- •Директор иЕиГн фгоу впо сфу
- •УчебнОе пособиЕ по циклу лабораторных работ
- •Раздел 2. Физиология растительной клетки 7
- •Раздел 3. Водообмен растений 17
- •Правила по технике безопасности
- •Раздел 4. Минеральное питание 26
- •Раздел 5. Дыхание растений 34
- •Раздел 6. Фотосинтез 43
- •Раздел 7. Рост и движения растений 54
- •Раздел 8. Устойчивость растений к неблагоприятным факторам среды 59
- •Модуль 1.
- •Раздел 2. Физиология растительной клетки
- •Занятие 1. Методы изучения проницаемости протоплазмы растительной клетки.
- •Задание 1. Проницаемость живой и поврежденной протоплазмы для клеточного сока
- •Задание 2. Накопление красок в вакуолях
- •Задание 3. Наблюдение колпачкового плазмолиза
- •Задание 4. Определение жизнеспособности семян по окрашиванию цитоплазмы
- •Занятие 2. Изучение осмотических свойств растительной клетки. Задание 5. Определение осмотического давления клеточного сока методом плазмолиза
- •Задание 6. Определение водного потенциала растительной ткани методом полосок (по Лилиенштерн)
- •Задание 7. Определение водного потенциала тканей листа методом Шардакова
- •Раздел 3. Водообмен растений Занятие 3. Изучение водного режима растений (4 ч)
- •Задание 8. Определение форм воды в растительных тканях
- •Задание 9. Определение интенсивности транспирации хлоркобальтовым методом
- •Задание 10. Определение интенсивности транспирации весовым методом
- •Задание 11. Определение степени открытия устьиц методом инфильтрации
- •Сделать вывод о степени открытия устьиц исследуемого растения. Задание 12. Определение водного дефицита растений
- •Раздел 4. Минеральное питание Занятие 4. Изучение минерального питания растений.
- •Задание 13. Обнаружение отдельных элементов, входящих в состав растений
- •Задание 14. Влияние аэрации на поглощение питательных веществ корнями растений
- •Задание 15. Рост растений на растворах чистых солей и на их смеси (антагонизм ионов)
- •Задание 16. Влияние анионов и катионов солей на форму и время плазмолиза
- •Задание 17. Физиологическая реакция солей
- •Задание 18. Смещение рН питательного раствора корнями растений
- •Модуль 2. Раздел 5. Дыхание растений
- •Занятие 5. Изучение ферментов дыхания растений Задание 19. Обнаружение дегидрогеназ в семенах гороха
- •Задание 20. Обнаружение пероксидазы в соке клубня картофеля
- •Задание 21. Определение активности каталазы газометрическим методом
- •Занятие 6. Определение интенсивности дыхания Задание 22. Упрощенный метод определения интенсивности дыхания (по Бойсен-Иенсену)
- •Занятие 7. Определение дыхательного коэффициента Задание 23. Определение дыхательного коэффициента прорастающих семян
- •Раздел 6. Фотосинтез
- •Занятие 8. Изучение свойств фотосинтетических пигментов Задание 24. Химические и оптические свойства пигментов листа
- •Занятие 9. Определение фотосенсибилизирующего действия хлорофилла Задание 25. Фотосенсибилизирующее действие хлорофилла на реакцию переноса водорода (по а.А.Гуревичу)
- •Задание 26. Разделение фотосинтетических пигментов методом бумажной хроматографии
- •Задание 27. Определение количества хлорофилла в листьях колориметрическим методом
- •Занятие 10. Определение интенсивности фотосинтеза Задание 28. Определение интенсивности фотосинтеза по накоплению углерода в листьях
- •Модуль 3. Раздел 7. Рост и движения растений
- •Занятие 11. Изучение ростовых процессов растений Задание 29. Определение зоны роста стебля
- •Задание 30. Периодичность роста древесных побегов
- •Задание 31. Задерживающее и стимулирующее действие гетероауксина на рост
- •Задание 32. Нарушение геотропизма корней эозином
- •Задание 33. Хемотропизм корней пшеницы
- •Задание 34. Эпинастические и гипонастические изгибы листьев под влиянием гетероауксина
- •Модуль 4. Раздел 8. Устойчивость растений к неблагоприятным факторам среды
- •Занятие 12. Изучение устойчивости растений к неблагоприятным факторам Задание 35. Защитное действие сахаров на протоплазму при отрицательных температурах.
- •Задание 36. Определение жароустойчивости по ф.Ф. Мацкову
- •Список использованной литературы
Занятие 10. Определение интенсивности фотосинтеза Задание 28. Определение интенсивности фотосинтеза по накоплению углерода в листьях
Интенсивность фотосинтеза можно определять по различным параметрам - по поглощению углекислого газа, по выделению кислорода, по накоплению органического вещества в процессе фотоассимиляции. Методы последней группы наиболее просты, но требуют сложных приборов и могут быть использованы в лабораторных и полевых условиях.
Для определения органического вещества в листьях растений по количеству содержащегося в них углерода был предложен метод Ф.З.Бородулиной, принцип которого разработан ранее И.В.Тюриным для учета углерода в почве. Он основан на окислении органического вещества раствором калия двухромовокислого в смеси с концентрированной серной кислотой (хромовой смесью). При взаимодействии с углеродом бихромат разрушается, реакция идет по следующему уравнению:
2K2 Cr2 О7+8H2SO4+3С = 2К2SO4+2Cr2(SO4)3+2H2O+3CO2. (10)
Израсходованный на окисление углерода бихромат оттитровывается раствором соли Мора:
K2Cr7+6FeSO4+7H2SO4 = Cr2(SO4)3+3Fe2(SO4)3+K2S O4+7H2O. (11)
Ход работы. Для опыта использовать растения герани, предварительно выдержанные в темноте в течение суток для обеднения ассимилятами. У таких "голодных" растений на свету можно наблюдать более интенсивный фотосинтез.
Из листа герани пробочным сверлом высечь 3-4 диска. Лучше это сделать на одной половинке листа. Высечки использовать для анализа на содержание в них углерода. Лист поместить черенком в воду, выставить на свет, выдержать 1-2 часа, снова высечь 3-4 диска и определить в них количество углерода. Высечки до и после световой экспозиции следует брать одним и тем же сверлом с известным диаметром. Зная диаметр сверла, можно определить площадь высечек, взятых для анализа ( πr2 умножить на число дисков). Фотосинтез определять в двух - трех биологических повторностях, для чего до и после освещения листа при определении углерода брать 2-3 пробы. Это можно сделать на одном листе или использовать разные листья.
Чтобы определить углерод, диски из листьев нужно поместить в конические колбы на 100 мл. Туда же с помощью бюретки со стеклянным краном налить точно 10 мл 0,4 N раствора бихромата калия. Так как хромовая смесь является сильнейшим окислителем, то работать с ней надо очень осторожно. Недопустимо отмеривать её пипеткой!
Колбы закрыть стеклянными воронками и поместить на электрическую плитку для ускорения реакции окисления органического вещества. Нагревание следует вести строго определенное время - 5 минут (по песочным часам). Отсчет времени начать с момента появления пузырьков углекислого газа около дисков. Нагревание должно быть умеренным. Нельзя допускать бурного кипения смеси и выделения паров из воронки. При перегреве смесь может разрушиться.
При 5-минутном слабом кипении высечки должны полностью раствориться, окислиться. Колбы снять с плитки и охладить. Воронки снаружи и изнутри ополоснугь небольшим количеством воды (около 10 мл). В колбу добавить 5-6 капель индикатора (фенилантраниловую кислоту) и оттитровать содержимое 0,2 N раствором соли Мора. В присутствии хромовой смеси фенилантраниловая кислота дает бурую окраску раствора. По мере добавления соли Мора содержимое колбы светлеет, приобретает грязно-сиреневую окраску, которая от одной капли соли Мора может резко перейти в изумрудно-зеленую. Это конец титрования, важно его не пропустить, так как последующее прибавление соли Мора никаких изменений окраски не вызовет.
Иногда при титровании индикатор разрушается, особенно если раствор недостаточно охлажден. Поэтому целесообразно в середине титрования добавить еще 1-2 капли фенилантраниловой кислоты.
Параллельно с опытным титрованием провести контрольное (без высечек), чтобы найти соотношение 0,4 N раствора хромовой смеси и 0,2 N раствора cоли Мора. Методика титрования та же самая. Количество углерода определить по формуле:
(12),
где С- количество углерода, мг/дм2
а - количество мл соли Мора при контрольном титровании;
b - количество мл соли Мора при титровании опытного образца;
к - поправка к титру соли Мора (ее можно не учитывать, если всю работу проводить с одним и тем же раствором соли Мора и бихромата);
0,6 - коэффициент пересчета количества соли Мора на количество углерода: 1 мл 0,2 N раствора соли Мора соответствует 0,6 мг углерода;
S – площадь высечек, см2.
Результаты оформить в виде таблицы (21).
Таблица 21.
Схема записи опыта
|
Момент взятия проб |
Пов-тор-ность |
Взято K2Cr2O7, мл |
Пошло на титрование соли Мора, мл |
Площадь высечек, см2 |
Кол-во углерода, мг/дм2 |
Накопление углерода за время опыта 2 часа, мг/дм2 |
Интенсив-ность фотосинтеза, мг С/ дм2/час |
||
|
контроль |
опыт |
контроль |
опыт |
||||||
|
До освещения листа |
1 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
2 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
средн. |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
После освещения |
1 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
2 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
средн. |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
По окончании работы рассчитать интенсивность фотосинтеза и сделать вывод.
