- •Методичні розробки
- •Пам’ятка для студента
- •(Підготовка здійснюється до початку лабораторного заняття)
- •Робота №
- •Лабораторне заняття № 1 тема: Ознайомлення з правилами техніки безпеки і роботи в лабораторії фізіології тварин та основними методами фізіологічних досліджень
- •Контрольні питання:
- •Лабораторне заняття № 2 Тема: Приготування нервово-м’язового препарату, визначення порогу подразнення (збудження) нерва та м’язу
- •Контрольні питання:
- •Лабораторне заняття № 3 тема: Біоелектричні явища у збудливих тканинах Фізіологічні властивості нервового волокна
- •Контрольні питання:
- •Лабораторне заняття № 4 тема: Визначення рефлексів спинного мозку. Нервові центри і їх властивості
- •Контрольні питання:
- •Лабораторне заняття № 5 тема: Вивчення значення різних відділів головного мозку Гальмування в центральній нервовій системі
- •Контрольні питання:
- •Контрольні питання:
- •Лабораторне заняття № 8 тема: Вивчення функцій аналізаторів
- •Контрольні питання:
- •Контрольні питання:
- •Лабораторне заняття № 11 тема: Вивчення фізико-хімічних та буферних властивостей крові
- •Контрольні питання:
- •Лабораторне заняття № 12 тема: Підрахунок кількості еритроцитів і лейкоцитів крові
- •, Або т/л (Тера на літр)
- •Контрольні питання:
- •Лабораторне заняття № 13 тема: Визначення швидкості згортання крові. Групи крові
- •Контрольні питання:
- •Контрольні питання:
- •Лабораторне заняття № 16 тема: Рух крові по судинах і його регуляція
- •Контрольні питання:
- •Лабораторне заняття № 17 тема: Визначення життєвого об’єму легень, типу та частоти дихання. Регуляція дихання
- •Контрольні питання:
- •Лабораторне заняття № 18
- •Контрольні питання:
- •Лабораторне заняття № 20 тема: Вивчення травлення в шлунку жуйних
- •Контрольні питання:
- •Лабораторне заняття № 21 тема: Вивчення травлення в кишечнику та дії кишкового соку
- •Контрольні питання:
- •Контрольні питання:
- •Лабораторне заняття № 24
- •Тема: Вивчення фізико-хімічних властивостей сечі.
- •Вивчення функцій статевого апарату
- •І статевих клітин тварин
- •Контрольні питання:
- •Лабораторне заняття № 25 тема: Вивчення фізико-хімічних властивостей молока
- •Контрольні питання:
- •Фізіологічні коливання температури тіла тварин
- •Фізіологічні коливання частоти дихання та пульсу у тварин
- •Деякі гематологічні та біохімічні показники у дорослих тварин
- •Швидкість осідання еритроцитів у здорових тварин
- •Кількість еритроцитів, лейкоцитів і тромбоцитів у крові тварин
- •Лейкограма периферичної крові сільськогосподарських тварин
- •Уміст загального білка і білкових фракцій у сироватці крові
- •Уміст загального кальцію та неорганічного фосфору в сироватці крові тварин
- •Уміст глюкози у крові тварин
- •Розрахунок загального білка сироватки крові по показнику переломлення
- •Нормативи біохімічних показників крові дорослих тварин
- •Частота скорочень рубця у тварин різних видів
Контрольні питання:
1. Дайте визначення вегетативної нервової системи. Яке її загальне функціональне призначення?
2. Опишіть основні морфологічні відмінності симпатичного і парасимпатичного відділів вегетативної нервової системи (центри, ганглії, нервові волокна, медіатори, блокатори, ефекти збудження).
Лабораторне заняття № 8 тема: Вивчення функцій аналізаторів
Ціль: Вивчити основні зорові рефлекси: зіниці, акомодації, провести офтальмоскопію. Вивчити основні функції аналізаторів.
Оснащення: кролик, офтальмоскоп, підсвітка, розчини Рінгера, атропіну, пробірки, кольорові картонні кола, рамка з сіткою, секундоміри, рулетка, лінійка, фонендоскоп, камертон, жаби, набір препарувальних інструментів. естезіометр, спиртівка, лід, кольорові олівці, розчини цукру, хлориду натрію, лимонної кислоти, хініну.
РОБОТА 1. Офтальмоскопія
Хід роботи: кролю за 5 хвилин до досліду ввести у кон'юнктивальний мішок за допомогою очної піпетки кілька крапель 1 % розчину атропіну. Встановити позаду тварини джерело світла і роздивитись з допомогою офтальмоскопа очне дно. Звернути увагу на сосочок зорового нерва: на його місцезнаходження, величину, колір, а також на кровоносні судини. Роздивитись “зафарбовані” у відповідний колір інші частини дна ока. Замалювати. Зробити висновки про склад очного дна.
РОБОТА 2. Слухова адаптація
Хід роботи: наблизити камертон, що звучить до вуха і тримати його доти, поки звук не буде чутним. Віддалити камертон від вуха і через 1-2 секунди знову наблизити його до вуха. При цьому звук камертона знову стає чутним. Записати отримані дані і пояснити, які властивості аналізатора слуху доводить даний дослід.
РОБОТА 3. Руйнування напівколових каналів
Хід роботи: у зафіксованої догори черевом жаби відкрити рот, розрізати слизову оболонку і скальпелем зруйнувати горбик височної кістки. Спостерігати за положенням голови, кінцівок жаби і її рухами.
Контрольні питання:
1. Дайте визначення аналізатора. З яких ланок складається аналізатор?
2. Опишіть схеми будови всіх аналізаторів та зазначте їх функції.
ЛАБОРАТОРНЕ ЗАНЯТТЯ №9
ТЕМА: Підсумкове заняття з розділів: “Фізіологія вегетативної нервової системи”, “Фізіологія вищої нервової діяльності”,
“Фізіологія аналізаторів”. Перегляд навчальних фільмів.
Тест-контроль знань.
ЛАБОРАТОРНЕ ЗАНЯТТЯ № 10
ТЕМА: Вивчення фізико-хімічних властивостей крові
Ціль: Освоїти техніку взяття крові у тварин. Набути практичних навичок отримання плазми, сироватки крові, дефібринованої крові, визначення гематокриту. Вивчити основні фізико–хімічні властивості крові. Набути практичних навичок визначення ШОЕ, гемолізу, осмотичної резистентності еритроцитів.
Оснащення: лабораторні та сільськогосподарські тварини, набір інструментів, лабораторний посуд, центрифуга, реактиви, мікроцентрифуга, .апарат Панченкова, дистильована вода, спирт, 1% розчин соляної кислоти, ряд розчинів NаСІ.
РОБОТА 1. Взяття крові
При взятті крові тварин надійно фіксують, потім вистригають або вибривають волосяний покрив, протирають шкіру спиртовим розчином ефіру. Стерильною голкою проколюють шкіру, стінку судини і набирають відповідну кількість крові в стерильну колбочку чи пробірку.
У дорослих людей невелику кількість крові беруть з подушечок пальців руки. Для проколу шкіри використовують скарифікатор, який являє собою стальну пластинку з лезом та обмежувачем глибини проколу. При взятті крові необхідно дотримуватись правил асепти-ки. Перед виконанням роботи студенти повинні добре вимити руки з милом. Кров, як правило, беруть з четвертого пальця лівої руки.
Хід роботи: шкіру пальця продезинфікувати, знежирити і підсушити. Для цього його слід протерти стерильною ватою, змоченою сумішшю спирту з ефіром. Здавити м’якоть фаланги з боків і швидким рухом скарифікатора проколоти шкіру на глибину всього леза, щоб кров виступала без надавлювання.
Першу краплину крові зняти сухим стерильним ватним тампоном. Коли з'явиться нова краплина, під її основу підвести кінець капіляра, тримаючи його горизонтально і злегка (щоб не закрити отвір) притискаючи до шкіри. Кров заповнює капіляр (за законом капілярності). Треба слідкувати, щоб в капіляр не попали пухирці повітря. Швидко набрати кров до мітки. Якщо її виявиться надлишок, його можна, злегка дотикаючись ватою до кінця капіляра, видалити.
Після взяття крові до місця проколу прикласти ватний тампон, змочений 5%-ним спиртовим розчином йоду, та придавити його великим пальцем тієї ж руки.
РОБОТА 2. Отримання плазми, сироватки крові і дефібринованої крові
Хід роботи: для отримання плазми крові, кров необхідно стабілізувати, тобто позбавити її здатності згортатися. Для цього використовують 10% розчин трилона Б, 5% розчин цитрату натрію, гепарин і інші речовини. Стабілізовану кров необхідно відцентрифугувати при 3 тис. обертів за хвилину протягом 10 хв. Сироватку крові отримують шляхом відстоювання нативної крові у теплому місці після її згортання. Для отримання дефібринованої крові необхідно її перемішувати в колбочці з намистинками, або ж помішувати кров щіточкою, чи дерев'яною паличкою.
РОБОТА 3. Визначення показника гематокриту
Хід роботи: в капіляр центрифуги Шкляра набрати стабілізовану кров. Затерти краї капіляра пластиліном і вставити в тримач центрифуги. Закрити центрифугу кришкою і обертати ручку центрифуги протягом 3 хв. Заміряти відстань еритроцитів з обох кінців капіляра і визначити показник гематокриту за пропорцією, де об’єм всього капіляра приймають за 100%. Записати отримані результати, зробити аналіз і висновки.
РОБОТА 4. Визначення швидкості осідання еритроцитів (ШОЕ)
Хід роботи: в капіляр апарату Панченкова набрати до мітки Р 5% розчин цитрату і видути у годинникове скельце або в іншу неглибоку посудину. Потім набрати в цей же капіляр до мітки К двічі кров, видути в розчин цитрату натрію і змішати, для чого суміш декілька разів насмоктувати в капіляр і видувати у скельце. Після цього суміш набрати до мітки К і встановити капіляр у штатив. Показник ШОЕ визначити через 60 хвилин.
Примітка: Якщо кров для аналізу береться вже стабілізованою, то змішування її з розчином цитрату натрію робити не треба.
