- •1. Виды культур клеток
- •2. Питательные среды
- •3.Получение клеточных культур
- •3.1. Приготовление первичных клеточных культур
- •3.2. Получение монослойных перевиваемых культур клеток
- •3.3. Роллерное культивирование клеток
- •3.4. Суспензионное культивирование клеток
- •3.5. Культивирование клеток на микроносителях
- •4. Предосторожности при работе с зараженными вирусами клетками
- •4.1 Обнаружение вирусов
- •3.6 Выращивание вирусов в культурах клеток
- •4.2 Культивирование пикорнавирусов на примере получения полиовируса типа 3 в культуре клеток HeLa
- •5. Биотехнология на основе культивируемых клеток и тканей растений
- •5.1. Клеточные технологии для получения экономически важных веществ растительного происхождения
- •5.2. Клональное микроразмножение растений
- •5.3. Получение безвирусного посадочного материала
- •5.4. Культура изолированных клеток и тканей в селекции и генной инженерии растений
- •5.5. Использование метода культуры клеток, тканей и
3.5. Культивирование клеток на микроносителях
В 1967 г. VanWerel предложил метод культивирования, сочетающий элементы монослойного и суспензионного выращивания клеток, который он назвал методом «микроносителей». Суть его заключается в том, что клетки прикрепляются и размножаются на поверхности полимерных шариков-частиц «микроносителей» (МН), которые содержатся в суспензии с помощью перемешивающего устройства, например мешалки.
Основными преимуществами этого метода являются:
создание равномерных условий по всему объему сосуда, что делает возможным эффективно контролировать необходимые параметры (рН, р02 и др.);
получение высокой плотности клеточной популяции до 5–6 млн. клеток в 1 мл;
культивирование одновременно несколько сот миллиардов клеток;
введение постоянного контроля за динамикой роста клеток;
снижение роста контаминации в связи с сокращением операций, связанных с разгерметизацией культураль-ного сосуда;
значительная экономии питательных сред;
возможность сохранять выросшие клетки непосредственно на частицах при низких температурах;
возможность искусственно создавать различные концентрации МН с выросшими на них клетками;
возможность пассирования культуры без применения трипсина путем добавления свежих порций микроносителя.
Микроносители должны иметь:
небольшой положительный заряд в пределах 1,5–1,8 МЭКВ/г. В связи с тем, что большинство клеток животных имеют слабо отрицательный заряд, они легче будут прикрепляться к такому МН:
плотность 1,05–1,15 г./см; указанная плотность является оптимальной для поддержания МН во взвешенном состоянии;
диаметр частиц от 100 до 250 мкм, что обеспечивает площади для роста нескольких сотен клеток;
гладкую поверхность;
прозрачность;
отсутствие токсичности компонентов для клеток;
незначительное впитывание компонентов среды;
универсальность, обеспечивающую возможность использования их для первичных, диплоидных и гетероплоидных клеток. Немаловажное значение имеют свойства МН, которые позволяют использовать их многократно.
Культивирование клеток на микроносителях проводят в обычных ферментерах для суспензионного культивирования. В ферментере не должно быть каких-либо выступов, карманов, чтобы предотвратить накопление микроносителей в застойных зонах. Поэтому разумно использовать ферментеры с круглым дном и гладкими стенками. Внутренняя поверхность ферментера должна быть силиконизирована для предотвращения прилипания микроносителей к стеклу или нержавеющей стали ферментера.
Для контроля за окружающими культуру условиями такими, как рН и О2, может быть использовано стандартное оборудование. Скорость перемешивания суспензии с носителем должна быть 40–60 об/мин.
Посевная концентрация клеток, а также условия культивирования на МН в первые часы в значительной степени определяют оптимальные параметры для пролиферации и максимального накопления клеток.
Важное значение для культивирования клеток на МН имеет питательная среда. Правильный подбор питательной среды также будет способствовать оптимизации процесса пролиферации клеток и их качество. Необходимо проводить подбор питательных сред для культивирования клеток на различных типах МН. Показано, что перевиваемая линия клеток почек обезьян (Vero) на цитодексе дает наибольший выход при использовании среды Игла ДМЕ
