- •3 Из истории изучения нуклеиновых кислот
- •Методы выделений днк
- •Нуклеотиды
- •6 Определение нуклеотидной последовательности (секвенирование) днк
- •Метод Маскама и Гилберта (химический)
- •Метод Сэнгера (ферментативный)
- •7 Вторичная структура днк
- •Денатурация (плавление) днк
- •9 Третичная структура днк (суперспирализация днк)
- •Негистоновые белки хроматина
- •10 Виды рнк
- •10 Распад нуклеиновых кислот
- •13 Биосинтез пуриновых нуклеотидов
- •14 Биосинтез пиримидиновых нуклеотидов
- •15 Распад белков
- •17 Биосинтез аминокислот: общие сведения
- •18 Биосинтез днк
- •21 Обратная транскрипция
- •24 Физико-химические свойства белков
- •Белки как амфотерные макромолекулы
- •Коллоидные и осмотические свойства белков
- •Гидратация белков и факторы, влияющие на их растворимость
- •Высаливание
- •Денатурация (денативация) и ренатурация (ренативация)
- •25 Влияние рН на заряд белка
- •26 Методы количественного определения белков
- •2. Классификация аминокислот по химическому строению радикалов
- •3. Классификация аминокислот по растворимости их радикалов в воде
- •4. Изменение суммарного заряда аминокислот в зависимости от рН среды
- •5. Модифицированные аминокислоты,присутствующие в белках
- •6. Химические реакции, используемые для обнаружения аминокислот
- •30 Аминокислотный состав белков
- •31 Первичная структура
- •32 Третичная структура
- •Общие свойства катализаторов
- •Строение ферментов
- •Классификация ферментов
- •3. Витамин а (ретинол, антиксерофтальмический) Необходимо знать формулу витамина а.
- •4. Витамин д (холекальциферол, антирахитный) Сам витамин д не обладает витаминной активностью, но он служит предшественником 1,25-дигидрокси-холекальциферола (1,25-дигидроксивитамина д3).
- •44 Активация аминокислот
- •51 52 Ликогенолиз, фосфоролиз, гидролиз гликогена
- •Регуляция скорости β-окисления
- •Пептидные гормоны, используемые для оценки функционального состояния спортсменов (по в.А. Рогозкину, 1989)
- •Стероидные гормоны, используемые для оценки функционального состояния спортсменов (по в.А. Рогозкину, 1990)
- •Эффекты катехоламинов в организме человека
- •59 Иерархия регуляторных систем
- •60 Взаимосвязь обмена веществ в организме
Денатурация (плавление) днк
Двухспиральную структуру ДНК можно «расплавить» в растворе, повышая температуру или понижая концентрацию соли. При плавлении происходит не только расхождение цепей ДНК, но и нарушается система стэкинг-взаимодействий нуклеиновых оснований внутри данной цепи. Фосфодиэфирные связи при этом не разрываются. Денатурация ДНК сопровождается усилением оптического поглощения пуриновых и пиримидиновых оснований. Это явление называют гиперхромным эффектом денатурации ДНК. При денатурации исчезает также высокая вязкость, присущая растворам нативной ДНК, волоконноподобная структура которой обусловлена как стэкинг-взаимодействиями нуклеиновых оснований в каждой цепи, так и комплементарными взаимодействиями между двумя цепями.
Разделение цепей данной молекулы ДНК происходит в пределах определенного интервала температур. Средняя точка этого интервала называется температурой плавления ДНК .
Значение
зависит
от нуклеотидного состава ДНК и концентрации
соли в растворе. Молекулы ДНК, обогащенные
G—С-парами
(они связаны тремя водородными мостиками),
«плавятся» при более высокой температуре,
чем А—Т-богатые
молекулы (пары А-Т связаны двумя
водородными мостиками).
Десятикратное
увеличение концентрации моновалентных
катионов
увеличивает
на
16,6° С. Формамид, обычно используемый в
экспериментах с рекомбинантной ДНК,
дестабилизирует водородные связи между
основаниями, тем самым снижая
.
Это позволяет
цепям ДНК или ДНК—РНК-гибрида расходиться
при более низкой
,
что уменьшает
вероятность разрыва индивидуальных
цепей,
происходящего при высокой температуре.
9 Третичная структура днк (суперспирализация днк)
Каждая молекула ДНК упакована в отдельную хромосому. В диплоидных клетках человека содержится 46 хромосом. Общая длина ДНК всех хромосом клетки составляет 1,74 м, но она упакована в ядре, диаметр которого в миллионы раз меньше. Чтобы расположить ДНК в ядре клетки, должна быть сформирована очень компактная структура. Компактизация и суперспирализация ДНК осуществляются с помощью разнообразных белков, взаимодействующих с определёнными последовательностями в структуре ДНК. Все связывающиеся с ДНК эукариотов белки можно разделить на 2 группы: гисгоновые и негистоновые белки. Комплекс белков с ядерной ДНК клеток называют хроматином.
Гистоны - белки с молекулярной массой 11-21 кД, содержащие много остатков аргинина и лизина. Благодаря положительному заряду гистоны образуют ионные связи с отрицательно заряженными фосфатными группами, расположенными на внешней стороне двойной спирали ДНК.
Существует 5 типов гистонов. Четыре гистона Н2А, Н2В, НЗ и Н4 образуют октамерный белковый комплекс (Н2А, Н2В, НЗ, Н4)2, который называют "нуклеосомный кор" (от англ.nucleosome core). Молекула ДНК "накручивается" на поверхность гистонового октамера, совершая 1,75 оборота (около 146 пар нуклеоти-дов). Такой комплекс гистоновых белков с ДНК служит основной структурной единицей хроматина, её называют "нуклеосома". ДНК, связывающую нуклеосомные частицы, называют линкерной ДНК. В среднем линкерная ДНК составляет 60 пар нуклеотидных остатков. Молекулы гистона H1 связываются с ДНК в межнуклеосомных участках (линкерных последовательностях) и защищают эти участки от действия нуклеаз (рис. 4-8).
В ядре каждой клетки присутствует около 60 млн молекул каждого типа гистонов, а общая масса гистонов примерно равна содержанию
Рис. 4-8. Структура нуклеосом. Восемь молекул гистонов (Н2А, Н2В, НЗ, Н4)2 составляют ядро нуклеосомы, вокруг которого ДНК образует примерно 1,75 витка.
ДНК. Аминокислотные остатки лизина, аргинина и концевые аминогруппы гистонов могут модифицироваться: ацетилироваться, фосфорилироваться, метилироваться или взаимодействовать с белком убиквитином (неги-стоновый белок). Модификации бывают обратимыми и необратимыми, они изменяют заряд и конформацию гистонов, а это влияет на взаимодействие гистонов между собой и с ДНК. Активность ферментов, ответственных за модификации, регулируется и зависит от стадии клеточного цикла. Модификации делают возможными конформационные перестройки хроматина.
