- •1) Правила поведения в баклабораториях
- •2) Правила забора материала для микробиологических исследования
- •3) Правила забора материала, хранения и транспортировке при оои
- •4) Составить направление на мб исследование
- •5) Дезинфекция в микробиологической лаборатории
- •6) Подготовка посуды к стерилизации
- •7) Этапы приготовления мазка
- •10) Метод Циль-Нильсена
- •8) Основные правила микроскопии (микроскопия готовых препаратов)
- •9) Метод Грамма
- •11) Определение подвижности микроорганизмов методом «раздавленной капли»
- •12) Методы культивирования анаэробов
- •13) Выделение чистой культуры микробов(механические и биологические)
- •14) Метод Дригальского
- •15) Выделение чистой культуры анаэробов
- •16) Заражение куриного эмбриона
- •17) Реакция гемагглютинации
- •18) Реакция фаголизиса
- •19) Определение фаготипа
- •20) Метод бумажных дисков
- •21) Учет результатов полимеразная цепная реакция (пцр)
- •22) Ра на стекле
- •23) Ра Видаля
- •24) Ра Райта
- •25) Рпга
- •26) Ра по Асколи
- •27) Рн токсина антитоксином по Оухтерлони
- •28) Рск Борде-Жангу
- •29) Рск Вассермана
- •30) Опсоно-фагоцитарная реакция
- •31) Рн на мышах с целью установления экзотоксина
- •32) Реакция Нейтрализации на мышах с целью идентификации вируса клещевого энцефалита
- •33) Ртга
- •35) Учет реакции ифа
- •37) Серологическая диагностика Вич,с помощью реакции иммуноблотинга
15) Выделение чистой культуры анаэробов
I этап — обогащение на среде Китт-Тароцци, предварительно прокипяченной в течение 30 минут. После посева среду прогревают 15 минут при 80°С для уничтожения вегетативных форм, споры анаэробов при этом сохраняются.
II этап - получение изолированных колоний. На среде Китт-Тароцци обнаруживается помутнение с пузырьками газа.
Ш этап - выделение чистой культуры проводится по одному из следующих методов:
А) По Цейсслеру - каплю материала со среды Китт-Тароцци засевают в чашку с кровяным агаром и распределяют материал шпателем, этим же шпателем производят посев во второй и третьей чашках;
Б) По Вейнбергу - каплю материала со среды Китт-Тароцци переносят в растопленный и слегка остуженный сахарный агар, затем набирают в трубки Веньял-Вейона и инкубируют в термостате.
IV и V этапы - идентификация в реакции нейтрализации на белых мышах.
16) Заражение куриного эмбриона
Куриный эмбрион используется для культивирования вирусов, микоплазм. Используют эмбрионы в возрасте 8-14 дней в зависимости от вида вируса и способа заражения: на хорион-аллантоисную оболочку, в аллантоисную и амниотическую полость, в желточный мешок. Перед заражением определяют жизнеспособность эмбриона в овоскопе и отмечают карандашом на скорлупе границы воздушного мешка. Заражение куриных эмбрионов производят в боксе в строго асептических условиях, пользуясь инструментом, стерилизованным кипячением.
I этап
Скорлупу над воздушным пространством протирают спиртом, обжигают в пламени, смазывают 2% раствором йода, снова протирают спиртом и обжигают. Вирусный материал в количестве 0,05 - 0,2 мл наносят на хорион-аллантоисную оболочку туберкулиновым шприцом или пастеровской пипеткой.
II этап
Вскрытие эмбрионов проводят через 48-72 часа инкубации в термостате. Наличие вируса в хорион-аллантоисной оболочке определяют:
1. по белесоватым непрозрачным пятнам разной формы;
2. в реакции гемагглютинации.
17) Реакция гемагглютинации
Реакция гемагглютинации - это один из методов индикации вирусов. Ставится двумя методами:
1) капельным на стекле;
2) в пробирках - развернутая реакция.
Компоненты:
1) исследуемый материал: аллантоисная жидкость, суспензия хорионаллантоисной оболочки куриного эмбриона, экстракт из культуры клеток, зараженных вирусом;
2) 5% взвесь куриных эритроцитов;
3) физиологический раствор.
На чистое обезжиренное стекло наносят 1 каплю взвеси эритроцитов и 1 каплю исследуемого материала. При «+» результате - хлопья агглютинации эритроцитов.
18) Реакция фаголизиса
Реакция фаголизиса ставится для идентификации возбудителя дизентерии.
Постановка реакции:
1) чистая культура шигелл на скошенном агаре;
2) 2 пробирки с МПБ - «опыт» и «контроль»;
3) дизентерийный бактериофаг
На I этапе:
1) Проверка культуры шигелл на чистоту (окраска по Граму);
2) Посев в 2 пробирки с МПБ
3) В пробирку «опыт» добавить 2 капли (0,1 мл) дизентерийного бактериофага;
4 ) Посевы инкубировать в термостате 18-20 часов при темпратуре 37°С
На II этапе:
Регистрация результатов посева. В пробирке «контроль» имеется равномерное помутнение МПБ, т.к. культура шигелл оказалась жизнеспособной. В пробирке «опыт» МПБ прозрачный, т.е. дизентерийный бактериофаг вызвал лизис одноименной культуры бактерий.
