2. Определение культуральных свойств возбудителя, составление антибиотикограммы, оценка органолептических свойств экссудата

Для планирования рациональной антибактериальной терапии необходимо произвести своевременный забор экссудата для бактериологического исследования. Для этого используются разнообразные транспортные среды, позволяющие доставить материал в бактериологическую лабораторию без потери жизнеспособности микроорганизмов. Одним из возможных вариантов является транспортная среда, производимая фирмой  “Copan®”.

Она предназначена для транспортировки а- и анаэробных микроорганизмов в течении 3-х суток. Для точности бактериологической диагностики необходимо произвести забор материала до  начала эмпирической противомикробной терапии. Мазок из раны производится тупфером, который помещается в гелевидную среду и в ближайшие сроки доставляется в лабораторию.

Традиционное бактериологическое исследование, включающее в себя идентификацию возбудителя и определение культуральных свойств, занимает 4-5 суток, однако существуют различные экспресс-методы, позволяющие за несколько часов определить чувствительность микроорганизма к антибиотикам. При отсутствии результатов лабораторного исследования при лечении острых ИВЗ ЧЛО врач начинает эмпирическую противомикробную терапию до получения ответа. Однако, существует несколько способов более прицельного назначения антибиотика:

Таблица 2. Возбудители ИВЗ ЧЛО

Группа заболеваний	Наиболее часто встречающаяся микрофлора
Острые (обострения хронических) периодонтиты и периоститы	Str. Pyogenes Staph. Epidermidis Enterococcus
Острые остеомиелиты	Staph. Aureus Neisseria
Одонтогенные абсцессы	Str. Pyogenes Enterococcus
Одонтогенные флегмоны	Staph. Albus Staph. Aureus Neisseria Fusobacterium Clostridium septicum

Для каждой нозологической формы характерен свой микробный пейзаж раны.

• Внешний вид, запах, консистенция гноя позволяет предположить возможного возбудителя.

• Возможно произвести бактериоскопию с окраской по Грамму и назначить препарат в соответствии с групповой принадлежностью.

	ГР(+)	ГР(-)
Палочка	феноксиметилпенициллин, докцициклин, ампициллин, метронидазол	метронидазол, клиндамицин, ампициллин, гентамицин, левомицетин
кокки	оксациллин, метициллин, Ванкомицин, Цефалоспорины, Ампициллин	клиндамицин, линкомицин

Таблица 3. Предполагаемая чувствительность микрофлоры в зависимости от данный бактериоскопии.

По результатам бактериологического исследования составляется антибиотикограмма, описывающая чувствительность микроорганизмов микробной ассоциации к антибактериальным препаратам.

Однако, возможно предположить чувствительность микрофлоры без видовой идентификация возбудителя. Мы предлагаем 3 возможных метода:

1 - во время оперативных вмешательств по вскрытию и дренированию очагов гнойной инфекции с помощью стерильного одноразового шприца.

2 - для микроскопического исследования гноя сразу после забора материала делается два мазка на предметные стекла. Один мазок окрашивают по Грамму, второй –для выявления эозинофильных лейкоцитов и аллергической этиологии воспаления дополнительно окрашивают по методу Романовскому - Гимза.

Аэробы представляют значительно большую опасность, чем анаэробы, что связано с их способностью быстро вырабатывать резистентность к антибиотикам. Наиболее быстро вырабатывают устойчивость стафилококки, в том числе и к новейшим антибиотикам. Процент устойчивых штаммов у этого микроорганизма составляет:

к бензилпенициллину – 80-95%

к тетрациклину – 70-85%

к левомицетину – 30-55%

Накопительной средой для микроорганизмов, содержащихся в гное, был выбран сахарный бульон в стандартной разливке по 5 мл. В 4 пробирки с сахарным бульоном необходимо поместить 3 капли исследуемого материала и инкубировать в термостате при температуре 37⁰С в течение 4 часов. Параллельно с этим, такое же количество материала засевается в чашку Петри с кровяным агаром и помещается в термостат для дальнейшей инкубации. 3 капли – это минимальное количество гноя, необходимое для увеличения количества микроорганизмов до субъективно видимого помутнения в пробирке с сахарным бульоном за 2 часа инкубации.

Через 2 часа пробирки достают из термостата, 1-ую пробирку оставляют контрольной, во 2-,3-и 4-ую добавляли по 1 стандартному диску с антибиотиком. Выбраны а/б, наиболее часто применяемые в челюстно-лицевой хирургии:

гентамицина сульфат, в концентрации 2 мкг/мл

оксациллина натриевая соль, в концентрации 2мкг/мл.

ампициллина натриевая соль, в концентрации 2 мкг/мл.

цефотаксима натриевая соль, в концентрации 6мкг/мл

доксициклин гидрохлорид, в концентрации 2мкг/мл.

линкомицина гидрохрорид, в концентрации 3 мкг/мл

бензилпенициллина натриевая соль, в концентрации 2ЕД/мл.

клиндомицин, в концентрации 0,4 мкг/мл.

Концентрации а/б подбираются исходя из минимальной подавляющей концентрации.

По истечении 4 часов пробирки извлекают из термостата, мутность каждой пробирки оценивают визуально в «плюсах». Чем мутнее среда в пробирке-тем менее чувствиетелен к антибиотику возбудитель.

Так как степень мутности является субъективным показателем, то ее определяют с помощью фотоэлектроколориметра и компьютерной программы Adobe PhotoShop 5,0 и производилась съемка пробирок на цифровой фотоаппарат Sony Mavica, изображение переводилось в черно-белый вариант.

Используя метод фотоэлектроколориметрии, фотографирование на цифровую фотокамеру, компьютерную программу Adobe PhotoShop 5,0, бактериологический и бактериоскопический методы мы выяснили, что:

1. Используя экспресс - метод за 4 часа можно получить предварительные данные о спектре чувствительности микроорганизмов к а/б в каждом конкретном случае.

2. Степень мутности раствора является весьма достоверным признаком чувствительности микроорганизмов к исследуемым антибиотикам.

3. Определение чувствительности к а/б возможно без выделения чистой культуры микроорганизмов и их видовой идентификации.

4. Это приводит к значительному сокращению времени, необходимого для проведения тестов по классическим методикам и целенаправленной рациональной антибиотикотерапии и предотвращению возникновения лекарственной болезни.