наконечниками с аэрозольным барьером внести в каждую пробирку по 400 мкл буфера для лизирующего реагента и по 17 мкл лизирующего реагента . Тщательно перемешать содержимое пробирок.
4. Инкубировать пробирки при температуре 64 ˚С в течении 1 ч , периодически встряхивая на вортексе ( 5 раз через каждые 10 – 12 мин).
5. Осадить нерастворенные частицы образцов центрифугированием при (12-14) тыс об/мин в течение 5 минут.
6. Надосадочную жидкость в объеме 200-350 мкл очень аккуратно ( так, чтобы не попали взвешенные частицы и капли жира ) отобрать отдельными наконечниками с аэрозольными барьерами и перенести в новые пробирки.
7. Пробы центрифугировать в течении 5 сек при 5 тыс об/мин на микроцентефуге для сброса капель с крышки пробирок.
8. Тщательно ресуспендировать сорбент универсальный на вортексе. В каждую пробирку отдельным наконечником добавить по 25 мкл ресуспендированного сорбента универсального. Перемешать на вортексе, оставить в штативе на 10-15мин, перемешивая через каждые 2 минуты.
9. Осадить сорбент универсальный в пробирках центрифугированием при 5тыс об/мин в течение 1мин. Удалить надосадочную жидкость, используя вакуумный отсасыватель и отдельный наконечник для каждой пробы.
10. Добавить в пробы по 300 мкл раствора для отмывки 1, перемешать на вортексе до полного ресуспендирования сорбента универсального. Осадить сорбент универсальный центрифугированием при 5 тыс об/мин на микроцентрефуге в течении 1 мин. Удалить надосадочную жидкость, используя вакуумный отсасыватель и отдельный наконечник для каждой пробы.
11. Добавить в пробы по 500 мкл раствора для отмывки 2, перемешать на вортексе до полного ресуспендирования сорбента универсального, процентрифугировать 1 мин при ( 10-12) тыс об/мин на микроцентрефуге. Отобрать надосадочную жидкость используя вакуумный отсасыватель и отдельный наконечник для каждой пробы.
12. Повторить процедуру отмывки, следуя пункту 11, отобрать супернатант полностью.
13. Поместить пробирки в термостат при температуре 64 ˚С на 5-10 мин для подсушивания сорбента универсального. При этом крышки пробирок должны быть открыты.
14. В пробирки добавить по 50 мкл ТЕ – буфера для элюции ДНК. Перемешать на вортексе. Поместить в термостат при температуре 64 ˚С на 5-8 мин периодически ( 1 раз в мин) встряхивая на вортексе.
15. Процентрифугировать пробирки при ( 12 – 14 ) тыс об /мин в течение 1 мин на микроцентрифуге . Надосадочная жидкость содержит очищенную ДНК. Пробы готовы к постановке ПЦР.
Параметры ПЦР с RAPD праймерами:
Денатурация 94˚С – 3 мин.
1. 94˚С – 1 мин.
2. 37˚С – 2 мин.
3. 72˚С – 1 мин
Конечная пролонгация при 72 ˚С – 3 мин.
ПЦР проводилась со следующими RAPD праймерами :
OPA 04 – AATCGGGCTG
OPA 07 – CTGCATCGTG
OPD 05 – TGAGCGGACA
OPC 10 – TGTCTGGGTG
Продукты разделяют в 1,5% агарозном геле при 120 В.
Амплифицированные фрагменты прокрашивали бромистым этидием и визуализировали в УФ свете
