104. Конидии возбудителя черной пятнистости:

— на чайногибридных розах; справа — на шиповнике

Гриб образует и сумчатую стадию — Diplocarpon rosae Wolf. Апотеции формируются между палисадной паренхимой и эпи­дермисом листа. По форме они округлые, темно-коричневые, сверху прикрыты субкутикуляр-ным щитком, образующимся из расходящ,ихся лучами толсто­стенных бурых тяжей мицелия, реже —старым конидиальным спороношением. При созревании апотеции выступает над поверх­ностью листа, вверху звездчато растрескивается, обнажая бесцвет­ные парафизы и многочисленные булавовидные сумки размером (50...60)х(14...1б) мкм. Сумкоспоры продолговато-эллипсоидные, двухклеточные, бесцветные, размером (15...20)х 5 мкм. С нижней стороны листа симптомы поражения обычно отсутствуют. При сильном развитии болезни пятна разрастаются и охватывают всю листовую пластинку. Листья преждевременно опадают.

Возбудитель бурой пятнистости, или церкоспо-роза, — гриб Cercospora rosicola Pass, (класс Deuteromycetes, по­рядок Hyphomycetales). На листьях появляются округлые грязно-бурые или бурые пятна диаметром 5...10 мм, они лучше заметны на верхней стороне листьев. Позднее они бледнеют в центре, при­обретая серый цвет, но кайма остается более темной, часто пур­пурной. При высокой влажности на нижней стороне пятен обра­зуется слабый налет конидиального спороношения оливкового цвета.

Возбудитель пурпуровой пятнистости, или сфаце-лол/ь/, — гриб Sphacehma rosarum (Pass.) Jenk. (класс Deute­romycetes, порядок Melanconiales). Поражает листья, черешки и стебли. На листьях пятна округлые, мелкие—диаметром 1... 4 мм, пурпурные или черные, со временем бледнеющие в центре до серовато-белых, багрово-бурая кайма сохраняется. На стеблях пятна того же цвета, но более продолговатые, иногда выпуклые. Во влажных условиях образуется конидиальное спороношение, заметное с нижней стороны листа в виде мелких черных подушечек.

Возбудитель септориоза — гриб Septoria rosae Desm. (класс Deuteromycetes, порядок Sphaeropsidales). На листьях розы образу­ются мелкие округлые пятна, вначале темно-бурые, а затем блед-

неющие до серых с пурпурной каймой. В центре пятен заметны мелкие черные точки — пикниды.

Трахеомикозное увядание. Возбудители — грибы рода Fusarium, класса Deuteromycetes, порядка Hyphomycetales (в основном F. oxysporum Schl), реже — рода Verticillium Nees. У пораженных рас­тений поникают верхушки побегов, желтеют и опадают листья. Позднее побеги становятся бурыми и полностью усыхают. На по­перечных срезах стеблей заметно потемнение сосудов. В условиях повышенной влажности на пораженных частях появляется гряз­но-серый налет спороношения Verticillium dahliae Kleb. Конидии бесцветные, эллипсоидные, размером (2,1...8,4)х(1...3)мкм. Ми­целий белый, а затем чернеющий. Конидии F. oxysporum Schl. ве-ретеновидные, изогнутые, с 2...3 перегородками, размером (14... 25) X (3...4) мкм, мицелий имеет розоватый оттенок.

Корневой рак. Возбудитель — бактерии Agrobacterium tumefaciem Conn. Болезнь поражает корни, корневую шейку шиповника и розы. На пораженных частях образуются наросты различного раз­мера — от едва заметных до крупных, в несколько сантиметров, вначале светлоокрашенные, затем темно-коричневого цвета. По­верхность наростов бугорчатая.

Бактериальная гниль цветоносов. Возбудитель — бактерии Pseudomonas syringae van Hall. Поражаются цветоносы, чашелисти­ки, реже —листья и почки. На пораженных органах образуются округлые некрозы и язвы, цветочные почки отмирают, во влаж­ных условиях развивается гниль.

Вирусная мозаика. Возбудитель — вирус мозаики розы {Rose mosaic virus). Симптомы болезни варьируют в зависимости от сорта растения. На многоцветковых розах в нижних частях стеб­лей появляются желто-зеленая крапчатость и мелкие деформи­рованные доли листьев. Больные растения чайногибридных роз карликовые, цветочные почки часто этиолированные, недораз­витые. При сильном поражении цветки становятся почти белы­ми. Листья усеяны хлоротичными пятнами, располагающимися по средней жилке или на одной половине листа. Отмечаются де­формация листовых пластинок и черешка, иногда прижилковый хлороз.

Неинфекционный хлороз. Основная причина — дефицит железа или наличие его нерастворимых форм. Сначала наблюдается меж-жилковое пожелтение верхушечных листьев, вдоль жилок сохра­няется зеленая окраска. Позднее желтеют и нижние листья, затем они засыхают и опадают, концы побегов засыхают. Иногда слабо пораженные хлорозом листья к осени зеленеют, но на следующий год болезнь возобновляется в более сильной форме. Заболеванию способствует также дефицит серы или азота.

ПОРЯДОК ВЫПОЛНЕНИЯ РАБОТЫ

Задание 1. Описать и зарисовать симптомы мучнистой росы на поражаемых органах розы и шиповника.

Задание 2. При малом и большом увеличениях микроскопа рассмотреть, а затем зарисовать строение конидиального и сумча­того спороношений возбудителя мучнистой росы.

Задание 3. Описать и зарисовать симптомы ржавчины на розе и шиповнике.

Задание 4. Приготовить препараты и зарисовать виды спо­роношений возбудителя ржавчины розы, отметив морфологичес­кие особенности.

Задание 5. Описать и зарисовать симптомы основных пят-нистостей листьев розы и шиповника.

Задание 6. Описать признаки поражения побегов розы ин­фекционным ожогом.

Задание 7. Перечислить причины неинфекционного хло­роза розы и зарисовать симптомы.

Материалы и оборудование. Гербарные и фиксированные образцы поражен­ных болезнями растений, постоянные препараты спороношения грибов, скальпе­ли, препаровальные иглы, фильтровальная бумага, чашки Петри, предметные и покровные стекла, лупы, микроскопы.

Лабораторная работа 34 БОЛЕЗНИ СМОРОДИНЫ И КРЫЖОВНИКА

ВВОДНЫЕ ПОЯСНЕНИЯ

Мучнистая роса, сферотека. Возбудитель — гриб Sphaerolheca mors-uvae (Schw.) Berk, et Curt, (класс Ascomycetes, порядок Erysiphales). Поражает молодые листья, ягоды и побеги. Первич­ные признаки: на поверхности пораженных органов белый, внача­ле паутинистый, но вскоре порошащий (мучнистый) налет (по­верхностный мицелий и конидиальное спороношение). Затем на­лет уплотняется, на листьях приобретает темно-серый цвет, на ягодах и побегах — темно-бурый, становится войлочным.

Конидии одноклеточные, размером (24...26) х(12...18) мкм, бесцветные, овальные или бочонковидные, с тонкой оболочкой. На поверхности мицелия в виде мелких черных точек, хорошо ви­димых под лупой, развиваются округлые плодовые тела —клей-стотеции диаметром 80...110мкм. Они снабжены простыми при­датками, которые переплетаются с мицелием. В клейстотеции раз­вивается по одной яйцевидной сумке размером (75...110)х X (55...62) мкм, содержащей 8 сумкоспор размером (20...25) х (12... 15) мкм.

На смородине преобладает листовая форма болезни. На­лет в виде отдельных пятен сначала образуется с нижней стороны листьев, при сильном развитии болезни охватывает лист полнос­тью. Поражаются черешки и жилки. Листья становятся уродливы­ми, хрупкими, темнеют и засыхают. На ягодах мучнистая роса чаще всего встречается у красной смородины, образуя на них ост­ровки налета. Пораженные ягоды засыхают и опадают.

На крыжовнике налет образуется с нижней и верхней сторон листьев. Пораженные листья деформируются, засыхают, опадают. Ягоды поражаются особенно сильно. На незрелых ягодах налет легко стирается. Пораженные ягоды остаются мелкими и кислыми; при сильном поражении, когда налет покрывает всю ягоду, они перестают расти, засыхают и опадают. У побегов пора­жаются верхушки прироста. Рост побегов прекрашается. Концы их становятся тонкими, искривленными, засыхают и чернеют (рис. 105).

Антракноз. Возбудитель ~ гриб Gloeosporium ribis Mont, et Desm. (класс Deuteromycetes, порядок Melanconiales) (сумчатая стадия — Pseudopeziza ribis Kleb.). Поражаются пластинки и черешки лис­тьев, плодоножки, ягоды, побеги и ветви крыжовника, красной и особенно сильно — черной смородины. Наиболее харак­терный признак болезни — пятнистость листьев. Пятна многочисленные, мелкие — диаметром до 1 мм, бурые, уг­ловатой, неправильной фор­мы. Поверхность их несколь­ко приподнята, чаще всего с верхней стороны, так как в центре пятна под эпидер­мисом развивается кониди-альное спороношение гриба. Конидиальное ложе имеет вид подушечки. Во влаж­ную погоду споры созрева­ют, разрывают покровную ткань растения и выходят на поверхность в виде бе­лых крупинок — массы скле­енных слизью спор. При сильном поражении пятна на листьях сливаются и

придают листьям бурую ОК- P"<=- ^05. Мучнистая роса крыжовника:

раСКу. На черешках ЛИСТЬ- /-пораженные листья и ягоды; 2-усыхание ев, плодоножках и побегах верхушек побегов; J и 4-соответственно кони-

диальное и сумчатое спороношение возбудителя; антракноз проявляется в ВИ- 5- сумка с сумкоспорами

Рис. 106. Антракноз смородины:

/ — пораженный лист; 2— пораженный побег; 3 и 4— соответственно конидиаль-ное и сумчатое спороношение возбудителя

де небольших вдавленных бурых язвочек. На ягодах поражается только кожица, на ней появляются мелкие слабозаметные черные пятна (рис. 106).

На уплотненном мицелии развиваются плотно стоящие корот­кие палочковидные или конические конидиеносцы, на которых расположены одноклеточные бесцветные, несколько изогнутые или серповидные, с тупыми концами конидии размером (14...32) X (5...8) мкм с каплями масла на концах.

Сумчатая стадия развивается весной на перезимовавших листь­ях и представлена очень мелкими желто-коричневыми апотеция-ми высотой 0,6...0,8 мм, вначале полностью погруженными в ткань листа и заметными только при набухании, когда они чуть выступают над поверхностью на короткой толстой ножке. Сумки булавовидные, размером (90...110) х (18...20) мкм, окруженные па-рафизами. Сумкоспоры бесцветные, эллипсоидные, одноклеточ­ные. Их размер (12...17) х(7...8) мкм у возбудителя антракноза смородины и 19 X (7...10) мкм у возбудителя антракноза крыжов­ника.

Септориоз, или белая пятнистость листьев. Возбудитель — Septoria ribis Desm. (класс Deuteromycetes, порядок Sphaeropsidales), но может развиваться и в сумчатой стадии — Му-cosphaerella grossulariae (Fr.) Lind. Болезнь сильно поражает сморо­дину, слабее — крыжовник. На крыжовнике поражаются преиму­щественно листья, на смородине — листья и стебли, ягоды пора­жаются редко. На листьях появляются пятна, вначале бурые, ок­руглые или угловатые, диаметром 1...3мм, затем белеющие, с черными точками в центре — пикнидами, образующимися чаще всего с верхней стороны листа. На стеблях образуются некроти­ческие штрихи с более светлым центром, окруженные темной каймой. На их поверхности заметны черные точки — пикниды. Пораженная ткань покрывается продольными трещинами. На ягодах пятна одиночные, округлые, бурые, слегка вдавленные, с небольшими трещинками. На поверхности пятен иногда насчиты­вается до нескольких десятков пикнид (рис. 107).

Пикниды округлые, диаметром 100...200мкм, с выводным от­верстием у поверхности листа, погруженные в ткань растения. Пикноспоры размером (20...б0)х(1,5...2,6) мкм, нитевидные, слегка изогнутые, с 2...3 перегородками, бесцветные. Прорастают в капле воды.

Сумчатая стадия М. grossulariae (псевдотеции) формируется осенью на тех же местах, где были пикниды. Сумки вытянутые, узкие, с небольшим утолщением в месте прикрепления. Сумко-споры двухклеточные, бесцветные, узковытянутые, размером (26.,.35)хх(3...3,5)мкм.

Бокальчатая ржавчина. Возбудитель — разнохозяйный ржав­чинный гриб Puccinia ribesii-carisls ЮеЬ. (класс Basidiomyceles, по­рядок Uredinales). На ягодных культурах гриб паразитирует в эциостадии. Урединио- и телиостадии развиваются на некоторых

Рис. 107. Септориоз смородины:

I и 2— пораженные лист и стебли; 3 — пикнидиалыюе спороношение возбудителя

видах осоки (Carex acuta L., С. pallescens L. и др.)- Ржавчиной пора­жаются листья, побеги и особенно сильно— ягоды. Заболевание проявляется ранней весной. На листьях с верхней стороны появ­ляются ярко-красные пятна с черными точками — спермогония­ми, в которых развиваются споры — спермации. С нижней сторо­ны пятен образуются оранжевые подушечки с бокаловидными вместилишами, соединенными по нескольку штук. Это эции, за­полненные одноклеточными округлыми оранжевыми эциоспора-ми размером (15...20)х(12...18) мкм. Пластинки листьев плохо развиваются. На ягодах и побегах появляются такие же «бокальчи­ки» — эции. При сильном поражении ягоды сплошь покрываются эциями гриба и осыпаются. Побеги искривляются и надламыва­ются в местах поражения (рис. 108). Эциоспоры заражают осоку, на листьях которой развиваются урединиопустулы (бурые, поро­шащие) и телиостадия (черные коростинки — пустулы под эпи­дермисом).

Столбчатая ржавчина. Возбудитель — разнохозяйный ржавчин­ный гриб Cronartium hbicola Dietr. (класс Basidiomicetes, порядок Uredinales). Поражает смородину, редко — крыжовник. На ягод­ных культурах развиваются урединио- и телиостадии, на промежу­точных хозяевах (сосна веймутова — Рши5 strobus L., сибирский кедр — Р. sibirica Мауг.) — эциостадия.

Симптомы болезни на ягодных культурах: с верхней стороны листьев образуются хлоротичные пятна, а с нижней (со­ответственно этим пятнам) — желтые или оранжевые округлые порошащие пустулы (подушечки) — спорокучки урединиоспор.

Рис. 108. Бокальчатая ржавчина крыжовника:

а и б— пораженные лист и ягоды; в — эциостадия патогена: / — спермогоний;

2— эций

09

Рис. 109. Столбчатая ржавчина смородины:

о — эциостадия на ветвях сосны веймутовой; б — лист с телиоспорами возбудителя; в — срез пора­женного листа; / — урединиопустула; 2—те-лиопустула

Споры одноклеточные, оваль­ные, размером (21...25)х х(13...18) мкм, оранжевые или желтые, на коротких бесцветных ножках. К концу лета среди урединиопустул образуются сначала светлые, а затем коричневые цилинд­рические столбики, имею­щие вид волосков длиной до 2 мм, — сросшиеся телио-споры. Они светло-бурые, одноклеточные, продолгова­тые, размером (20...60)х X (П...16) мкм. Сильно по­раженные листья буреют, за­сыхают и преждевременно опадают. Телиоспоры про­растают осенью в базидии с базидиоспорами, которые, попадая в трещинки коры промежуточных хозяев (со­сны, кедра), поражают кору и древесину, развивают мно­голетний эциальный мице­лий (рис. 109).

Симптомы болезни на промежуточных хозяевах — пятихвойных соснах: осенью кора и древесина в месте поражения буреют, на коре обра­зуются бесцветные липкие выросты неправильной формы в виде капелек —спермогонии, из которых выделяется клейкая масса с бесцветными спермациями. Весной в месте поражения развива­ются вытянутые опухоли с выступающими из коры желтовато-ро­зовыми пузыревидными вздутиями — эциями длиной 2...7 мм. В них формируются оранжевые яйцевидные эциоспоры размером (22...29)х(18...20) мкм с бесцветной, часто бородавчатой оболоч­кой. Эциоспоры осуществляют первичное заражение смородины. На ветвях сосны в местах поражения ржавчиной образуются утол­щения, искривления. Ветви растут слабо. Многолетняя грибница ежегодно развивает эции в тканях коры.

Вертициллезное увядание смородины. Возбудитель — почвенный гриб Verticillium albo-atrum Rke et Berth, (класс Deuteromyceles, по­рядок Hyphomycetales). Болезнь проявляется в виде оголения и от­мирания стеблей. Возбудитель проникает в растение через корне­вую систему. Корни и корневая шейка темнеют и отмирают. Лис­тья, начиная с нижних, постепенно засыхают и опадают. Затем увядают и усыхают стебли. На срезе таких стеблей хорошо видны побуревшие сосуды.

Во влажной камере на срезах стеблей (из сосудов) выделяется мицелий гриба, на котором быстро, через 3...4 дня, развивается конидиальное спорошение. Оно представлено мутовчато разветв­ленными конидиеносцами и бесцветными одноклеточными овальными конидиями размером (1...3) х(5...12)мкм. Микроскле-роции образуются на отмерших частях растения.

Реверсия, или махровость, смородины. Возбудитель — специфи­ческий вирус Currant reversion virus. Наиболее характерный при­знак болезни — деформация цветков. Они становятся раздельно­лепестными. Чашечка, венчик и тычинки превращаются в узкие лепестки фиолетового цвета. Рыльце становится нитевидным, за­вязь — верхней, пестик ненормально разрастается. Махровые цветки не завязывают плодов. В пределах куста и даже кисти не все цветки могут быть махровыми. При сильном поражении кисть превращается в зеленую тонкую веточку с несколькими чешуйка­ми вместо цветков (рис. 110).

Листья мельчают, ненормально вытягиваются и из пяти-лопастных становятся трехлопастными неравнобокими, с гру­быми жилками и крупными редкими зубчиками по краям лис­товой пластинки. Листья теряют специфический запах. Из бо­ковых почек формируются не цветочные кисти, а многочислен­ные побеги.

Переносчик вирусов — смородинный почковый клещ {Eriophyes ribis West.), зи­мующий в почках смородины, отчего они становятся вздутыми, округлыми.

Рис. по. Реверсия, или махровость, смороііины:

/— вздутые почки; 2-махровость цветков

Окаймление жилок крыжовника. Воз­будитель — вирус окаймления жилок крыжовника {Gooseberry vein-bandinq virus); поражает преимущественно кры­жовник. Наиболее четко симптомы про­являются с начала лета, при этом на мо­лодых, а потом и на более старых листь­ях появляется светло-желтое окаймление жилок первого и второго порядков. Лис­тья плохо развиваются, становятся слег­ка морщинистыми или асимметрично искривлены. У больных растений резко уменьшается рост побегов. Вирус рас­пространяется с посадочным материа­лом, в природе — с помощью некоторых видов тлей, вероятно, по полуперсис-тентному типу.

ПОРЯДОК ВЫПОЛНЕНИЯ РАБОТЫ

Задание 1. Описать и зарисовать симптомы ржавчинных болезней на смородине и крыжовнике. Отметить стадии возбуди­телей.

Задание 2. Нарисовать схему цикла развития возбудителя столбчатой ржавчины смородины, а также симптомы проявления болезни на промежуточных хозяевах.

Задание 3. Приготовить препарат конидиального и сумча­того спороношений возбудителя мучнистой росы и зарисовать их, отметив морфологические особенности.

Задание 4. Отметить признаки поражения побегов сморо­дины антракнозом и септориозом.

Задание 5. Зарисовать и описать признаки поражения смо­родины и крыжовника мучнистой росой, вертициллезным увяда­нием.

Задание 6. Зарисовать и описать признаки поражения смо­родины махровостью, крыжовника — окаймлением жилок.

Материалы и оборудование. Гербарный и фиксированный пораженный расти­тельный материал, постоянные препараты спороношения грибов, скальпели, пре­паровальные иглы, фильтровальная бумага, чашки Петри, предметные и покров­ные стекла, лупы, микроскопы.

Лабораторная работа 35 БОЛЕЗНИ МАЛИНЫ

ВВОДНЫЕ ПОЯСНЕНИЯ

Антракноз. Возбудитель — гриб Gloeosporium venetum Speg. (син. Sphaceloma venetum) (класс Deuteromycetes, порядок Melanco-niales). Болезнь проявляется на всех частях растения, особенно сильно — на побегах и листьях. На молодых побегах образуются мелкие овальные фиолетовые пятна, которые по мере роста побе­гов вдавливаются, становятся серыми с пурпурным (красновато-фиолетовым) окаймлением. При сильном поражении пятна (язвы) сливаются и часто растрескиваются, образуя глубокие раны. Вок­руг пятен могут образоваться наплывы. Пораженные антракнозом побеги осенью и зимой имеют серую окраску (отличительный симптом болезни).

На листьях пятна вначале точечные, разрастаясь, они становят­ся в середине беловато-серыми с фиолетовой каймой (диаметром 1...3 мм). Пораженная ткань часто выпадает. Листья остаются не­доразвитыми, часто скручиваются, засыхают. На черешках и жил­ках листьев пятна мелкие, вдавленные, в виде язвочек, которые могут сливаться (рис. 111). На зеленых ягодах также заметны бу-

Рис. 111. Антракноз стеблей и листьев малины

роватые с фиолетовым окаймлением пятна. Ягоды становятся од­нобокими, буреют и засыхают. При сильном поражении отмирают плодовые кисти и побеги.

Конидиальное спороношение гриба развивается на поражен­ных участках ткани растения под эпидермисом в виде рыхлых по­душечек (конидиальных лож). На ложах заметны группы прямых коротких конидиеносцев с бесцветными эллипсоидными одно­клеточными конидиями размером (5...8) х(2...3) мкм. При повы­шенной влажности спороношение проявляется в виде желтоватой слизистой споровой массы на поверхности пораженной ткани.

Белая пятнистость, или септориоз. Возбудитель — Septoria тЫ West, (класс Deuteromycetes, порядок Sphaeropsidales) (сумчатая стадия — Mycosphaerella гиЫ Roark, относящаяся к подклассу Loculoascomycetidae). Поражает листья и стебли.

На листьях возникают мелкие (диаметром до 3 мм) пятна ок­руглой формы, вначале светло-коричневые. Позднее середина пятна становится белой или сероватой, а вокруг появляется тон­кая бурая кайма. В центре пятен на верхней стороне листа замет­ны черные точки — пикниды гриба. Центр пятна вместе с пикни-дами .может выпадать, лист продырявливается. При сильном раз­витии болезни отмирает значительная доля пластинки листа.

На стеблях, чаще всего в их нижней и средней частях, появля­ются крупные светлые расплывчатые гладкие малозаметные пят­на. Они лучше заметны на растениях сортов с окрашенным стеб­лем. Пятна расположены обычно около почек. Позже на них об­разуются хорошо заметные черные точки — пикниды. Поражен­ная ткань разрывается, образуя продольные и поперечные трещинки, кожица коры (эпидермис) закручивается, шелушится,

создавая впечатление старения, а непораженная часть коры оста­ется гладкой. Поражение приводит к отмиранию стеблей и почек, где также можно обнаружить пикниды.

Конидиальная стадия в пикнидах развивается в течение всего лета, при этом заражаются более старые листья малины. Споры в пикнидах нитевидные, изогнутые, бесцветные, с 2...4 перегородка­ми, размером (40...50)х 1,5 мкм, конидиеносцы малозаметные.

Сумчатая стадия развивается после перезимовки гриба на побе­гах в псевдотециях, имеющих диаметр 100...190 мкм (рис. 112, а). Сумки размером (80...90)х(10.,.12) мкм, длинные, бесцветные, с тупой верхушкой, собранные в плотные пучки. Парафизы отсут­ствуют. Сумкоспоры яйцевидные, двухклеточные, с перетяжкой, размером (18...20) х (7...8) мкм.

₁

₁

VI'

Пурпуровая пятнистость стеблей, или дидимелла. Возбудитель болезни — Didymella applanata Sacc. (класс Ascomycetes, подкласс Loculoascomycetidae), конидиальная стадия гриба — РИота sp. По­ражаются стебли, почки, черешки и пластинки листьев. Пораже­ние стеблей в начальной стадии заболевания очень типично. Вес­ной на молодых побегах появляются небольшие гладкие пурпур­ные (коричневатые или красно-лиловые) расплывчатые пятна, чаш,е всего под местом прикрепления листа, под почкой. Пятна резко выделяются на светлой коре однолетних побегов. По мере разрастания пятна буреют, середина их становится светлее и по­крывается темно-коричневыми или черными точками — пикнида-ми диаметром 150...200 мкм. Споры в пикнидах продолговатые или овальные, одноклеточные, бесцветные, размером (7,1...7,2)х X 3 мкм. Пятна к осени часто окольцовывают побег. На следующий год на этих же пятнах развивается сумчатое спороношение гриба в виде мелких черных бугорков. Поверхность коры светлеет, растрес­кивается, шелушится, при этом симптомы становятся похожими на симптомы пораже­ния белой пятнистос­тью. Стебли часто за­сыхают (рис. 112, б).

Рис. 112. Пятнистости стеблей малины:

о —белая; б—пурпуровая: / — сумчатое спороношение возбудителей; 2—перезимовавшие стебли; J —однолет­ние побеги, пораженные пурпуровой пятнистостью

На листьях болезнь проявляется в виде крупных некротичес­ких пятен неопреде­ленной формы, с пур-

пуровым оттенком, с пикнидами или без них. Пораженные листья опадают. На черешках и плодовых веточках также образуются не­кротические пятна, которые постепенно окольцовывают веточки и вызывают усыхание ягод.

Псевдотеции плоские, диаметром до 170 мкм. Сумки в псевдо-тециях цилиндрические, с парафизами (в отличие от сумчатой стадии септориоза, где парафизы отсутствуют), размером (70... 80) X (10...12) мкм. Аскопоры двухклеточные, бесцветные, заост­ренные на концах, размером 15 х (6...7) мкм, слабо перетянуты в месте перегородки, в сумке расположены беспорядочно.

Рис. 113. Ржавчина малины:

/ —пораженные листья; 2—молодой побеге эциями; J —урелиниоспороношение; ■* —телиоспороношение

Ржавчина. Возбудитель — однохозяйный ржавчинный гриб с полным циклом развития Phragmidium rubi-idaei Karst. (класс Basidiomycetes, порядок Uredinales). Поражает главным образом листья, иногда — стебли. Первые макросимптомы ржавчины — мелкие слегка выпуклые желтовато-оранжевые подушечки на вер­хней стороне — эции гриба. Такие же эции появляются на череш­ках и крупных жилках с нижней стороны листа. Этим симптомам предшествует появление малозаметных мелких коричневатых то­чек — спермогониев, которые быстро исчезают и заменяются эци-альным спороношением. Летом на смену ему появляются ржаво-бурые порошащие подушечки — урединии, расположенные с нижней стороны пластинок листьев. На жилках, черешках, стеб­лях их нет. Размер урединии до 1...2 мм, они окружены парафиза­ми. Урединиоспоры одноклеточные, оранжевые, эллипсоидные, мелкошиповатые, размером (15...20) х(14...18) мкм, легко отрыва­ются от ножки. К осени на смену им развиваются черные пороша­щие пустулы (рис. ИЗ). Телиоспоры темно-бурые, вытянутые,

многоклеточные (6... 10 клеток), с толстой оболочкой, на длинной расширяющейся прозрачной ножке, их размер (80...135)х х(28 ... 35)мкм.

В год первичного заражения на нижней части стебля появляют­ся буроватые пятна, покрытые мелкими оранжево-коричневыми точками — спермогониями гриба. Затем на пятнах образуются светлые язвочки, а в центре их — желтые подушечки (пустулы) — эции. Язвочки сливаются и на двухлетних стеблях дают продоль­ные трещины за счет разрастания грибницы по стеблю. Стебли переламываются и засыхают.

Мозаика малины. Это условное название нескольких вирусных болезней малины, вызывающих развитие различной по интенсив­ности и рисунку мозаичной окраски листьев. К группе мозаичных вирусов относят те, которые в естественных условиях распростра­няются побеговой малинной тлей {Amphorophora idaei Borner.).

Возбудители пятнистой мозаики — вирус пятнистос­ти листьев малины [Raspberry leaf spot virus) и вирус крапчатости листьев малины {Raspberry leaf mottle virus), близкородственные ви­русы с изометрическими частицами размером 30 нм. Симптомы: на молодых листьях четко ограниченные кольца, пятна, обычно диаметром 1...4мм, хаотично разбросанные. На плодоносящих побегах пятна более интенсивной окраски, чем на однолетних, они могут сливаться в большие хлоротичные межжилковые зоны. Листья более мелкие, деформированные. На растениях некоторых сортов встречается латентная инфекция.

Возбудитель желтой сетчатой мозаики — вирус желтой сетчатости (Rubus yellow net virus). Это вирус с бацилловид-ными вирионами размером (80...150)х(25...31) нм, переносимый тлями и в процессе прививки. Симптомы: светло-зеленые полосы вдоль тонких жилок листьев, позже посветление распространяется на главные жилки. Часто наблюдаются разнообразные деформа­ции листьев. На растениях некоторых сортов имеют место только хлоротичные штрихи вдоль жилок. Признаки могут маскировать­ся при высокой температуре.

Израстание, или карликовость, «ведьмина метла», малины. Воз­будитель — фитоплазменный организм {Rubus stunt phytoplasma). Инфекция передается прививкой и переносится цикадками рода Macropsis Zett. Симптомы: образование многочисленных (более сотни) тонких побегов с мелкими хлоротичными деформирован­ными листьями. Происходит преждевременное прорастание боко­вых почек с образованием коротких, слабых, иногда отмирающих побегов. Встречаются позеленение и израстание цветков. Ягоды мелкие, жесткие. В дальнейшем растения теряют способность к цветению. Больные растения погибают в течение 6...8 лет.

Неинфекциоиный, или функциональный, хлороз. Проявляется в побелении или пожелтении листьев. Чаще всего причина хлоро­за — высокая карбонатность почв, на которых растения испытыва-

Рис. 114. Неинфекционный хлороз малины:

/— здоровыГі лист; 2, 3 — разная степень проявления хлороза

ЮТ железное голодание. При этом развивается типичный межжил-ковый хлороз (рис. 114). Начальные симптомы заболевания обна­руживаются на верхних, самых молодых листьях. Первые хлоро-тичные (желто-зеленые) участки ткани заметны между мелкими жилками, затем желтеют мелкие жилки, а крупные остаются зеле­ными, заканчивается процесс сплошным пожелтением листьев. Края пластинок таких листьев буреют и разрываются, листья за­сыхают и опадают.

При недостатке азота в почве признаки хлороза сходны с же­лезным голоданием, но пожелтение начинается со старых листьев, расположенных у основания побега, и распространяется вверх.

Недостаток магния и марганца помимо межжилкового хлороза вызывает окаймление листовой пластинки.

Хлороз может наблюдаться и при недостатке серы, а также на тяжелых заплывающих почвах при близком уровне грунтовых вод, когда нарушен водно-воздушный режим.

ПОРЯДОК ВЫПОЛНЕНИЯ РАБОТЫ

Задание 1. Зарисовать и описать проявления антракноза, септориоза и пурпуровой пятнистости на малине.

Задание 2. Приготовить препарат конидиальной и сумча­той стадий возбудителя септориоза малины. Зарисовать пикниду, конидии, псевдотеции, сумки и сумкоспоры.

Задание 3. Зарисовать цикл развития возбудителя ржавчи­ны малины. Отметить, какие виды спороношения развиваются на листьях и стеблях малины и когда.

Материалы и оборудование. Гербарныіі и фиксированный пораженный расти­тельный материал, постоянные препараты спороношения грибов, препароваль­ные иглы, предметные и покровные стекла, микроскопы.

Лабораторная работа 36 БОЛЕЗНИ ЗЕМЛЯНИКИ

ВВОДНЫЕ ПОЯСНЕНИЯ

Пятнистости листьев. Возбудитель рамуляриоза, или б е -лой пятнистости, — гриб Ramularia tulasnei Sacc. (класс Deuteromycetes, порядок Hyphomycelales). Поражает главным об­разом пластинки листьев, но могут поражаться и черешки, цвето­носы, усы. На листьях вначале появляются мелкие округлые бу­рые пятна диаметром 1...2 мм. Затем они становятся слегка углова­тыми, в центре светлыми, белыми, с четким пурпурным ободком. Центр пятна может выпадать, лист становится дырчатым.

На черешках, цветоносах, усах пятна вытянутые, вдавленные, сначала коричневые, затем более светлые в центре и темные по краям. На поверх­ности пятен (на листьях преимущественно с нижней стороны) во влажную пого­ду развивается слабый свет­лый налет ~ спорокучки ко-нидиального спороношения гриба в виде белых дернови-нок (на сухом материале видны только под лупой).

Конидии бесцветные, ци­линдрические, одноклеточ­ные или с 1...2 перегородка­ми. Конидиеносцы корот­кие, неветвящиеся, собраны в пучки, выходящие через устьица. Размер конидий (15...45)х(2,5...5)мкм (рис. 115, а).

На пораженных участках

ткани гриб образует СКЛеро- p„c.lis. Пятнистости листьев земляники ЦИИ диаметром 0,5...0,8 мм, (пораженные листья и конидиальное споро- СТОЛбИКООбразНЫе или не- ношение возбудителей):

правильной формы, кото- о-рамуляриоз, или белая пятнистость; б-

рые могут быть частично бурая пятнистость; « —коричневая пятнистость погружены в ткань; весной развивается конидиальное спороно-шение.

Некоторое значение в сохранении возбудителя имеет сумчатая статя-—Mycosphaerella fragariae Sacc. Сумки в псевдотециях ци­линдрические, часто вверху изогнутые, размером (50...90)х (7... 9) мкм. Сумкоспоры двухклеточные, бесцветные, цилиндричес­кие, прямые, размером (12...15) х (3...4) мкм. Но псевдотеции вес­ной созревают несколько позже, чем образуются конидии на скле-роциях.

Возбудитель бурой пятнистости — гриб Marssonina potentillae (Desm.) Magn. f. fragaria (Lib.) Ohi. (класс Deutero­mycetes, порядок Melanconiales). Поражает пластинки и черешки листьев. На пораженных пластинках листьев образуются пятна не­правильной формы (реже — округлые), расплывчатые или ограни­ченные жилками. Цвет пятен красно-бурый, бурый или темно-пурпурный, к периферии более темный. На черешках листьев и усах пятна мелкие, вдавленные, пурпурные.

На верхней стороне пятен образуются мелкие черные, словно лакированные, подушечки — конидиальное спороношение гриба. Оно развивается под эпидермисом в виде ложа (стромы) с бес­цветными мелкими — (16,5...28) х (5...7,5) мкм двухклеточными конидиями. Верхняя клетка конидии клювовидно изогнутая, ниж­няя — цилиндрическая, споры по форме напоминают садовый нож (рис. 115, б).

Возбудитель коричневой, или угловатой, пятнис­тости— гриб Zythia fragariae Laib. (син. Dendrophoma obscurans Anders.), относящийся к классу Deuteromycetes, порядку Hyphomycetales. Сумчатая стадия— Gnomoniafructicola Fall. ГҒора-жаются листья. На них появляются округлые светло- или темно-коричневые пятна с более темной каймой. Вначале пятна средних размеров (10...50 мм), затем быстро разрастаются, сливаются. Об­разуются крупные участки пораженной ткани неправильной фор­мы. Пятна чаще всего приурочены к крупным жилкам или идут от края листа к центру, образуя V-образную фигуру (рис. 115, в). Иногда на пятнах четко выражена зональность. Со временем ку­тикула в центре крупного пятна отслаивается, а на старых пятнах отпадает.

В центре пятна на верхней стороне листа формируются пикни-ды в виде бурых точек. Конидии в пикнидах одноклеточные, мел­кие (1,5...4,8 мкм), бесцветные, прямые.

Серая гниль. Возбудитель — Botrytis cinerea Pers. (класс Deuteromycetes, порядок Hyphomycetales). Особенно сильно пора­жаются ягоды земляники и малины, а также листья, цветки, пло­доножки. На ягодах вначале появляются бурые размягченные пят­на, быстро захватывающие всю ягоду. Ягода теряет вкус и аромат, покрывается густым серым налетом — конидиальным спороноше-нием возбудителя. Затем мицелий гриба пронизывает всю ягоду, и

Рис. 116. Серая гниль (а) и мучнистая роса (б) земляники

В сухую погоду она превращается в серый высохший комочек (мумифицируется) с порошащим налетом. На листьях пятна бу­рые или темно-серые, расплывчатые, округлые, крупные (рис. 116, а). Пораженная ткань отмирает. На пятнах заметен слабый серый налет конидиального спороношения гриба. На плодонож­ках бурые пятна часто окольцовывают их, завязь засыхает еще зеленой.

Конидии округлые или овальные, бесцветные, одноклеточные, размером (9...12)х (6,5...!0) мкм, скученно (головками) прикреп­ляются к маленьким зубчикам на концах древовидно разветвлен­ных конидиеносцев. Осенью на пораженных частях растений раз­виваются мелкие (диаметром 2...5 мм) черные склероции непра­вильной формы, которые сохраняются в течение зимы.

Мучнистая роса. Возбудитель —гриб Sphaewtheca macularis Magn. f. fragariae Jacz. (класс Ascomycetes, порядок Erysiphales). В конидиальной стадии, в которой болезнь распространяется и про­является на листьях, бутонах, цветках, завязях, ягодах, гриб отно­сится к роду Oidium spp. Мучнистая роса поражает листья, бутоны, цветки, завязи, которые покрываются редким тонким белым нале­том. На бутонах и завязях налет почти незаметен.

На листьях гриб развивается преимущественно с нижней сто­роны, и налет представлен мицелием и конидиальным спороно-шением — бесцветными бочонкообразными конидиями размером (29...32)х(18...22) мкм, собранными цепочкой и легко отчленяю­щимися от коротких конидиеносцев.

Больные листья становятся кожистыми, края их скручиваются внутрь, все растение постепенно приобретает буроватый оттенок. На ягодах, особенно на зрелых, заболевание проявляется ярче. При сильном поражении мучнистой росой они кажутся припуд­ренными крахмалом и приобретают специфический грибной за­пах, являющийся характерным диагностическим признаком бо­лезни (рис. 116, 6).

Сумчатая стадия гриба представлена плодовыми телами — клейстотециями, появляющимися на налете в конце лета. Они ок­руглые, темно-коричневые, с простыми буроватыми придатками, содержат по одной сумке, в которой формируется 8 сумкоспор. Сумка мещковидная, размером (45...90) х (40...70) мкм. Сумкоспо-ры овальные, одноклеточные, бесцветные, размером (20...25)х х(12...18) мкм.

Фузариозное увядание, или фузариозный вилт. Возбудители — почвообитаюшие грибы рода Fusarium (чаще — F. oxysporum Schl.), относящиеся к классу Deuteromycetes, порядку Hyphomycetales. Первые симптомы: слабый некроз по краям листовой пластинки и привядание отдельных долей листа. Пораженные пластинки и че­решки листьев буреют и отмирают. Иногда розетка куста развали­вается, больные кусты «садятся», как бы прижимаются к земле. Увядание растений начинается с фазы налива и созревания ягод. В это время все листья больных растений теряют тургор и поника­ют, корневая шейка и главный корень загнивают. На поперечных и продольных срезах корней больных растений можно обнару­жить некроз проводящих сосудов.

Во влажных условиях на пораженных частях растений развива­ется обильная белая грибница патогена с темно-бордовыми спле­тениями. Микроконидии одноклеточные, грушевидные, лимоно­видные, яйцевидные, размером (4,4...6,8) х (5,7...7,6) мкм. Макро­конидии серповидно-удлиненные, с 3 перегородками.

Вертициллезное увядание, или вертициллезный вилт. Возбудите­ли — грибы Verticillium albo-atrum Rke et Berth, и V. dahliae Kleb. (класс Deuteromycetes, порядок Hyphomycetales). Поражают зем­лянику любого возраста. Признаки увядания развиваются от пе­риферии к центру куста. Старые краевые листья теряют тургор, черешки их краснеют, листья распластываются на поверхности почвы, буреют и засыхают. Молодые, центральные листья ста­новятся матовыми, хлоротичными, мелкими. Рост пораженных кустов приостанавливается, они подвядают и гибнут. Внутрен­няя часть корня и ткань сердечка у основания куста буреют, превращаясь в сухую гниль. На поперечном срезе пораженного стебля или корня видно потемнение сосудистого кольца или его участков.

В пораженных тканях можно обнаружить сначала белую, а за­тем серую грибницу с желто-бурыми микросклероциями. Конидиальное спороношение представлено мутовчато разветвленными конидиеносцами, на концах которых находятся овальные бесцвет­ные или дымчатые конидии размером (5...15)х(1...3) мкм.

Фитофтороз корней, или покраснение осевого цилиндра корня.

Возбудитель — Phytophthora fragaria Hickman (класс Oomycetes, по­рядок Peronosporales). Это узкоспециализированный патоген: по­ражает только культивируемую землянику.

При хронической форме фитофтороза развитие больных кустов весной запаздывает, молодые листья теряют блеск, приоб­ретают сероватый оттенок, черешки укорачиваются, пластинки листьев становятся мелкими, чашевидными. На таких кустах ста­рые листья преждевременно увядают, плодоношение резко пада­ет, усы образуются слабо. В период созревания ягод отдельные ку­сты начинают отмирать, увядать, но полная гибель растения на­ступает через 2...3 года после заражения.

При скоротечной форме болезни в начале весны внезап­но увядают нижние листья или все растение, а иногда только цве­тоносы. Анализ корневой системы показывает, что отмирают моч­коватые корни, а более крупные оголяются и сужаются книзу («крысиный хвост»). Центральный осевой цилиндр корня приоб­ретает красную окраску, хорошо видимую на срезе.

В цикле развития патоген имеет зооспоры и ооспоры. Ооспоры сферической формы, диаметром 25...40 мкм. Зооспорангии на зооспорангиеиосцах образуются на поверхности пораженных кор­ней в сырой почве.

Фитофтороз земляничного растения, или фитофторозная гниль, или кожистая гниль ягод земляники. Возбудитель — широкоспециа­лизированный патоген Phytophthora cactorum Schroet. (класс Oomycetes, порядок Peronosporales). Поражает корневую систему и надземную часть растения, вызывая разнообразные симптомы. На ягодах крупные бурые пятна плотной гнили. Постепенно вся ягода буреет, приобретает резиноподобную консистенцию, а ее поверхность становится жесткой, кожистой. На разрезе видно по­темнение сердцевины, идущее от плодоножки. На созревающих ягодах пятна с боков светлые с фиолетовым оттенком. Вкус и за­пах ягод неприятные. На листьях сначала образуются расплывча­тые темно-зеленые маслянистые пятна, увеличивающиеся в раз­мерах. Листья привядают, затем подсыхают, становятся хрупки­ми, ломкими. Более старые листья жесткие, с закрученными книзу краями.

На жилках, цветках, черешках листьев, цветоносах, корневой шейке появляются разных размеров и формы бурые вдавленные некрозы, часто окольцовывающие их. Цветоносы поникают, увя­дают. При поражении корневой шейки растение легко отделяется от корней. Розетки образуются на коротких усоплетях, листья их мелкие, жесткие, гофрированные. Пораженные кусты характери­зуются некоторым развалом листьев от центра к периферии. При этом может наблюдаться быстрое увядание куста. Сначала увяда-

ют нижние листья, которые поворачиваются верхней стороной вниз и ложатся на почву, затем увядает все растение.

Ооспоры шаровидные, светло-коричневые, с двухслойной плотной оболочкой (средний диаметр ооспор 29 мкм). Кониди-альное спороношение проявляется на всех частях растения в виде слабого налета и только во влажных условиях.

Вирусные и фитоплазменные болезни. Симптомы болезней в большинстве случаев соответствуют их названиям и вызываются каким-либо одним вирусом или (чаще) их комплексом. Наличие латентной вирусной инфекции на землянике требует диагностики с использованием растений-индикаторов (например, лесной зем­ляники — Fragaria vesca L.).

Морщинистость листьев вызывается комплексом вирусов земляники: вирусом морщинистости (Strawberry crincle virus), вирусом крапчатости (Strawberry mottle virus) и др. У зара­женных растений листья мелкие, ткань между жилками морщини­стая, позже они покрываются хлоротичными и некротическими пятнами. Часто наблюдается пожелтение краев листьев. Жилки становятся светлыми, слегка стекловидными, искривляются.

Возбудитель крапчатости — вирус крапчатости земляни­ки (Strawberry mottle virus). Симптомы проявляются в виде мелких хлоротичных (светло-зеленых) пятен-точек, беспорядочно распо­ложенных на листьях. Доли молодых листьев асимметричны, рас­тения угнетены, образование усов слабое, ягоды почти не форми­руются. Наиболее активные переносчики вируса —земляничные тли рода Myzus (Myzodes) Su!z.

Возбудители мозаики — вирус мозаики резухи (Arabis mosaic virus) и вирус кольцевой пятнистости малины (Raspberry ringspot virus). Оба вируса имеют изометрические частицы диамет­ром около 30 нм. Переносятся контактно-механическим путем, почвенными нематодами и в процессе прививки. На листьях за­метны светло-зеленые или желтоватые пятна разной величины и формы с нечеткими краями. Листья мелкие, деформированные, растения угнетены.

Возбудитель позеленения лепестков — фитоплаз-менный организм (Green petalphytoplasma), переносчиками кото­рого являются цикадки, особенно Aphrodes bicinctus Schrk. Расте­ния слабо развиты, у них образуется много листьев, мелких, с тон­кими черешками, светло-зеленых, с признаками морщинистости и крапчатости. У цветков сильно разросшиеся чашелистики, лепе­стки же более мелкие, с зеленоватым оттенком. Ягоды мелкие, уродливые, с многочисленными семянками. При сильном пора­жении цветоносы не развиваются или имеют нитевидную форму и не дают плодов.

ПОРЯДОК ВЫПОЛНЕНИЯ РАБОТЫ

Задание 1. Описать и зарисовать признаки пятнистостей листьев земляники.

Задание 2. Зарисовать проявление серой гнили на ягодах и листьях малины и земляники.

Задание 3. Приготовить препарат и зарисовать конидиаль-ное спороношение гриба Botrytis cinerea.

Задание 4. Провести анализ растений земляники с симпто­мами увядания на наличие фузариозной или вертициллезной ин­фекции. Для этого поперечные и продольные срезы ткани расте­ния (корня, стебля) поместить во влажную камеру на 2...3дня. При наличии возбудителя на срезе пораженной ткани появится налет. Приготовить препарат со спороношением. По цвету налета и спороношению определить возбудителя. Зарисовать спороноше­ние патогена.

Материалы и оборудование. Гербарный и фиксированный пораженный расти­тельный материал, постоянные препараты спороношения грибов, скальпели, пре­паровальные иглы, фильтровальная бумага, чашки Петри, предметные и покров­ные стекла, лупы, микроскопы.

Лабораторная работа 37 БОЛЕЗНИ ВИНОГРАДА

ВВОДНЫЕ ПОЯСНЕНИЯ

Милдью. Возбудитель — гриб Plasmopara viticola Berl. et de Toni (класс Oomycetes, порядок Peronosporales). Поражает все молодые органы растения. На листьях с верхней стороны появляются жел­товатые, как бы маслянистые округлые пятна, с нижней стороны во влажных условиях — белый мучнистый налет конидиального спороношения. Постепенно пятна некротизируются, приобретая красновато-бурый оттенок. Соцветия буреют и засыхают, бутоны осыпаются. Больные ягоды буреют, сморщиваются, засыхают и опадают. При образовании конидиального спороношения на яго­дах они становятся темно-серыми (рис. 117).

Ооспоры образуются в ткани пораженных листьев. Они округ­лые, с четырехслойной оболочкой, диаметром 25...35мкм. Кони-диеносцы (зооспорангиеносцы) имеют моноподиальное ветвле­ние. Зооспорангии бесцветные, лимоновидные, размером (8,5... 12)х(12,5...30)мкм.

Оидиум. Возбудитель — гриб Uncinula necator Burr, (класс Ascomycetes, порядок Erysiphales). Поражаются листья, побеги, ягоды. Больные органы покрыты характерным белым, впослед­ствии пепельно-серым налетом. Ягоды прекраш,ают рост и засыха-

Рис. 117. Милдью винограда:

/ — проявление болезни на нижней (слева) и верхней сторонах листа;

2..6—ягоды разного возраста с симптомами поражения милдью; 7—зоо-

спорангиеноссц и зооспорангии возбудителя

ЮТ, не опадая, а при более позднем заражении они растрескива­ются, обнажая семена. Пораженные побеги плохо древеснеют. Больные листья выглядят так, как будто их посыпали пеплом (рис. 118). На пораженных листьях и побегах со временем образу­ются клейстотеции в виде мелких округлых темно-коричневых об­разований.

Конидиальная стадия — Oidium tuckeri Berkl.

Конидии одноклеточные, бесцветные, эллиптические или бо-чонкообразные, размером (25...30) х (8...9) мкм, располагаются це­почками.

Антракноз. Возбудитель — Sphaceloma ampelinum dBy (син. Gloeosporium ampelophagum Sacc.) (класс Deuteromycetes, порядок Melanconiales). Поражаются листья, побеги, ягоды, черешки, усы. На листьях сначала появляются слабозаметные светло-коричне­вые пятна. Затем пятна увеличиваются, становятся бурыми, появ­ляется темно-фиолетовая кайма. Позднее больная ткань выпадает. На черешках пятна принимают вид язвочек. Сильное поражение

Рис. 118. Оидиум винограда (пораженные ягоды и лист; конидиальное спороношение Oidium tuckeri)

черешков приводит к опадению листьев. На ягодах пятна чуть вдавленные, округлые, вначале темно-фиолетовые, затем кофей­ного цвета, а еще позже — черные с темно-фиолетовым окаймле­нием. На побегах заметны небольшие бурые пятна, которые по мере роста вытягиваются и углубляются. Затем пятно приобретает кофейный цвет с темно-фиолетовым ободком. Язвы глубокие, с наплывами по краям. Сливаясь, язвы охватывают побег кольцеоб­разно. Побеги становятся уродливыми и кажутся обугленными, черными (рис. 119). На поверхности пораженной ткани гриб обра­зует сероватые подушечки — ложа конидиеносцев с конидиями. Конидии одноклеточные, бесцветные, продолговатые, размером (З...6)х(2,5...3,5)мкм.

•^

Рис. 119. Лнтракноз винограда:

A..J—прояапение болезни на листе, ягодах, побеге; 4 — конидиальное ложе; ; 5 —конидии возбудителя

Церкоспороз. Различают весенний и осенний церкоспороз. Возбудитель весеннего — гриб Cercospora vitis Sacc, а осеннего — Cercospora rosleri Sacc. Оба относятся к классу Deuteromycetes, по­рядку Hyphomycetales. Поражаются преимущественно листья. При весеннем церкоспорозе на нижней стороне листа заме­тен равномерный зеленовато-оливковый налет, а при осеннем церкоспорозе на нижней стороне — буровато-оливковые округлые дернинки спороношения, на верхней — буровато-желтые пятна со светло-малиновой каймой. Листья отмирают и преждевременно опадают.

Конидиеносцы С. vitis буровато-оливковые, размером 50... 200 мкм, конидии оливкового цвета, веретеновидно-булавовид-ные, с 3...11 перегородками, размером (30...90) х (6...8) мкм. Ко­нидиеносцы С. rosleri светло-оливковые или оливково-бурые, размером (35...80) х (4...5) мкм, конидии цилиндрические, олив­ковые, в цепочках, с 3...5 перегородками, размером (20...65)х X (5... 8) мкм.

Краснуха. Возбудитель — Pseudopeziza tracheiphila Mull-Thurg. (класс Ascomycetes, порядок Helotiales). Поражаются листья. На листьях красных сортов винограда в углах между крупными жил­ками появляются красные пятна с ярко-зеленым или желтым ободком. На листьях белых сортов пятна вначале не красные, а желтые, впоследствии признаки те же, что и на красных сортах винограда. На перезимовавших пораженных листьях формируют­ся белые или желтоватые апотеции диаметром 130...140 мкм. Сум-коспоры яйцевидные, бесцветные, размером (18...22) х(9,5... 11) мкм.

Пятнистый некроз. Возбудитель — гриб Rhacodiella vitis Sterenb. (класс Deuteromycetes, порядок Hyphomycetales).

Пораженные растения чахнут, наблюдается короткоузлие, от­мирание рукавов, мелколистность. Точный симптом болезни — темно-коричневые или почти черные пятна на лубе. Пятна можно обнаружить, сняв кору с растений с симптомами пятнистого не­кроза. Во влажных условиях на поверхности коры иногда появля­ется конидиальное спороношение. Конидиеносцы мутовчатые, на вершине их образуются темно-коричневые стеригмы, собранные в головки размером 5 х (8... 12) мкм. На стеригмах образуются одно­клеточные, округлые или овальные, бледно-розовые конидии раз­мером 2...3 мкм.

Черная пятнистость. Возбудитель — гриб Phomopsis viticola Sacc. (класс Deuteromycetes, порядок Sphaeropsidales). Поражаются лис­тья, побеги, гребни соцветий, ягоды.

На побегах, гребнях появляются круглые или овальные темно-коричневые пятна, затем они приобретают сероватую окраску, кора покрывается многочисленными черными пикнидами и рас­трескивается. На молодых листьях вдоль жилок заметны темно-коричневые слегка угловатые пятна со светлым ореолом (на старых листьях некрозы без светлых ореолов). Пораженные ягоды красных сортов обесцвечиваются, сморщиваются, загнивают и приобретают темно-коричневый цвет. Ягоды белых сортов при поражении приобретают пурпурно-синюю окраску.

Пикниды возбудителя чечевицеобразной или приплюснутой формы, их цвет варьирует от светло- до темно-коричневого, раз­мер 200...350 мкм. Конидии одноклеточные, бесцветные, они бы­вают двух типов: линзообразные, размером (6,5...15,0)х(1,7... 5,3) мкм и нитевидные, размером (22...32)х(0,5...1,5) мкм.

Белая гниль. Возбудитель ~ гриб Coniothyrium diplodiella (Speg.) Sacc. (класс Deuteromycetes, порядок Sphaeropsidales). Особенно сильно поражаются ягоды, но могут заболевать листья и побеги. На листьях появляются грязно-зеленые пятна, а на побегах — бу­рые зональные. На ягодах заметны сначала желтые, а затем сине­вато-бурые пятна, окруженные концентрическим ореолом раз­личного цвета. Вся ягода становится бурой или синевато-бурой, сморщивается и засыхает. Поверхность покрывается грязновато-белыми бугорками (рис. 120). Это выступающие из-под кожицы пикниды. Пикноспоры одноклеточные, овальные, светло-олив­ковые.

Серая гниль. Возбудитель — Botrytis cinerea Pers. (класс Deutero­mycetes, порядок Hyphomycetales).

Рис. 120. Белая гниль винограда:

Л..J—пораженные грозди и ягода; 4и 5—соответственно пикнида и споры возбудителя

Больше всего поражаются ягоды. Они покрываются серым плесневидным налетом. Мякоть ягоды становится дряблой, целлюлозная оболочка отделяется от кожицы, и ягода как бы ос-лизняется. Вкус ягоды кислый, запах неприятный, плесенный (рис. 121).

На пораженных ягодах развивается конидиальное спороношение в виде серого налета. Налет состоит из ми­целия, на котором появля­ются оливковые древовидно разветвленные конидиенос-цы с дымчатыми однокле­точными конидиями яйце­видной формы, размером (9...12)х(6,5...10)мкм.

Рис. 121. Серая гниль винограда (поражен­ная гроздь; конидиеносец и конидии возбу­дителя)

Бактериальный рак. Воз­будитель — Agrobacterium Ш-mefaciens Conn. Поражаются одревесневшие части куста, чаще в районе корневой шейки. Поражение прояв­ляется в виде разрастаю­щейся опухоли с неровной поверхностью. Окраска ме­няется с возрастом. Вначале опухоль желтоватая, затем коричневая и почти черная. Опухоль может растрескиваться.

Вирусный инфекционный хлороз, пестролистность, панашюр, желтая мозаика. Возбудитель — вирус инфекционного хлороза винограда {Grapevine chrome mosaic virus). Поражение начинается со старых листьев. На них желтеют жилки, а затем и ткани между жилками. В результате листовые пластинки почти полностью обесцвечиваются. Постепенно симптомы проявляются и на бо­лее молодых листьях. Симптомы отчетливее видны в проходя­щем свете.

Короткоузлие. Возбудитель — вирус короткоузлия винограда {Grapevine fanleaf virus). У растений наблюдается общее угнетение, междоузлия укороченные и зигзагообразно искривленные. Листья резко деформируются; они или сильно рассечены (наподобие вее­ра) или нетипично округленные, с расширенным основанием. При короткоузлии опадают цветки и образуются полупустые гроз­дья с недоразвитыми ягодами.

Хлороз неинфекционный. Симптомы схожи с признаками вирус­ного хлороза, но при неинфекционном пожелтение листа начина­ется с межжилковых тканей. Зеленая окраска вдоль жилок сохра­няется очень долго. Наиболее частая причина неинфекционного хлороза — недостаток железа, вызванный высокой карбонатностью почв.

ПОРЯДОК ВЫПОЛНЕНИЯ РАБОТЫ

Задание 1. Описать и зарисовать симптомы милдью и оидиума.

Задание 2. Приготовить препараты конидиальных стадий возбудителей милдью и оидиума. Рассмотреть под микроскопом и зарисовать.

Задание 3. Приготовить препарат и рассмотреть ооспоры Р. viticola. Для этого нужно взять перезимовавшие листья виногра­да, из побуревшего участка листа выделить кусочек размером в несколько миллиметров и поместить в каплю воды на предметном стекле. Для лучшей видимости ооспор добавить каплю молочной кислоты, накрыть покровным стеклом и слегка подогреть препа­рат на спиртовке. Рассмотреть в микроскоп при малом и большом увеличениях и найти округлые тельца размером 25...35мкм жел­той, светло-бурой или бурой окраски (в зависимости от степени зрелости ооспор).

Задание 4. Описать и зарисовать симптомы антракноза, церкоспороза, краснухи, инфекционного хлороза, мозаики и ко-роткоузлия.

Задание 5. Дать сравнительную характеристику симптомов антракноза, черной пятнистости и пятнистого некроза на побегах виноградной лозы. Заполнить таблицу по форме 10.

Симптомы болезней на побегах виноградной лозы

Форма 10

Название болезни

Кора

Поражаемая ткань

Луб

Древесина

Симптомы

Характер спороношения

Задание 6. Заполнить таблицу по форме 11, отметив основ­ные особенности проявления болезней (милдью, оидиум, антрак-ноз, черная гниль, серая гниль, белая гниль, черная пятнистость) на ягодах винограда.

Поражение ягод винограда инфекционными гнилями

Форма И

Название болезни

Возбудитель

Форма

Характер гниения ягод

Наличие спороноше­ния

Изменения при наступ­лении сухой погоды

Место пер­вичного заражения

Материалы и оборудование. Гербарии, свежие и зафиксированные в формали­не плоды с признаками болезней, пораженные побеги и ветви, препаровальные иглы, лезвия безопасной бритвы, бинокуляторы и микроскопы, спиртовки, пред­метные и покровные стекла, молочная кислота, чашки Петри.

Лабораторная работа 38 БОЛЕЗНИ ЦИТРУСОВЫХ КУЛЬТУР

ВВОДНЫЕ ПОЯСНЕНИЯ

Парша, или бородавчастость. Возбудитель — Sporotrichum citri Butl. (класс Deuteromycetes, порядок Hyphomycetales). На листьях, зеленых побегах и плодах появляются небольшие бородавочки или коростинки оранжевого, желтого или красноватого цвета. Позже на старых листьях бородавки становятся крупными, буры­ми. В местах поражения ткань разрывается и разрушается. Силь­ное развитие заболевания на побегах приводит к отмиранию той части, которая находится выше места поражения. На плодах боро­давки разрастаются, сливаются, образуя корковый нарост, что приводит к сильной деформации плода. На поверхности борода­вок хорошо заметен бурый налет, состоящий из 1...3-клеточных конидиеносцев с бесцветными одноклеточными (реже — с одной-двумя перегородками) конидиями размером (5...8,5)х(2,5... 3,5) мкм.

Инфекционное усыхание, или мальсекко. Возбудитель — Phoma tracheiphila Allesch. (син. Deuterophoina tracheiphila Petri) (класс Deuteromycetes, порядок Sphaeropsidales). Заболевание относится к типу сосудистых, поражает растения разного возраста (рис. 122).

Первые признаки — хлоротичность и опадение верхушечных, а также усыхание последующих листьев. В дальнейшем постепенно усыхают побеги (сверху вниз), опадают зеленые, внешне здоровые листья (вначале листовые пластинки, затем черешки). При силь­ном развитии заболевания опадают листья и плоды на более круп­ных и (позже) на скелетных ветвях. Параллельно происходит усы­хание ветвей. На отмерших частях развиваются шаровидно-кони­ческие пикниды размером (125...140) х (100...115) мкм. Под эпи­дермисом образуется масса пикноспор, выходящих из пикнид слизистым шнуром длиной до 1 мм. Пикноспоры овальные, раз­мером (4...7)х (З...3,5) мкм. Пораженная древесина приобретает красновато-оранжевую окраску, что служит одним из диагности­ческих признаков заболевания.

Рис. 122. Мальсекко лимона:

/ —усыхание ветви; 2 —срез поражен­ной ветви (видны потемнение, некроз сосудов); J— пикниды и споры возбуди­теля

Антракноз. Возбудитель — Colletotrichum gloeosporioides Penz. (класс Deuteromycetes, порядок Melanconiales). Поражаются лис­тья, плоды, побеги, ветви, реже цветки (рис. 123). На листьях вид­ны крупные буроватые с сероватым оттенком пятна. Во влажную погоду на них появляются концентрически расположенные бурые или черные точки — подушечки конидиального спороношения. Молодые листья и цветки чернеют, увядают и опадают. Побеги приобретают коричневую окраску, затем, усыхая, становятся свет­ло-серыми, на них развивается большое количество подушечек

спороношения гриба. Иногда наблюдается камедетечение. Листья на таких побегах буреют, скручиваются и опадают. На плодах за­метны светлые, постепенно краснеющие слабовдавленные пятна, которые со временем чернеют, на них появляются подушечки спороношения возбудителя. Конидии цилиндрические, с округ­лыми концами, одноклеточные, розоватого цвета, размером (8...22)х(2,5...7,5)мкм. На ложе гриба развиваются щетинки ко­ричневого цвета, длиной 60...160 мкм.

Камедетечение, или гоммоз. Встречается две формы болезни со схожими макросимптомами: неинфекционная и инфекционная. И в том и в другом случае характерно выделение из пораженных участков коры гуммиобразной (клейкой) жидкости — камеди (рис. 124).

Инфекционный гоммоз вызывают несколько видов патогенов,

Рис. 123. Антракноз цитрусовых

(пораженный лист и конидиальное

спороношение возбудителя)

Рис. 124. Дерево лимона, пораженное гоммозом

среди которых более широко представлен род Phytophthora (класс Oomycetes, порядок Peronosporales).

Фитофтороз, или гниль корневой шейки. Возбудители заболева­ния — Phytophthora citrophthora Leonian, Ph. parasitica Dastur и неко­торые другие виды. Поражаются саженцы и взрослые растения (штамб, корневая шейка, листья и плоды) всех цитрусовых, осо­бенно сильно — лимона.

На коре штамбов саженцев образуются небольшие маслянис­тые пятна фиолетово-бурого цвета. Кора растрескивается, из ра­нок выделяется клейкая жидкость — камедь. Постепенно пятна разрастаются и окольцовывают штамб, растения усыхают.

На плодоносяших деревьях пораженная кора слегка вздувается, растрескивается, камедь (вначале желтовато-белая, затем бурая) вытекает наружу и затвердевает, образуя наплыв. Кора отстает от древесины, продольно растрескивается и отмирает. Болезнь пере­ходит на штамб, ветви, корни, что приводит к гибели дерева.

На листьях, начиная с верхушек, вдоль главной жилки появля­ются одиночные маслянистые, постепенно темнеющие до бурого цвета, сливающиеся пятна. С их нижней стороны хорошо заметен светлый налет, состоящий из зооспорангиеносцев с зооспорангия-ми. Зооспорангии лимоновидные или овальные, с бугорком на верхушке, размером (30...90) х (20...60) мкм.

На плодах апельсина и мандарина появляются сухие вдавлен­ные пятна, быстро разрастающиеся и охватывающие весь плод.

Пятна на лимонах соломенно-желтого цвета, с гладкой блестящей поверхностью. При низкой влажности плоды сморщиваются и му­мифицируются, при высокой влажности мякоть под пораженной кожицей загнивает, размягчается, поверхность плода покрывается слабо заметным белым налетом. Загнивание пораженных тканей сопровождается появлением неприятного запаха. В пораженной ткани возбудители образуют ооспоры.

Меланоз. Возбудитель — Phomopsis citri Fawc. (класс Deutero-mycetes, порядок Sphaeropsidales). Поражает корневую шейку, штамб, скелетные ветви, побеги, листья и плоды (две формы про­явления: первая — бурая гниль у плодоножки; вторая — мелкая пятнистость) всех цитрусовых культур, в том числе и при хране­нии.

На корневой шейке, штамбе и скелетных ветвях появляются пятна (как при фитофторозе), кора отмирает с обильным камеде­течением. Пораженные участки светлеют, на них появляются чер­ные точки — пикниды.

На молодых листьях и побегах заметны точечные темно-зеле­ные выпуклые пятна с узкой желтоватой каймой. Они постепенно темнеют, становятся коричневыми, блестящими, кайма пропада­ет. Скопление пятен в местах поражения образует узоры в виде дуг, колец. Ткань вокруг них отмирает, и появляются черные точ­ки — пикниды.

При первой форме на плодах, у их основания, появляется тем­но-бурое пятно, постепенно охватывающее весь плод, что приво­дит к усыханию. Во влажную погоду на поверхности плода возни­кает белый налет мицелия с черными точками — пикнидами. На разрезе плода видно побурение линии соединения сегментов и бе­лой части кожуры. При второй форме на плодах появляются мел­кие (до 1 мм) выпуклые коркообразные твердые красновато-ко­ричневые пятна, скопление которых образует узоры в виде линий, колец, дуг, идущих от плодоножки к верхушке плода. Их поверх­ность покрывается мелкими трещинами. Плоды деформируются и опадают.

Пикниды черные, овальные, толстостенные, погруженные в пораженную ткань, диаметром 200...400 мкм. Пикноспоры бес­цветные, одноклеточные, овально-веретеновидные, с 1...3 капля­ми масла, размером (7...10)х(2...4)мкм либо нитевидные, разме­ром (18...21)х1,5мкм.

Голубая плесень плодов. Возбудитель — Penicillium italicum Wehmer (класс Ascomycetes, порядок Eurotiales). Кожица на пло­дах становится водянистой, мягкой, легко продавливаемой. По­раженные участки покрываются поверхностной прижатой гриб­ницей, образующей узкую белую кайму вокруг голубоватого на­лета, состоящего из пальчато-разветвленных конидиеносцев. Ко­нидии эллипсоидные, размером (3...5) х(2...3) мкм, собраны в цепочки.

Мягкая черная гниль. Возбудт^яъ — Aspergillus niger van Tiegh. (класс Ascomycetes, порядок Eurotiales). На поверхности кожуры вначале появляется мягкое светлое пятно, легко продавливаемое при нажиме, затем белый налет мицелия гриба, на котором позже формируется конидиальное спороношение в виде порошкообраз­ной массы. Конидии шаровидные, гладкие, диаметром 2...5 мкм, расположены цепочками.

Бактериальный ожог, или некроз. Возбудитель — бактерии Pseudomonas cilriputealis (Smith) Stevens — подвижные палочки с одним жгутиком, грамотрицательные, размером (0,7...1,2)х X 1,5 мкм, образующие флуоресцирующий пигмент. Поражает все надземные части апельсина, мандарина и лимона. Симптомы за­болевания ветвей и листьев называют о ж о г о м. У основания ли­стьев появляются коричневые, позднее чернеющие пятна, посте­пенно захватывающие большую часть пластинки. С нижней сто­роны заметна губчатая ткань светло-бурого цвета. Листья отмира­ют, но остаются висеть на дереве. Во влажную погоду на пятнах заметен экссудат. На ветвях образуются водянистые пятна длиной 1...5 мм, которые постепенно увеличиваются, темнеют, становятся красновато-коричневыми, почти черными. Кора отмирает и от­стает от древесины. При высокой влажности воздуха на поражен­ных участках образуется экссудат. При сухой погоде пятна подсы­хают, приобретая красновато-коричневую окраску. К осени участ­ки пораженной коры покрываются трещинами, наплывами, шелу­шатся и отслаиваются, обнажая древесину. Ветви засыхают.

На плодах, особенно при хранении, появляются округлые во­дянистые светло-желтые пятна, постепенно темнеющие. Позже они превращаются в черную ямку на кожице плода, не достигаю­щую мякоти (рис. 125, а).

Псорозис, или шелушение коры. Возбудители — разные штаммы вируса псорозиса [в том числе Citrus psorosis virus А, Rimocortiutn Psorosis (Faw.) и др.] — поражают все цитрусовые культуры. Внача­ле наблюдается мозаичность всех или отдельных молодых листьев (рис. 125, б). В дальнейшем мозаичная окраска исчезает.

На коре заметны небольшие единичные или многочисленные вздутия, постепенно распространяющиеся по всему штамбу и ске­летным ветвям. Под корой ткань покрывается коричневыми пят­нами и отмирает. Через 4...6 лет проявляются следующие симпто­мы: кора шелушится, растрескивается и отстает, иногда выделяет­ся камедь. Древесина разрушается, растение погибает. На плодах видны светлые кольца, окруженные слегка вдавленными желобка­ми. Плоды часто покрываются неравномерными выпуклостями, становятся шершавыми и грубыми.

Тристеца. Возбудитель — вирус тристецы [ Citrus tristeza virus (Closterovirus)] — объект внешнего карантина. Особенно распрост­ранен на апельсине, грейпфруте и лайме. Заболевание проявляет­ся в большинстве случаев на листьях, плодах, корнях. На листьях

Рис. 125. Бактериальный некроз (о) и псорозис (б) цитрусовых:

1, 2v. 3— пораженные лист, ветвь и плод

заметно посветление жилок, листья желтеют, позже становятся бронзовыми, постепенно приобретают тускло-пепельную окраску. Затем они привядают, закручиваются по средней жилке, опадают. Вирус может вызывать отмирание верхушек побегов и ямчатость древесины под корой. Ветви оголяются почти полностью. Моло­дые листья, появившиеся из пазушных почек, имеют светло-зеле­ную окраску и желтую среднюю жилку. Плоды преждевременно желтеют и опадают. Корни, начиная с кончиков, загнивают. Ветви постепенно отмирают, деревья имеют угнетенный вид.

Экзокортис цитрусовых. Возбудитель — вироид экзокортиса цитрусовых {Citrus exocortis viroid). Поражаются все цитрусовые, особенно привитые на дикий трехлистный лимон. На коре внача­ле появляются вертикальные трещины, затем на значительных участках кора ствола и толстых ветвей отслаивается, растрескива­ется и отваливается. Одновременно наблюдаются угнетение роста и раннее одревеснение побегов, опадение завязей, мелкоплод-ность, потемнение паренхимных тканей ствола, гипертрофия, ги­перплазия клеток листьев и их отмирание.

Импетратура, или затвердение плодов. Возбудитель — предполо­жительно фитоплазма. Плоды становятся жесткими, деформиро­ванными. Во внутреннем слое коры плодов заметны бурые пятна, из которых выделяется клейкая бурая жидкость. Позже такие пятна появляются и на поверхности плодов, которые растрескивают­ся и опадают. Возможно появление некрозов в черешках листьев и побегах.

ПОРЯДОК ВЫПОЛНЕНИЯ РАБОТЫ

Задание 1. Описать и зарисовать симптомы грибных, бак­териальных и вирусных заболеваний цитрусовых.

Задание 2.Заполнить таблицу «Основные болезни цитру­совых» по форме 4 (с. 45).

Задание 3. Приготовить препараты и рассмотреть их под микроскопом.

Задание 4. Зарисовать строение спороношения грибов.

Материалы и оборудование. Гербарные и фиксированные образцы поражен­ных растений, микроскопы, предметные и покровные стекла, препаровальные иглы, чашки Петри, фильтры, лупы.

Лабораторная работа 39

ФИТОПАТОЛОГИЧЕСКАЯ ЭКСПЕРТИЗА СЕМЯН

ВВОДНЫЕ ПОЯСНЕНИЯ

Фитопатологическая экспертиза семян является важнейшим этапом их подготовки к посеву и предназначена для выявления зараженности семян фитопатогенами, предотвращения распрост­ранения вредоносных заболеваний. С семенами могут передавать­ся многие возбудители болезней зерновых культур, зерновых и кормовых бобовых, льна, свеклы, подсолнечника и других куль­тур. Зараженные семена имеют пониженные энергию прораста­ния и всхожесть, являются причиной развития ослабленных, низ­копродуктивных растений. Часто растения из зараженных семян не развиваются вовсе. Кроме того, больные семена нередко быва­ют источниками первичной инфекции, от которых заражаются со­седние здоровые растения.

МЕТОДЫ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ЗАРАЖЕННОСТИ СЕМЯН ГРИБАМИ И БАКТЕРИЯМИ

Существуют различные методы фитопатологической эксперти­зы. Наиболее распространены следующие методы.

МЕТОД НАРУЖНОГО ОСМОТРА (ВИЗУАЛЬНЫЙ)

Этим методом определяют внешние изменения посевного ма­териала (наличие семян щуплых, тусклых, с розовым оттенком, с почерневшим зародышем, покрытых плесенями) или устанавли­вают наличие примесей (склероциев спорыньи, белой гнили, го­ловневых мешочков и комочков).

С помощью лупы можно обнаружить скопление спор в борозд­ках семян, хохолках, пикниды возбудителей аскохитоза, септори-оза, фомоза.

Семена низкого качества могут выявляться не только по внеш­нему виду, но и по запаху (затхлый при плесневении и т. п.).

МЕТОД ОБМЫВКИ СЕМЯН И ЦЕНТРИФУГИРОВАНИЯ

Применяют для выявления спор головни на поверхности семян зерновых культур и лука; пасмо на семенах льна; рамуляриоза на семенах кориандра; ржавчины на клубочках свеклы и семенах аниса; гельминтоспориоза, фузариоза, головни на семенах риса.

Отбор проб. Из семян культуры отсчитывают две пробы по 100 семян в каждой.

Проведение анализа. Каждую пробу помещают в пробирку, за­ливают водой (10 см^) и взбалтывают. Семена с гладкой поверхно­стью (пшеница, рожь) взбалтывают в течение 5 мин, с шерохова­той поверхностью (свекла и др.) — 10 мин, семена льна — 1 мин.

Для выделения спор применяют центрифугирование. Для этого суспензии сливают в центрифужные пробирки и центрифугируют в течение 10...15 мин при частоте вращения 2000...2500 мин~'. После центрифугирования из пробирок осторожно отбирают 9 см^ надосадочной жидкости. Оставшийся осадок взмучивают пипет­кой и из осадка каждой пробирки готовят 5 препаратов. Для опре­деления вида гриба препараты просматривают под микроскопом.

Количественный учет спор проводят в камере Горяева.

Зараженность спорами одного семени (Л'число спор) вычисля­ют по формулам:

при подсчете в камере Горяева без предварительного центри­фугирования

ION,

100

Х,=-

при подсчете в камере Горяева с предварительным центрифу­гированием

^'"Тоо-

где 10 —объем воды, взятой для смыва, см'; iVc —число спор в 1^ суспензии; 100 — число семян, взятых для анализа.

Число спор в 1 см^ суспензии (УУс) рассчитывают, умножая об­наруженное число спор на 250 тыс., если подсчет спор ведут в больших квадратах камеры Горяева, и на 400 тыс., если споры подсчитывают в малых квадратах камеры. Если подсчет проводят по всей площади камеры, то обнаруженное число умножают на 1111.

Искомое число определяют как среднее арифметическое ре­зультатов двух проб.

МЕТОД ОТПЕЧАТКОВ

Метод применяют вместо центрифугирования для определения степени заражения семян зерновых культур спорами головневых грибов.

Отбор проб. Отсчитывают 10 семян культуры.

Проведение анализа. Каждое семя обертывают прозрачной клейкой лентой площадью 1 см^, плотно прижимая ее по всей по­верхности семени. После этого с помощью пинцета ленту отклеи­вают и помещают на предметное стекло под микроскопом для идентификации патогена и подсчета спор. Подсчет проводят в 10 полях микроскопа и устанавливают среднее арифметическое чис­ло спор в одном поле зрения микроскопа при 42-кратном увели­чении.

Для пшеницы и ячменя с помощью окуляр-микрометра под микроскопом при 42-кратном увеличении измеряют длину и ши­рину семени с точностью до 0,1 мм, затем определяют площадь поверхности семени.

Площади поверхности семян других зерновых культур измеря­ют наложением их отпечатков на миллиметровую бумагу или по­средством окулярной сетки микроскопа.

Обработка результатов. Число спор, приходящееся на площадь отпечатка семени (^з), вычисляют по формуле

где Л' —среднее арифметическое число спор в поле зрения микроскопа; 5| — пло­щадь поверхности семени, мм-; 5—площадь поля зрения микроскопа, мм^.

Пример. Площадь поверхности семян пшеницы при длине 6 мм и ширине 3,5 мм равна 57,7 мм^. Если в одном поле зрения микро­скопа МБС-9 при 42-кратном увеличении насчитывается в сред­нем 10 спор, то число их на одном семени составляет ^3 = (10-57,7): 3,2 = 180.

Примечание. По паспортным данным площадь поля зрения микроскопа МБС-9 при 42-кратном увеличении равна 3,2 мм^.

Среднее арифмеШческое число спор, приходящееся на одно семя (У), вычисляют по формуле

10

где ZXy — сумма чисел спор, обнаруженных на всех исследованных семенах; 10 -число исследованных семян.

БИОЛОГИЧЕСКИЙ МЕТОД

Применяют для выявления внешней и внутренней инфекции семян. Он основан на стимуляции развития микроорганизмов, дает возможность установить вид возбудителя и степень пораже­ния. Формы биологического метода могут быть различными.

МЕТОД ВЛАЖНЫХ КАМЕР

Отбор проб. Из семян культуры отбирают 4 рабочие пробы по 50 или 100 семян в зависимости от вида анализируемых культур.

Подготовка к анализу. В качестве влажной камеры используют чашки Петри, Коха или стеклянные стаканы, накрытые стеклом. На дно чашек (стаканов) помещают марлю в 3 слоя, фильтроваль­ную бумагу в 2 слоя или фильтровальную бумагу, положенную на гигроскопическую вату (толщина слоя не более 0,25 см).

Перед раскладкой семян чашки стерилизуют и заворачивают в бумагу. Марлю, комбинированный субстрат или фильтровальную бумагу увлажняют кипяченой или стерилизованной водой ком­натной температуры. Семена раскладывают в боксе стерильным пинцетом на расстоянии 1...2 см одно от другого в зависимости от их размеров.

Закрытые чашки Петри, Коха или стаканы с заложенными в них семенами помещают в термостат для проращивания.

Термостаты предварительно тщательно моют горячей водой с моющими средствами и дезинфицируют 1%-ным раствором пер-манганата калия через каждые 10 дней. Перед каждым фитоанали-зом их дезинфицируют спиртом или бактерицидными лампами в течение 30 мин. Раз в месяц термостаты дезинфицируют с помо­щью бактерицидных ламп в течение 8 ч.

Проведение анализа. Просмотр семян пшеницы, ржи, ячменя, кукурузы, льна, сои, эфиромасличных культур, подсолнечника, гороха проводят в сроки, установленные для определения всхоже-

сти по гост 12044—93. Виды болезней семян, выявляемые при проращивании во влажной камере:

Культура Пшеница, ячмень

Рожь Овес Кукуруза Соя

Болезни

Фузариоз, гельминтоспориозы, альтернариоз, септо-

риоз, плесени

Фузариоз, гельминтоспориоз, септориоз

Фузариоз, красно-бурая пятнистость

Фузариоз, диплодиоз, серая гниль

Фузариоз, бактериоз, белая гниль, аскохитоз, цер-

коспориоз, пероноспориоз

Для стимуляции образования конидиеносцев и конидий с целью идентификации возбудителей болезней необходимо 12-часовое чередование света при освещенности 750... 1250 лк и темноты.

АНАЛИЗ СЕМЯН НА ПИТАТЕЛЬНЫХ СРЕДАХ

Отбор проб. Из навески семян отбирают четыре пробы по 50 семян в каждой и помещают их в стерильную посуду с питатель­ной средой.

Подготовка к анализу. Приготовление картофельного агара (приложение 2): 200 г вымытого, очищенного, порезанного лом­тиками картофеля заливают 1000 см^ воды и кипятят в течение 40 мин. После этого раствор фильтруют, к фильтрату добавляют 20 г агара и подогревают до полного растворения агара. После это­го раствор фильтруют через несколько слоев марли с ватной про­кладкой и стерилизуют под давлением 0,09807 МПа (I атм) в тече­ние 30 мин. После стерилизации в питательную среду добавляют стерильный 50%-ный раствор лимонной кислоты из расчета 0,1...0,05см^ (одна капля) на 10 см^ или концентрированную мо­лочную кислоту (4 см^ кислоты на 1000 см^ среды). Жидкость раз­ливают по чашкам.

Проведение анализа. Семена промывают струей воды под во­допроводным краном в течение 1...2ч и дезинфицируют 1%-ным раствором перманганата калия, или 0,1%-ным раствором нитрата серебра, или 96%-ным спиртом в течение 1...2мин. После этого семена промывают в стерильной или прокипячен­ной воде и подсушивают между листами стерильной фильтро­вальной бумаги.

В стерильные чашки Петри диаметром 9,5... 10 см наливают 10 см^ простерилизованного агара. Толщина слоя среды должна быть 3...4ММ, разливку питательных сред в чашки и закладку семян проводят в бактериологической камере (стерильном бок­се). Раскладку семян проводят на застывшую питательную сре­ду с помощью пинцета, периодически стерилизуя его на спир­товке.

АНАЛИЗ СЕМЯН В РУЛОНАХ ФИЛЬТРОВАЛЬНОЙ БУМАГИ

Используют 2 слоя увлажненной до полной влагоемкости фильтровальной бумаги. Размер полосок фильтровальной бумаги для пробы по 100 семян должен быть 10 х 110 см, для пробы по 50 семян — 10 x55 см.

Проведение анализа. Семена раскладывают в одну линию с про­межутком 1...2CM на расстоянии 2...3 см от верхнего и боковых краев бумаги зародышами вниз.

Разложенные семена накрывают такой же полоской увлажнен­ной фильтровальной бумаги, на которую, в свою очередь, накла­дывают полоску полиэтиленовой пленки, и сворачивают в рулон. Рулоны ставят в сосуды в вертикальном положении и помещают в термостат при температуре 22...25 "С.

При проращивании семян рулоны следует постоянно увлаж­нять.

Обработка данных. По каждой из четырех проб подсчитывают число семян, зараженных каждой болезнью, и общее число зара­женных семян.

Зараженность семян (в процентах) вычисляют по формуле

100N,

где N, — суммарное число зараженных семян в четырех пробах; я — общее число семян, взятых для анализа.

ПОСЕВ СЕМЯН ВО ВЛАЖНЫЙ КВАРЦЕВЫЙ ПЕСОК

Применяют для обнаружения грибных и бактериальных болез­ней, проявляющихся различными типами поражения: пятна, язвы на стебельках, семядольных и настоящих листьях.

ГРУНТОВОЙ КОНТРОЛЬ

применяют для выявления зараженности семян в полевых ус­ловиях такими болезнями, как пыльная головня пшеницы и яч­меня.

АНАТОМИЧЕСКИЙ МЕТОД

Используют для изучения места нахождения и распростране­ния возбудителя болезни в тканях растения. Срезы, изготовлен­ные с помощью микротомов, лезвий безопасной бритвы, окраши­вают красителями (метиленовый синий, метиленовый синий Леф-флера, фуксины). Окраской по Граму обнаруживают бактерии.

СЕРОЛОГИЧЕСКИЙ МЕТОД

Используется для обнаружения вирусных болезней в картофе­леводстве и для оздоровления семян. Основан на реакции между белками возбудителя (антигенами) и антителами специфичной к ним сыворотки, полученной от иммунизации животных данным возбудителем.

ЛЮМИНЕСЦЕНТНЫЙ МЕТОД

Применяют для контроля зараженности семян с помощью уль­трафиолетового облучения люминесцентными лампами. Метод основан на свойствах некоторых органических веществ светиться под влиянием УФ-облучения. Так, семена гороха, пораженные ас-кохитозом и фузариозом, флюоресцируют тускло-коричнево-красными пятнами, а незараженные семена — голубовато-зеле­ным цветом.

МЕТОДЫ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ЗАРАЖЕННОСТИ СЕМЯН ВИРУСАМИ

Более 100 вирусов, поражающих различные культуры, передают­ся с семенами. Различают два вида зараженности семян: поверхнос­тный и внутренний. В передаче вирусов семенами участвуют оба вида зараженности. Внутренняя инфекция присутствует в семенах часто в очень низкой концентрации. Для ее обнаружения требу­ются высокочувствительные методы диагностики. Зараженность семян вирусами диагностируют теми же методами, которые ис­пользуют при определении вирусов в вегетирующих растениях: капельная серодиагностика, инокуляция индикаторных растений, иммуноферментный анализ, электронная микроскопия, ПЦР.

Для анализа семян используют их гомогенат в воде или буфер­ном растворе, получаемый в гомогенизаторе или в фарфоровой ступке. Гомогенат фильтруют или центрифугируют, затем исполь­зуют для серологической диагностики.

Для индикаторной диагностики в гомогенат добавляют стаби­лизаторы вирусов, например диэтилдитиокарбамат натрия (ДИЭ-КА). Стабилизаторы вирусов предотвращают инактивацию виру­сов ингибиторами, содержащимися в семенах.

ПОРЯДОК ВЫПОЛНЕНИЯ РАБОТЫ

Задание 1. По образцам семян пшеницы, ржи, кукурузы, гороха, фасоли, льна, капусты, подсолнечника (по одному образцу на каждый стол, за которым работают студенты) провести их фи-тосанитарную оценку методом наружного осмотра. Дать заключе­ние о качестве семян.

Задание 2. Методом центрифугирования определить со­став возбудителей болезней на семенах пшеницы. При обнаруже-

„и„ спор головневых грибов определить степень засоренности

^'^«?Га н и е 3. провести Г---Тя1™оГе"„1прТва-

использованием метода b^^^""^,^ „ л 5%-ном растворе перманга- рительно продезинфицированные в и, фильтроваль-

ната калия, посеять на У«J^^j^^.""^в^^^

ную бумагу в чашки "етри и Устаж^^^^^^ ^^ ^.р^б^У^^ и

рой 18...20 °С. Через неделю провести лн

бактериальную инфекцию. ,яболеваний и процент пораже-

ния°иТи':еГн.а'?Гп;Гу»Грису„ка«и .26..ЛМ (споро-

ношение возбудителей).

Рис. 126. Телиоспоры головневых грибов:

.* т ;.

І-ТПШІа caries; 2- T.foeUda;3-T.contros.r^o4 Т>^^^^^^^^^^ harder, 9 - U. nuda 'O-Jjoe / ^ .^..^,,.,„,.

Рис. 127. Спороношение грибов рода Drechslera:

I — D. soroklniana; 2— D.graminea; 3— D. teres

Phc. 128. Споры грибов рода Fusar'ium:

1 — Ғ. graminearum; 2— Ғ. avenaceum; 3 — Ғ. culmomm; 4— Ғ. moniliforme

Рис. 129. Спороношение сапрофитных грибов:

/ — Alternaria tenuis; 2 — Cladosporium herbarum; 3 — Mucor sp.; 4— RhizfipUf nigricans; 5 — Trichothecium roseum; 6 — Macrosporium sp.

<й. ^ ^^

Рис. 130. Возбудители болезней на семенах бобовых культур:

/ — Ascochila рш (пикниды и споры); 2 — Colleiotrichum lindemulhianum (доже гриба

с конидиеносцами, конидиями и щетинками); 3 — Aureobasidium pullulans (ложе со

спороношением гриба); 4— Botriiis cinerea (коиидиеносиы и конидии); 5— Fusarium

solani (макро- и микроконидии)

^^(^^^"^5

Рис. 131. Возбудители болезней на семенах льна:

/ — Colletoirichum lini (срез ложа с щетинками и конидиями); 2— Fusarium oxysporum f. lini (макроконидии); J — Aureobasidium pullulans var. lini (кони-диеносцы и конидии); 4 — Ascochila linicola (мицелий в оболочке семян); 5 — Septoria linorum (пикнида со спорами)

Рис. 132. Возбудители болезней на соплодиях к семенах свеклы:

а — Рһота betae (пикннда со спорами); б— Uromyces belae (/ —урединиоспо-ры; 2 —телиоспоры); в — Cercospora betkola (конидиеносцы с конидиями); г — Peronospora schachlii (конидиеносец и конидии); д— Erysiphe communis (i— конидиеносцы с конидиями; 4— клейстотеций; 5— сумки с сумкоспорами)

Рис. 133. Возбудители болезни на семенах овощных культур:

/ — Collelotrichum lagenarium на семенах растений семейства Тык­венные (видны шерстинки, конидиеносцы и конидии); 2 — Altemaria brassicae (конидии гриба); 3 — А. oleraceae (конидии); 4 — А. radicina (конидии)

Рис. 134. Возбудители болезней на семенах подсолнечника:

а—УеШсИНит dahliae (конидненосец и конидии); 6~ iVerielinia

sclemiiorum (1,2 — прорастаюшие склероции; 3 — сумки с сумкоспорами);

в — Botrids cinerea (4— конидиеносец; 5— конидии)

Задание 4. Определить зараженность семян вирусом штриховатой мозаики ячменя (ВШМЯ). Для этого по 100 семян каждого образца разложить в чашки Петри на влажную фильтро­вальную бумагу и оставить при температуре 20...22°С до начала прорастания. Проросшие зародыши выделить препаровальной иглой и растереть в ступке с 5 мл дистиллированной воды. Полу­ченный гомогенат с помощью глазной пипетки профильтровать через комочек ваты, затем 2 капли полуосветленного экстракта на небольшом расстоянии одну от другой нанести на предметное стекло. К одной из капель добавить диагностическую сыворотку к ВШМЯ, к другой — контрольную сыворотку. Смешать и оста­вить на 15 мин для прохождения реакций. Затем, освещая капли снизу с помощью зеркала, определить результат. При наличии вируса в смеси экстракта с диагностической сывороткой образу­ется хлопьевидная взвесь. Ход работы и результаты анализа запи­сать в тетрадь.

Задание 5. Определить зараженность семян томата виру­сом табачной мозаики (ВТМ). Для этого по 50 семян каждого об­разца растереть в ступке с 2 мл 0,1%-ного раствора ДИЭКА. Гомо­генат профильтровать через вату. На предметное стекло нанести

2 капли фильтрата. Далее провести те же операции, что и в зада­нии 1.

При отрицательной реакции серологической диагностики ос­тавшимся в ступке гомогенатом натереть листья Nicotiana glutinosa L. или N. tabacum L. сорта Xanthi, по 2 листа на каждый образец, разложить нижней стороной вверх на влажную фильтровальную бумагу в чашки Петри и выдержать при температуре 20...22 °С в течение 4...5 дней. На листьях, инокулированных гомогенатом за­раженных проб, появляются округлые сероватые или серовато-бу­рые некротические пятна. Ход работы и результаты анализа запи­сать в тетрадь.

Материалы и оборудование. Семена зерновых культур, зерновых бобовых, лука, льна, свеоы, кукурузы, лупы, центрифуга, камеры Горяева, прозрачная клейкая лента, чашки Коха, марля, стерильная вода, питательный субстрат (среда Чапека или картофельно-глюкозный агар), полиэтиленовая пленка, люминес­центные лампы, термостат, сосуды, кварцевый песок, растильни, красители, се­мена ячменя (здоровые и зараженные ВШМЯ), семена томата (здоровые и зара­женные ВТМ), фарфоровая ступка, чашки Петри, пипетки, фильтровальная бума­га, препаровальные иглы, вата, диагностические сыворотки к ВШМЯ и ВТМ, контрольные сыворотки, предметные стекла, зеркальца, живые листья дикого клейкого табака (N. glutinosa L.) или гибридного табака (Л^. tabacum L.) сорта Xanthi.

ПРИЛОЖЕНИЯ

Приложение 1

КЛЮЧ для ОПРЕДЕЛЕНИЯ ГРИБНЫХ И БАКТЕРИАЛЬНЫХ БОЛЕЗНЕЙ СЕМЯН ПШЕНИЦЫ, РЖИ, ОВСА, ЯЧМЕНЯ,

ПРОСА

1(4). Зерновки по внешнему виду здоровые, но на хохолке, в бороздке, в зоне зародыша чуть заметное потемнение. Методом центрифугирования смывов с се­мян в поле зрения обнаруживаются телиоспоры головни. При анализе образца зерна встречаются головневые мешочки, частично пораженные зерна и их части с телиоспорами,

а) телиоспоры темно-бурые или коричневые, шаровидные, с сетчатой оболоч­ кой, диаметром 14...25,1 мкм

Твердая головня пшеницы —

возбудитель Tilletia caries (DC) Tul.

б) телиоспоры светло-бурые, неправильно-округлые или овальные, гладкие, диаметром 12,6...22,5 мкм

Твердая головня пшеницы —

возбудитель Tilletia lev is Kuehn.

в) телиоспоры шаровидные, с четко выраженной сетчатостью, темно-коричне­ вые, крупные диаметром 20,5...26,3 мкм

Карликовая головня —

возбудитель Tilletia controversa Kuehn.

г) телиоспоры темно-коричневые, шаровидные, с сетчатой оболочкой, диа­ метром 18,6...26,3 мкм

Твердая (мокрая) головня ржи —

возбудитель Tilletia secalis Kuehn.

д) телиоспоры в клубочках, состоящих из 1...3 темно- и светлооХрашенных периферических клеток

Стеблевая головня ржи —

возбудитель Urocystis occulta Rab. 2(3). На цветковых чешуях (пленках) зерновок, чаще всего у противоположно­го зародышу конца, слабозаметное потемнение. При центрифугировании смыва в поле зрения микроскопа могут обнаруживаться телиоспоры головни. В образце зерна встречаются головневые комочки или их части, состоящие из массы телио-спор.

а) телиоспоры оливковые или светло-коричневые, шаровидные, с гладкой оболочкой, диаметром 5,5...7,5 мкм

Каменная головня ячменя —

возбудитель Ustilago hordei Lagerh.

б) телиоспоры желто-коричневые (в массе черные), шаровидные или углова­ тые, шиповатые, диаметром 6,7...7 мкм

Черная пыльная головня —

возбудитель Ustilago nigra Тарке.

в) телиоспоры темно- или светло-коричневые, гладкие, шаровидные, реже —

эллипсоидные, диаметром 3,6...8,3 мкм

Твердая (покрытая) головня овса —

возбудитель Ustilago levis (Kell. et Sw.) Magn. r) телиоспоры светло-коричневые, шаровидные, мелкошетинистые, диамет­ ром 4...8MKM

Пыльная головня овса —

возбудитель Ustilago avenae (Pers.) Jens.

д) телиоспоры темно-коричневые, округлые или немного угловатые, гладкие или слабощетинистые, с двойной контурной оболочкой, диаметром 9...14мкм ....

Головня проса —

возбудитель Sphacetotheca panici-miliacei (Pers.) Bubak.

е) телиоспоры темно-коричневые, округлые, крупные, размером (20...31)х X (26...35) мкм, с шипиками

Твердая головня риса —

возбудитель ТіІІеііа horrida Так.

3(2). На семенах спороношение гриба темно-серого, черного, зеленого, желто­го и других цветов или подушечки со спороношением гриба.

4(1). На семенах темно-серый или черный налет либо темно-оливковые поду­шечки.

5(10). Налет черный, темно-серый или темно-оливковый, бархатистый, на проростках бурые пятна Гельминтоспориоз

а) конидии крупные, темно-оливковые, веретеновидные или эллипсоидные, немного изогнутые, с 3...10 поперечными перегородками, размером (60...120)х(15.,.20)мкм

Черный зародыш —

возбудитель Drechslera sorokiniana Subram.

б) конидии светло-оливковые, крупные, цилиндрические, с 3...6 поперечными перегородками, размером (80...100) х (16...18) мкм

Полосатая пятнистость ячменя —

возбудитель Drechslera graminea Ito.

в) конидии светло-оливковые или зеленовато-бурые, цилиндрические, с 1...10 перегородками и с тремя заметными перетяжками, размером (30...175) х (15... 20) мкм

Сетчатая пятнистость ячменя —

возбудитель Drechslera teres Ito.

6(7). Налет на семенах оливковый, бархатистый, иногда темно-серый, рыхлый. Споры обратнобулавовидные, в цепочках, оливковые или темно-бурые, с одной или с 3...5 поперечными и с 1...3 продольными перегородками, размером

(ЗО...50)х(14...18)мкм

Альтернариоз —

возбудитель Allernaria tenuis Nees.

7(8). Налет на семенах оливково-черный, бархатистый, плотный, споры мел­кие, удлиненные, цилиндрические или яйцевидные, оливковые или бурые, снача­ла без перегородок, затем 2...5-клеточные, щетинистые, размером (12...28)х

X (6...7) мкм

Оливковая плесень —

возбудитель Cladosporium herbarum Lk.

8(9). На семенах темно-бурые или черные подушечки.

а) споры одноклеточные, шаровидные, темно-бурые, с бородавчатой поверх­ ностью, диаметром 10...20 мкм, с короткой ножкой

Точечность (поражает пшеницу) —

возбудитель Epicoccum trilici P. Nenn.

б) споры одноклеточные, шаровидные или эллипсоидные, сероватые или тем­ но-коричневые, с крупносетчатой грубобородавчатой оболочкой, на короткой бесцветной ножке, размером 11,4. .19 мкм

Точечность (поражает ячмень, кукурузу и др.) —

возбудитель Epicoccum neglectum Desm. 9(6). На семенах желтый, зеленоватый или желто-зеленый налет — спороно­шение гриба.

10(11). Налет зеленый или зеленовато-сизый, плесневидный, конидиеносцы с кистевидноразветвленными верхушечными веточками, несущими цепочки спор. Споры одноклеточные, мелкие, округлые, бесцветные или чуть зеленоватые, диа­ метром 2...4 мкм

Зеленая плесень (пенициллез) —

возбудитель РепісіШит glaucum Lk и др. 11(12). Налет на семенах рыхлый, тонкий, светло-желтый или желто-зеленый.

Спороношение в виде головок, споры одноклеточные, шаровидные или яйцевид­ ные, светлоокрашенные, в цепочках, диаметром 6...8мкм

Желтая плесень —

возбудитель Aspergillus sp.

12(13). На семенах светло-зеленые подушечки. Споры в цепочках, собранные

в головки, шаровидные, щетинистые, светло-зеленые, диаметром 7...15мкм

Зеленая плесень —

возбудитель Penlcilliiim glaucum Lk

13(14). На семенах белый, светло-серый, розовый или красноватый налет либо подушечки.

14(5). Налет розовый, нежный, пушистый или белый, беловато-розовый с

красновато-карминным оттенком

Фузариоз на семенах злаковых.

а) споры (макроконидии) веретеновидные или серповидные, чаще всего с 3...5 перегородками, бесцветные, размером (25...66) х(3...6) и (41...80) х(4...6) мкм. Хламидоспор нет

Возбудитель Fiisariiim gramineanim Schw.

б) споры (макроконидии) шиловидные или нитевидные, эллиптически изог­ нутые, к основанию и вершине суженные, с 5...7 перегородками, размер их с тре­ мя перегородками (30...60) х(3...4) мкм, с пятью (32...90) х (3...4,5) мкм

Возбудитель Fusarium avenaceum Sacc.

в) споры (макроконидии) веретеновидно-серповидные, к концам суженные, с перешнурованной верхней клеткой, число перегородок колеблется от 3 до 8 (чаще 5), размер макроконидий (19...74)х (2,8...4) мкм

Возбудитель Fusarium culmorum Sacc.

15(16). Налет розовый или розовато-оранжевый. Конидии грушевидные, бес­цветные, двухклеточные, с верхней более крупной клеткой, размером

(12...18)х(8...10)мкм

Розовая плесень —

возбудитель Trichothecium roseum Lk.

16(15). Налет белый или светло-оливковый, кустистый. На корешках и коле-

оптиле светло-бурые пятна. Конидии светло-оливковые, цилиндрические, с 3...5

поперечными перегородками, гладкие, размером (1(Ю.,.115)х20 мкм

Красно-бурая пятнистость, гельминтоспориоз (поражает овес)—

возбудитель Drechslera avenae Ito. 17(18). На семенах налет белый или серый, паутинистый, с черными точечны­ ми спорангиями. Спорангии шарообразные, споры в них одноклеточные, оваль­ ные или округлые

Серая плесень —

возбудитель Rhiiopus nigricans Ehr. 18(19). Поражение иное.

19(20). Зерновки у основания темнеют, сморщиваются, иногда растрескивают­ся, часто покрываются мелкими желтоватыми капельками (скопление бактерий)

Черный бактериоз (поражает пшеницу, рожь)—

возбудитель Xanthomonas translucens Dowson. 20(17). Зерновки у основания (в зоне зародыша) чернеют, вьщеляются капель­ ки экссудата

Базальный бактериоз (поражает пшеницу, ячмень) —

возбудитель Pseudomonas atrofaciens Stapp.

Приложение 2

ПРИГОТОВЛЕНИЕ ПИТАТЕЛЬНЫХ СРЕД

Для работы с возбудителями болезней (грибами, бактериями) используют спе­циальную лабораторную посуду и стерильные питательные среды. Посулу тща­тельно моют, ополаскивают дистиллированной водой, высушивают и стерилизуют сухим жаром в сушильных шкафах при температуре 150 °С в течение 2 ч.

Питательные среды необходимы для выделения фитопатогенных грибов и бактерий из пораженных частей растений, их культивирования, изучения культу-рально-биохимических свойств и сохранения. Многие компоненты, входящие в состав питательных сред для грибов (агар-агар, желатин, различные соли и т.д.), используют и для бактерий. Однако состав и способы приготовления питательных сред для бактерий имеют свою специфику. Основная отличительная особен­ность—рН среды: для грибов —близкая к нейтральной (рН 7,0) или слабокислая (рН 6,0...6,5), для бактерий — нейтральная или слабощелочная (рН 7,0...7,5).

Состав основных питательных сред для фитопатогенных грибов:

среда Чапека (г на 1л воды): нитрат натрия NaNOs — 2,0, безводный двузамещенный фосфат калия К2НРО4—1,0, сульфат магния MgS04-7H20 — 0,5, хлорид калия КС!-0,5, сульфат железа FeS04 ■ 7Н2О — 0,01, сахароза — 30,0, агар-агар — 17...20;

картофельн о-г люкозный агар (г/л): ломтики очищенного кар­тофеля — 200,0, глюкоза — 100,0, агар-агар — 20,0; картофель кипятят в течение 20 мин, отвар процеживают через марлю, объем доводят водой до 1л, добавляют глюкозу и агар-агар;

сусло-агар: неохмеленное пивное сусло —0,2л, агар-агар—17,0...20,0г, вода —0,8 л;

овсяный агар (г/л): овсяная мука (хлопья) — 100,0, агар-агар —20,0; ов­сяную муку (хлопья) медленно нагревают на водяной бане в течение 1 ч, затем от­вар процеживают и добавляют агар-агар.

Состав основных питательных сред для фитопатогенных бактерий:

картофельный агар (г/л): ломтики очищенного картофеля — 200... 250, агар-агар - 20,0. рН 7,2;

к а р то ф е л ь н о-д е к с т р о 3 н ы й агар (г/л): ломтики очищенного картофеля — 250,0, декстроза - 20,0, агар-агар — 20,0. рН 7,2;

среда Кинг Б (г/л): пептон — 10,0, глицерин — 10,0, сульфат магния MgS04—1,5, безводный двузамещенный фосфат калия КіНР04—1,5, агар-агар - 18,0...20,0.

После приготовления питательные среды разливают в пробирки, колбы и сте­рилизуют в автоклаве при давлении 1,2 кг/см^ в течение 50...60 мин. В чашки Пет­ри, простерилизованные сухим жаром при температуре 150 "С в течение 2 ч, среду разливают в стерильном боксе.

Многие растения обладают низким коэффициентом размножения в обычных условиях. При выращивании здорового исходного материала иногда возникает необходимость в увеличении коэффициента размножения в сотни и тысячи раз. Решить эту задачу помогают методы ускоренного размножения (черенкование в пробирочной культуре, культивирование апикальной меристемы и др.). Многие растения хорошо растут на питательной среде Мурасиге-Скуга в различных модификациях. Наибольшее распространение получила среда следующего состава;

макросоли (г/л): ЫН4Н0з-1,65, КНОз-1,90, CaCU-2Н2О-0,44, MgSO4-7H,O-0,37, КН,РО4-0,17;

микросоли (мг/іі): NajEDTA-37,8, FeS04 ■ 7Н,0 - 27,8, HjBOj - 6,2, MnS04-4H,0-22,3, ZnS04 4H20-8,6, CUSO4 • SH2O - 0,25, KJ-0,75, Na2Mo04 • 2'H20 - 0,25, CoCb ■ 6H2O - 0,025;

витамины (мг/л): тиамин — 0,2, пиридоксин — 0,1, аскорбиновая кисло­та — 0,2;

остальные компоненты: гидролизат казеина — 10г/л, кинетин — 0,04 мг/л, ИУК — 1,0 мг/л, а-НУК — 0,5 мг/л, феруловая кислота — 0,02 мг/л, аде-нин —0,2мг/л, сахароза — 20 г/л, агар-агар —6...7 г/л, активированный уголь — 2...3 г/л.

Питательную среду стерилизуют при 1,2 атм (121 590 Па) в течение 1 ч.

ЛИТЕРАТУРА

Дементьева М. И., Выгонский М. И. Болезни плодов, овощей и картофеля при хранении. — М.: Агропромиздат, 1988.

Защита растений от болезней/В. А. Шкаликов. О. О. Белошапкина, Д. Д. Букреев и др.; под ред. В. А. Шкаликова. — М.: Колос, 2001.

Каравянский Н.С.Защита кормовых культур от вредителей и болез-не«.-М., 1971.

Князева Т. П., Стройков Ю. М. Болезни лекарственных и эфиромас-личных культур. — М.: Изд-во МСХА, 1991.

Микроорганизмы — возбудители болезней растений: Справочник/ В.И.Билай., Р.И.Гвоздяк, И. Г. Скрипаль и др.; Под ред. В. И. Билай. - Киев: Наукова думка, 1988.

Попкова К. В. Общая фитопатология. — М.: Агропромиздат, 1989.

Практикум по сельскохозяйственной фитопатологии/Под ред. К. В Поп­ковой. — М.: Агропромиздат, 1988.

Стройков Ю-М., Шкаликов В.А. Защита сельскохозяйственных культур от болезней. — М.: Изд-во МСХА, 1998,

У 3 у н о в И. С. Тропическая фитопатология. — М.: Изд-во Ун-та дружбы на-ролов, 1988.

Хохряков М.К., ПотлайчукВ.М., СеменовА.Я., ЭлбакянМ.А, Определитель болезней сельскохозяйственных культур. —Л.: Колос, 1984.

Яковлева И. П. Фитопатология. Программированное обучение. — М.; Колос, 1983.

УКАЗАТЕЛЬ МЕЖДУНАРОДНЫХ НАЗВАНИЙ ВОЗБУДИТЕЛЕЙ БОЛЕЗНЕЙ РАСТЕНИЙ

ГРИБЫ

Alternaria Nees. 38

—allernata Ness et Fr. 24, 39

—brassicae Sacc. 96, 192

—ігаи/'с/со/а Wilts. 100

—dauci Grov. et Sk. 122

—oleraseae 192

-radicina N.. D. et E. 192

-solani (Ell. et Mart.) Sor. 80, 104

—tenuis Nees. 39, 190, 196

Aphanomyces cochlioides Drechsl. 74

Ascochyla bolrshauseri Sacc. 50, 51

—cucumis Fautr. et Roum 111

—fabae Speg. 51

—fagopyri Bres. 44

—linicola Naum. et Vassil. 61, 191

—oryzae Catt. 39

—phaseolorum Sacc. 50

—pinodes Jones 50

—pisi Ub. 49, 191

—punctata Naumov 50

—trifolii Bond, et Trus. 57

—viciae Lib. 51

Aspergillus Micheli et Fr. 38, 41, 77, 197

—Tj/ger van Tiegh. 180

Aureobasidium pullulans (dBy) Arn. 55, 191

var. lini Cooke 61

Bipolaris sorokinlana Shoem. 16, 22, 23,

24, 46

138

Blumerella hiemalis Poeldmaa

Blumeha graminis Speer. 25

Botrytis alia Munn 118

64, 77, 164, 191,

90, 193

—cinerea Pers. 41, 44, 53, 57

97, 101, 103, 112, 123, 146

—fabae Sard. 53

Calonectria graminkola Woll.

192

Cercospora betlcola Sacc. 74

—fagopiri Abramov 44

—rosicola Pass. 148

—rosier! Sacc. 172

—vitis Sacc. 172

Cercosporetta herpotrichoides Fron. 17

Cladosporium Lk 38, 71

—cucumerinum Ell. et Arth. 112

—fulvum Cooke 103 -herbarum Lk 26, 190, 196 Clasterosporium carpophilum (Lev.) Aderh.' 137

138

, 141 63

Claviceps purpurea Tul. 25, 46 Coccomyces hiemalis Higg. 138 Cochliobolus sativus Drechs. 23 Colletolrichum gloeosporioides Penz. 176 -lagenarium Ell. et Halst. 110, 192 —lindemuthianum Br. et Cav. 51, 191 -/m/Manns et Boll. 61, 191 Coniothyrium diplodiella (Speg.) Sacc. 173 —wernsdorffiae Laub. 146 Cronartium ribicola Dietr. 154 Cylindrosporium hiemale Higg. Cytospora Ehrenb. 141 —carphosperma Fr. 131 —cydoniae Bub. et Kab. 131 —leucostoma Sacc. 141 —schulieri Sacc. et Syd. 131, Dendrophoma marconii Cav. —obscurans Anders. 164 Deuterophoma tracheiphila Petri 176 Dialonectria galligena (Bres.) Petch. 132 Didymella applanata Sacc. 159 —bryoniae Rehm, 111 Diptocarpon rosae Wolf. 148 Diplodia frumenthi Lev. 34 —macrospora ЪА Drechslera avena Ito 24, 197 -graminea Ito 22, 23, 190, 196 —oryzae Subram. 40 —panici-miliacei Nisikado 24 —sorokiniana Subram. 190, 196 -teres Ito 22, 24, 190, 196 Entomosporium maculatum Lev. 128 —f. maculata Kleb. 128 Epichloe typhina Tul. 46 Epicoccum neglecium Desm, 196 —triiici P. Nenn. 196 Erysiphe betae (Vanha) Weltzein 75 —cichoracearum DC 109 —communis Grev. 192

f. brassicae Hamarl. 99

—graminis DC 25, 47

f. agropyri Jacz. 48

f. agroslidis Jacz. 48

f. ftrom/Marchal 48

f. phlei Jacz. 48

—oronthi 109

-pKiSyd. DC 52

—-umbetliferanim dBy 122

Fu/v/fl/u/vn (Cooke) Ciferri 103

Fusarium Lk: Fr. 15, 17, 18. 21, 33, 70

—avenaceum Sacc. 17, 21, 22, 49, 55, 60,

190, 197

-culmorum Sacc. 17, 21, 22, 49, 55, 190, 197

—gibbosum App. et Wr. 17

— gramineartim Schw. 17, 21, 22, 35, 37, 190, 197

—herbarum Sacc. 55 -moniliforme Sheid. 21, 35, 37, 190 -nivale Ces. 18, 22, 45 -oxysponimSc)\\. 17, 49, 55, 83, 149, 166, 191

f. sp. conglutinans Sn. et Hans. 95

graminearum Schw. 21

/m/Boll. 59, 191

— —f. sp. lycopersici (Schlecht.) Snyd. et

Hans. 105

f. niveum Bilai 109

orizae Petrova 40

trifolii (Jacz.) Raillo 55

vasinfectum Atk. 63

—roseum Lk 49 —sambucinum Fuck. 86 -и/am App, et Wr. 17, 86, 191 —sporotrichiella Bilai 17 Fusidadium dendriticum Fckl. 126

— pirinum Fckl. 126

Gaeumannomyces graminis Arx. et Oliv. 17 Gibberella saubinetii Sacc. 21 Gloeosporium ampelophagum Sacc. 170

• ribis Mont, et Desm. 151

• venetum Speg. 157, 201 Gnomonia fructicola Fall. 164 Gymnosporangium confusum Plowr. 128

• doiro^racovoe Mitroph. 128

• лпбшое (Dicks.) Wint. 128

• tremelloides }\ш\%. 128 Helminthosporium maydis Subram 34

• sativum P., K. et B. 16

• turcicum Pass. 34 Leveillula laurica Am. 105 Macrosporium sp. 190 Marssonina Magn.

• pote/rr/V/oe (Desm.) Magn. 164 {.fragaria (Lib.) Ohi. 164

• rosae (Lib.) Died. 147 Masligosporium album Riess. 48 Melampsora allii-populina Kleb. 117

• lini Lev. 60

Monilia Pers. 130 —fructigena Pers. 130

• cinerea Bon. 136 f. ma//Worm. 130

• cydoniaeSheW. 130 Mucor Micheli 38, 77, 190 l\iycosphaerella graminicola Schroet. 26

• grossulariae (¥t.) Lind. 153 —fragariae Sacc. 164 -«teRoark 153, 158 Nectria galligena Brts. IZl Oidiopsis taurica Salm. 105 Oidium kucoconium Desm. 145 —turkeri Berkl. 170

Olpidium brassicae (Woron.) Dang. 93, 94 Ophiobolus K\ess. 15, 17

• grommi's Sacc. 17, 46

• porphyrogonus Sacc. 82 Pellicularia filamentosa Sprague 81 Penicillium Lk 38, 41,77

• g/fli/cumLk 196, 197

• italicum Wehmer 179 Peronospora destructor Fr. 116 —fagopiri Elenev 42

• manshurica (N. Naumov) Syd. 52

• paroj/r/ca Gaem. 94, 99

• p«i Syd. 52

• ісЛас/і//іҒиск. 75, 192

• sparsa Berk. 147

• tabacina Adam 66 Phaeosphaeria nodorum Hedjar. 26 Phialophora radicicola Cain. 17 Rhitopus nigricans Dowson 197 Phoma betae Fr. 74, 75, 77, 192 -

• exiqua Desm. 82

• lingam (Tode) Desm. 96, 100

• oleracea var. nielianlhi Sacc. 91

• rostrupii Sacc. 121 —tracheiphila AUesch. 176 Phomopsis citri Fawc. 179

• helionthi Munt. Cvet. et al. 92

• viticola Sacc. 172

Phragmidium discifiorum (Tode) James 145

• rubi-idaeiKarsi. 160

• tuberculatum Mull. 145 Phyllachora graminis Fuck. 48 Phylloslicta Pers.

• briardi Sacc. 127

• humuti Sacc. 72

• lupulina Kab. et Bub. 72

• maliPr. et Del. 127

• pirina Sacc. 127 Phylophlhora dBy 178

• cactorum Schroet. 167

• cilrophthora Leonian 178 —fragaria Hickman 167

• infestans dBy 79, 102

• para5/r/ca Dastur 43, 102, 178 Piricularia oryzae Cav, 39

Plasmodiophora brassicae Wor. 95, 99 Plasmopara Schroet. —helianthi Novot. 88

— viticola Berl. et de Toni 169 Plenodomus hamuli Kusnetz. 70 Podosphaera kucotricha Salm. 127 Polysligma rubrum DC 139 Pseudocercosporella herpotrichoides Fron. 17

Pseudoperonospora cubensis Rostow. 110

• humuli Miyabe et Так. 71 Pseudopeziza ribis K\eb. \5\

• Iracheiphila MuW-Thmg. П2

• trifolii Fckl. 57 Puccinia Pers. -fl//;7Rud. 117

• anomala Rostr. 13

• bromina Eriks. 47

• coronifera Kleb. 13

• — f. agnpyri Eriks. 47

f. avenae Eriks. et Henn. 13

Г. festucae Eriks. 47

• dispersa Eriks. et Henn. 12

• g/umarum Eriks. et Henn. 13

• graminis Pers. 11, 13

f. avenae Eriks. et Henn. 13

f. secalis Eriks. et Henn. 12, 13

Г. tritici Eriks. et Henn. 11

• helianthi Schw. 92 —/wrrfe/Otth. 13

• persistans Plowr. 47

• porri Wint. 117

• recondita Rob.: Desm. 11

• — f. secalis 12 f. tritici John. 11

• Hbesii-carisis Kleb. 153

• sorghi Schev. 34

• 5fn7/brm« West. 12, 13

• triticina Eriks. 11

Pyrenophora graminea Ito et Kurib. 23 ■

— teres Drech. 24 Pythium Pringsh. 109

— debaryanum Hesse 49, 65, 74, 93, 94, 109

Ramularia tulasnei Sacc. \62 Rhacodiella vitis Sterenb. 172 Rhizoctonia DC

— carotae Rad. 124

-solani Kuhn. 65, 74, 79, 81, 93, 94 ~ violacea (Tul.) Pat. 78, 123 Rhizopus Ehr. 77

• maydis Brud. 37

• nigricans Ehr. 91, 190, 197

• nodosus Namysl. 91 Rhynchosporium secalis Davis. 25 Sclerotinia graminearum Elenev 19

• sclerotiorum (Lib.) dBy 36, 46, 64, 89, 97, 100, 112, 123

~ trifoliorum Eriks. 55

Sclerotium bataticola Taub. 35

• cepivorum Berk. 119 Septoria cannabis Sacc. 63

• humuli West. 72

• linorum Gar. 61, 191

• lycopersici Speg. 104

• nodorum Berk. 26

• piricola Desm. 128

• ribis Desm. 152

• rosae Desm. 148 -гиб/West. 158

• tritici Rob. et Desm. 26 Sorosporium reilianum Mc Alp. 33 Sphacelia segetum Lev. 25 Sphaceloma ampelinum dBy 170

• rosarum (Pass.) Jenk. 148

• venetum 157

Sphacelotheca panici-miliacei Bubak 8, 189, 196

Sphaeropsis malorum Peck. 130 Sphaerotheca fuliginea Poll. 109

• mocu/ora Magh. f./rogflriae Jacz. 165 f. humuli Lev. 69

• mors-uvae (Schw.) Berk, et Curt. 150

• pannosa Lev. 140, 145

■ var. persicae Woronich. 140

Spongospora subterranea (Wallr.) Lagerh. 82 Sporotrichum citri Butl. 176 Stemphylium 116

Stereum purpureum (Pers.) Fr. 132 Synchytrium endobioticum Pers. 80 Taphrina cerasi Sadeb. 140

• deformans ¥\іЛ. 140

• pruni Fuck. 140

Thielaviopsis basicola (Berk, et Br.) Ferr.

49,65

Tilletia caries (DC) Tul. 4, 189, 195

• controversa Kuehn. 4, 189, 195 -foetida Liro 4, 189

• horridaJzY. 41, 196

• indica Mitra 6, 189

• levis Kuehn. 4, 195

• secalis Kuehn. 6, 195

• tritici Wint. 4

Tranzschelia pntni-spinosae (Pers.) Diet. 139 Trichothecium roseum Lk 41, 190, 197 Typhula Fr. et Karst.

• idahoensis Rem. 45, 71

• incamata Jasch. et Fr. 20, 45 Uncinula necatorBuTT. 169 Urocystis cepulae FtoH. \\%

• dactulidina M. Chochr. 47

• occu/ta Rab. 6, 189, 195

• tritici Koern. 6, 189 Uromyces betae (Pers.) Lev. 75, 192

• dactylidina Otth. 47 —fallens Kern. 57

• pisi Schrot. 52

• striatus Schr. 57

Usiilago Li го

- avenae (Pers.) Jens. 8, 189, 195

— hordei Lagerh. 6, 189, 195

• kolleri Will. 8

• levis (Kell. et Sw.) Magn. 8, 189, 195

• nigra Tapke 7, 195

• nuda Kell. et Sw. 7, 189

- rnV/ci (Pers.) Rostr. 4, 189

— vavilovi Jacz. 6 -zeae Ung. 32, 189

Venturia inaequalis Wint. 126

— pirina Aderh. 126 Verticillium biees 141, 149 -albo-alrum Rke et Berth. 82, 141, 155, 166

-dahliaeKkb. 92, 141, 149, 166, 193 iVhetzelinia borealis M. Chochr. 19

• sckrotiorum (Lib.) dBy 35, 46, 64, 97, 100, 112, 123, 193

• trifoliorum (Eriks.) M. Chochr. 55 Zylhia fragariae Liiib. 164

БАКТЕРИИ

Agrobacterium

• rizogenes Riker et al. 72

• tumefaciens Conn. 72, 78, 133, 149, 174 Bacillus betae Mig. 78

• bussei Mig. 78

• macerans Schar. 62

• mesentericum var. vulgatus Flugge 38 Clavibacter

• michiganensis subsp. michiganensis (Smith) Davis et al. 105

subsp. sepedonicum Skapt. et Burkh. 84

Erv/inia

— amylovora (Burrill) Winsl. et al. 133 -caroiovora Hoi. 29, 30, 119, 125

sp. atroseptico (Jones) Bergey et al.

84, 86, 97

Pseudomonas angulatum Fromme et Mur­ray 67

• atrofaciens Stapp 24, 197

• citriputealis Stevens 180

•— corrugata Roberts and Scarlett 106 —fluorescens Mig. f. napi Peresypkin 101

• ramonicum Schn. et lluchina 29, 30

• solanacearum Smith 84

• syringae van Hall. 66, 76, 133, 149

pv. coronafaciens Young et al. 30

pv. glycinea Coerper 53

pv. lachrymans (Smith and Bryan)

Young et al. 113

pisi Young et al. 53

syringae van Hall. 142

pv. tomato (Okabe) Young et al. 106

— xanlhochlora Stapp 119

Ralstonia solanacearum (Smith) Jabuuchi ei al. 84

Streptomyces scabies Walk, et Henr. 84 Xanthomonas beticola (Smith, Brown, Towns.) Savul. 78

— campestris pv. campestris (Pammel) Dows. 97, 101

carotae Kendr. 124

hordei Young et al. 29

— — phaseoli Young et al. 53

secalis Young et al. 29

undulosa Young et al. 29

vesicatoria (Doidge) Dye 106

• oryzae Dowson 42

• pruni Dowson 142

• translucens Dowson 197

ВИРУСЫ

Alfalfa mosaic virus 44, 64 Apple chlorotic leaf spot virus 134

• mosaic virus 133

• stem grooving virus 134 Arabis mosaic virus 168

Avena virus I Suchov et Vovk 31 Barley stripe mosaic virus 31

• yellow dwarf virus 31,42 Bean common mosaic virus 54

• yellow mosaic virus 54 Beet mosaic virus 76

• necrotic vein yellow virus 77

• yellow virus 76

Cherry chlorotic ringspot virus 143

Citrus exocortis viroid 181

• psorosis virus A 180

• tristeca virus (Closterovirus) 180 Cucumber green mottle mosaic virus 114

• mosaic virus 44, 64, 68, 114

• necrosis tombusvirus 115 Currant reversion virus 156 Gooseberry vein-banding virus 156 Grapevine chrome mosaic virus 174 —fanleaf virus 174

Green petal phytoplasma 168 Hemp streak virus 64 Hop chlorotic virus 73

— crinkle virus 73

• mosaic carlavirus 72 Maize mosaic virus 36

• yellow dwarf virus'ів Onion mosaic virus 120

• yellow dwarf virus 120 Pea mosaic virus 54 Plum pox virus 142 Potato leaf roll virus 85

• spindle tuber viroid 85

• virus M 85

5 85

--ЛГ85 --У85

Prune dwarf virus 143 Prumis necrotic ringspot virus 143 Raspberry leaf mottle virus 161 spot virus 161

— ringspot virus 168

Rice dwarf virus 42 Rimocortium psorosis (Vav/.) 180 Rose mosaic virus 149 Rubusstuntphytoplasma \()\

— yellow net virus 161

Russian Winter Wheat mosaic virus 30 Siberian oats mosaic virus 31 Strawberry crincle virus 168

— mottle virus 168

Tobacco mosaic virus 44, 68, 107 Tomato aspermy virus 107

• mosaik virus 107

• spotted wilt virus 67, 68

• stolbur phytoplasma 85 Triticum virus 8 Zach. et Sith. 30 Wheat dwarf virus 30

• pale gveen dwarf 20

• streak mosaic virus 30 .

ОГЛАВЛЕНИЕ

Предисловие 3

Лабораторная работа 1. Головневые заболевания пшеницы, ржи, ячменя,

овса, проса 4

Лабораторная работа 2. Ржавчина зерновых культур 10

Лабораторная работа 3. Корневые гнили зерновых культур 15

Лабораторная работа 4. Болезни выпадения озимых зерновых культур 18

Лабораторная работа 5. Фузариозы зерновых культур 21

Лабораторная работа 6. Гельминтоспориозы и другие грибные заболевания

зерновых культур 22

Лабораторная работа 7. Бактериальные и вирусные болезни зерновых

культур 29

Контрольная работа. Определение болезней зерновых культур по внеш­ ним симптомам с помощью определителей 32

Лабораторная робота 8. Болезни вегетирующих растений кукурузы 32

Лабораторная работа 9. Болезни початков и семян кукурузы 37

Лабораторная работа 10. Грибные болезни риса 39

Лабораторная работа 11. Бактериальные и вирусные болезни риса 42

Лабораторная робота 12. Болезни гречихи 42

Лабораторная работа 13. Болезни злаковых трав 45

Лабораторная работа 14. Заболевания зерновых бобовых культур 49

Лабораторная работа 15. Заболевания кормовых бобовых культур 55

Лабораторная работа 16. Болезни льна. Повилики 59

Лабораторная работа 17. Болезни конопли. Заразиха 63

Лабораторная работа 18. Заболевания табака и махорки 65

Лабораторная работа 19. Заболевания хмеля 69

Лабораторная работа 20. Болезни свеклы. Повилики 74

Лабораторная работа 21. Грибные болезни картофеля 79

Лабораторная работа 22. Бактериальные, фитоплазменные и вирусные бо­ лезни картофеля 84

Лабораторная работа 23. Болезни клубней в период хранения 86

Лабораторная работа 24. Болезни подсолнечника. Заразиха 87

Лабораторная работа 25. Заболевания капусты 93

Лабораторная работа 26. Болезни рапса 99

Лабораторная работа 27. Заболевания томата 102

Лабораторная работа 28. Болезни огурца и других овошных культур се­ мейства Тыквенные 109

Лабораторная работа 29. Болезни лука 116

Лабораторная работа 30. Болезни моркови 120

Лабораторная работа 31. Болезни плодовых семечковых культур 126

Лабораторная работа 32. Болезни плодовых косточковых культур 136

Лабораторная работа 33. Болезни розы и шиповника 145

Лабораторная работа 34. Болезни смородины и крыжовника 150

Лабораторная работа 35. Болезни малины 157

Лабораторная работа 36. Болезни земляники 163

Лабораторная работа 37. Болезни винограда 169

Лабораторная работа 38. Болезни цитрусовых культур 176

Лабораторная работа 39. Фитопатологическая экспертиза семян 182

Приложение I. Ключ для определения грибных и бактериальных болез­ ней семян пшеницы, ржи, овса, ячменя, проса 195

Приложение 2. Приготовление питательных сред 197

Литература 199

Указатель международных названий возбудителей болезней растений 200

Учебное издание

Шкаликов Владимир Алексеевич, Стройкой Юрий Михайлович,

Джалилов Февзи Сеид-Умерович, Белошапкина Ольга Олеговна,

Корсак Ирина Владимировна, Истранина Ирина Владимировна,

Чебаненко Светлана Ивановна

ПРАКТИКУМ ПО СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННОЙ ФИТОПАТОЛОГИИ

Учебное пособив для вузов

Художественный редактор В. А. Чуракова

Технический редактор М. А. Шуйская '

Комльютерная верстка Т. Я. Белобородовой Корректор Л. А. Котова

Сдано в набор 12.02.2002. Подписано в печаггь 05.07.2002. Формах 60x88 1/16. Бумага офсетная Х» 1. Гарнитура Ньютон, Печать офсетная. Уел, печ. л. 12,74. Уч.-изд. л. 14,20. Изд. № 010. Печ. л, 13,0. Доп. тираж 2000 экз. Заказ № 0314950, «С» № 024,

000 «Издательство «КолосС», 101000, Москва, ул. Мясницкая, д. 17, стр. 1.

Почтовый а,арес; 129090, Москва, Астраханский пер,, я, 8, стр, 1,

Тел, (095) 280-99-86, гел,/факс (095) 280-14-63, e-maU; master@koloss,ru,

наш сайт: www,koloss,tu

Отпечатано в полном соответствии с качеством предоставленных

диапозитивов в ОАО «Ярославский полиграфкомбинат»

150049, Ярославль, ул. Свободы, 97.

оггег

ISBN 5-9532-0014-5

9785953200141