- •Введение
- •Общий план практического курса по биотехнологии (первый блок)
- •Тема 1 получение рекомбинантных белков и клонированной днк с использованием микроорганизмов
- •Теоретическая часть
- •Практическая часть
- •Вопросы для самоконтроля
- •Тестовые задания
- •Практическая часть
- •Тестовые задания
- •Теоретическая часть
- •Вопросы для самоконтроля
- •Практическая часть
- •Вопросы для самоконтроля
- •Тестовые задания
- •Тема №2: молекулярно-биологические методы идентификации белковой экспрессии
- •Теоретическая часть
- •Практическая часть Лабораторная работа №1.
- •Вопросы для самоконтроля
- •Тестовые задания
- •Теоретическая часть
- •Практическая часть
- •Вопросы для самоконтроля
- •Тестовые задания
- •Ответы на тестовые задания
- •Трансформация бактериальных клеток с использованием хлористого кальция
- •2. Выделение плазмидной днк
- •3. Полимеразная цепная реакция. Электрофорез.
- •Ответы на тестовые задания по теме «основы иммуногистохимического окрашивания»
- •Рекомендуемая литература
- •Заключение
- •634050, Г. Томск, пр. Ленина, 107
- •634050, Томск, ул. Московский тракт, 2
Практическая часть
Лабораторная работа №1.
Полимеразная цепная реакция
Принцип метода: ПЦР позволяет избирательно синтезировать in vitro небольшие фрагменты ДНК длиной от нескольких десятков до нескольких сотен пар нуклеотидов, благодаря чередующимся стадиям денатурации, отжига и элонгации.
Оборудование:
Амплификатор ДНК — программируемый термостат, позволяющий задавать температурный режим, время, количество циклов;
Пипетки;
Наконечники для пипеток одноразовые;
Эппендорфы.
Реактивы:
Исследуемая ДНК;
Taq-полимераза — термофильная ДНК-полимераза, выделенная из бактерии Thermus aquaticus, живущих в горячих источниках, и потому устойчивая к действию высоких температур;
Дезоксирибонуклеотиды: дАТФ, дГТФ, дЦТФ, дТТФ;
Два праймера к IFN-γ — олигонуклеотиды длиной 20-30п.н.;
Буфер, содержащий Mg2+.
Ход работы:
Приготовить ПЦР-смесь, согласно Таблице 1;
Добавить к ПЦР-смеси образец исследуемой ДНК в объёме 1,1 мкл (в концентрации 50-80нг/мкл);
Запрограммировать амплификатор, согласно схеме на Рис.6.
Таблица1. Схема приготовления ПЦР-смеси.
Реагенты |
Объём на одну пробу |
Прямой праймер (10мкМ) |
0,36 |
Обратный праймер (10мкМ) |
0,36 |
Буфер |
1,2 |
дНТФ (2,5мМ) |
0,8 |
MgCl2 (25мМ) |
0,8 |
Taq-полимераза |
0,1 |
H20 |
7,4 |
Рис.6 Схема программирования амплификатора.
Интерпретация результатов:
Контроль результатов амплифицирования проводится с помощью электрофореза в агарозном геле.
Лабораторная работа №2.
Электрофорез ДНК в агарозном геле.
Электрофорез в агарозном геле с использованием бромистого этидия (EtBr) позволяет легко, обнаружить амплифицированную ДНК и определить её размер.
Одним из примеров применения электрофореза может являться ПДРФ-анализ (рис.7). Мутации, возникающие в участках узнавания определённых рестриктаз, делают эти участки ДНК нечувствительными к действию ферментов. Это может быть легко обнаружено по изменению длины рестрикционных фрагментов ДНК. ПДРФ-анализ включает следующие этапы: выделение геномной ДНК, её рестрикцию специфической эндонуклеазой, электрофоретическое разделение образующихся фрагментов ДНК и идентификацию этих фрагментов путём блот-гибридизации по Саузерну. На электрофореграммах при отсутствии рестрикции в исследуемой ДНК выявляют один крупный фрагмент, соответствующий по длине последовательности ДНК между двумя соседними участками рестрикции для той же эндонуклеазы. При наличии рестрикции в полиморфном участке на электрофореграмме будет присутствовать меньший по размерам фрагмент, равный расстоянию между полиморфным участком рестрикции и одним из ближайших постоянных участков рестрикции.
Цель: освоить метод проведения электрофореза в агарозном геле.
Вопросы для самоподготовки:
Принцип работы гель-электрофореза.
Влияние компонентов электрофореза на ход реакции.
Области применения гель-электрофореза.
Рис.7 Применение электрофореза при ПДРФ-анализе (полиморфизм длины рестрикционных фрагментов) (http://classroom.sdmesa.edu/eschmid/Lab17-Biol210.htm)
Принцип метода: разделение ДНК разной массы при помощи электрического тока. Так как молекула ДНК имеет в своём составе большое количество отрицательно заряженных фосфатных групп, то это способствует её передвижению в сторону анода. Разделение макромолекул зависит от двух переменных: заряда и массы. Линейная двухцепочечная ДНК перемещается через матрикс геля со скоростью, обратнопропорциональной десятичному логарифму (lg) числа нуклеотидных пар. Более крупные молекулы ДНК будут перемещаться медленнее, вследствие их большего сопротивления трения.
Оборудование:
Ванна для электрофореза;
Трансиллюминар;
Автоматические пипетки;
Одноразовые наконечники для пипеток.
Реактивы:
ТАЕ-буфер;
Агароза;
Дистиллированная вода;
1% раствор EtBr (При освещении ультрафиолетовым светом, EtBr флюоресцирует оранжевым цветом, раз при связывании с ДНК интенсивность флюоресценции увеличивается примерно в 20);
Библиотека ДНК.
Ход работы:
Сварить агарозный гель;
Для приготовления геля объёмом 100мл нам нужно смешать 2 мл 50хТАЕ-буфера и 98мл воды, добавив туда 1,5 г агарозы. Затем разогреть в микроволновке до однородного состояния и исчезновения пузырьков. Немного охладить и добавить 8мкл бромистого этидия.
Залить в ванночку для электрофореза, предварительно вставив туда гребёнку для формирования лунок;
Залить 1хТАЕ-буфером;
Раскапать библиотеку и образцы в лунки, предварительно окрасив образцы бромфеноловым синим;
Включить установку на 30 мин при U=150мВ;
Поместить полученный гель в трансиллюминатор для получения результатов.
Интерпретация результатов:
После визуализации результатов электрофореза с помощью трансиллюминара, мы получаем картину распределения ДНК по массе.
Рис.8 Визуализация результатов электрофореза с помощью трансиллюминара.
