- •Директор иЕиГн фгоу впо сфу
- •УчебнОе пособиЕ по циклу лабораторных работ
- •Раздел 2. Физиология растительной клетки 7
- •Раздел 3. Водообмен растений 17
- •Правила по технике безопасности
- •Раздел 4. Минеральное питание 26
- •Раздел 5. Дыхание растений 34
- •Раздел 6. Фотосинтез 43
- •Раздел 7. Рост и движения растений 54
- •Раздел 8. Устойчивость растений к неблагоприятным факторам среды 59
- •Модуль 1.
- •Раздел 2. Физиология растительной клетки
- •Занятие 1. Методы изучения проницаемости протоплазмы растительной клетки.
- •Задание 1. Проницаемость живой и поврежденной протоплазмы для клеточного сока
- •Задание 2. Накопление красок в вакуолях
- •Задание 3. Наблюдение колпачкового плазмолиза
- •Задание 4. Определение жизнеспособности семян по окрашиванию цитоплазмы
- •Занятие 2. Изучение осмотических свойств растительной клетки. Задание 5. Определение осмотического давления клеточного сока методом плазмолиза
- •Задание 6. Определение водного потенциала растительной ткани методом полосок (по Лилиенштерн)
- •Задание 7. Определение водного потенциала тканей листа методом Шардакова
- •Раздел 3. Водообмен растений Занятие 3. Изучение водного режима растений (4 ч)
- •Задание 8. Определение форм воды в растительных тканях
- •Задание 9. Определение интенсивности транспирации хлоркобальтовым методом
- •Задание 10. Определение интенсивности транспирации весовым методом
- •Задание 11. Определение степени открытия устьиц методом инфильтрации
- •Сделать вывод о степени открытия устьиц исследуемого растения. Задание 12. Определение водного дефицита растений
- •Раздел 4. Минеральное питание Занятие 4. Изучение минерального питания растений.
- •Задание 13. Обнаружение отдельных элементов, входящих в состав растений
- •Задание 14. Влияние аэрации на поглощение питательных веществ корнями растений
- •Задание 15. Рост растений на растворах чистых солей и на их смеси (антагонизм ионов)
- •Задание 16. Влияние анионов и катионов солей на форму и время плазмолиза
- •Задание 17. Физиологическая реакция солей
- •Задание 18. Смещение рН питательного раствора корнями растений
- •Модуль 2. Раздел 5. Дыхание растений
- •Занятие 5. Изучение ферментов дыхания растений Задание 19. Обнаружение дегидрогеназ в семенах гороха
- •Задание 20. Обнаружение пероксидазы в соке клубня картофеля
- •Задание 21. Определение активности каталазы газометрическим методом
- •Занятие 6. Определение интенсивности дыхания Задание 22. Упрощенный метод определения интенсивности дыхания (по Бойсен-Иенсену)
- •Занятие 7. Определение дыхательного коэффициента Задание 23. Определение дыхательного коэффициента прорастающих семян
- •Раздел 6. Фотосинтез
- •Занятие 8. Изучение свойств фотосинтетических пигментов Задание 24. Химические и оптические свойства пигментов листа
- •Занятие 9. Определение фотосенсибилизирующего действия хлорофилла Задание 25. Фотосенсибилизирующее действие хлорофилла на реакцию переноса водорода (по а.А.Гуревичу)
- •Задание 26. Разделение фотосинтетических пигментов методом бумажной хроматографии
- •Задание 27. Определение количества хлорофилла в листьях колориметрическим методом
- •Занятие 10. Определение интенсивности фотосинтеза Задание 28. Определение интенсивности фотосинтеза по накоплению углерода в листьях
- •Модуль 3. Раздел 7. Рост и движения растений
- •Занятие 11. Изучение ростовых процессов растений Задание 29. Определение зоны роста стебля
- •Задание 30. Периодичность роста древесных побегов
- •Задание 31. Задерживающее и стимулирующее действие гетероауксина на рост
- •Задание 32. Нарушение геотропизма корней эозином
- •Задание 33. Хемотропизм корней пшеницы
- •Задание 34. Эпинастические и гипонастические изгибы листьев под влиянием гетероауксина
- •Модуль 4. Раздел 8. Устойчивость растений к неблагоприятным факторам среды
- •Занятие 12. Изучение устойчивости растений к неблагоприятным факторам Задание 35. Защитное действие сахаров на протоплазму при отрицательных температурах.
- •Задание 36. Определение жароустойчивости по ф.Ф. Мацкову
- •Список использованной литературы
Задание 31. Задерживающее и стимулирующее действие гетероауксина на рост
Гетероауксин, или ß-индолилуксусная кислота, служит природным стимулятором роста, относящимся к группе ауксинов. Он встречается в тканях всех высших растений, регулируя рост, движения и корреляцию органов. Гетероауксин прост по химическому строению, поэтому синтезируется промышленным способом. В продажу поступает калиевая или натриевая соль гетероауксина. В практике растениеводства гетероауксин чаще всего применяют для стимулирования укоренения черенков и улучшения роста корневых систем.
Гетероауксин, как любой регулятор роста, в зависимости от концентрации раствора может не только активировать рост, но и задерживать, или полностью приостанавливать его. С этим свойством гетероауксина знакомит предлагаемая работа.
Ход работы. Опыт закладывают в чашках Петри, в пяти вариантах, отличающихся по концентрации гетероауксина. В качестве контроля используют воду. Дно и крышки чашек выстилают фильтровальной бумагой, на которой простым карандашом делают надпись с указанием исполнителя, даты закладки опыта и варианта. Надпись на фильтре, помещенном на дно чашки, надо расположить от стекла, на крышке - к стеклу. В каждую чашку Петри поместить по 20 зерен пшеницы и залить водой или растворами гетероауксина. В первую чашку налить цилиндром 9 мл водопроводной воды. Для более равномерного увлажнения среды прорастания семян жидкость сначала влить на крышку. Когда фильтр на крышке полностью увлажнится, остатки жидкости осторожно, без потерь, слить на донце чашки.
Для увлажнения второй чашки отмерить цилиндром 10 мл 0,01%-го раствора гетероауксина, из которых пипеткой отобрать 9 мл и этим объемом смочить фильтры сначала на крышке, а потом на донце чашки. Оставшийся в цилиндре 1 мл раствора развести в 10 раз, то есть в цилиндр долить 9 мл водопроводной воды. Получиться 10 мл 0,001%-го раствора гетероауксина, из которого 9 мл использовать для увлажнения фильтров в третьей чашке Петри. Оставшийся в цилиндре 1 мл снова разбавить в 10 раз и т.д.
Закрытые чашки Петри поместить в термостат при температуре 20-25С, в темноту. Через 3-5 дней у проростков пшеницы измерить длину всех корешков и колеоптилей. Результаты записать в тетрадь. Рассчитать среднюю длину корней и колеоптилей на одно растение каждого варианта. Данные занести в таблицу 23 и сделать вывод о влиянии растворов гетероауксина различных концентраций на рост проростков пшеницы.
Таблица 23.
Схема записи опыта
|
Варианты опыта
|
Количество семян |
Средняя длина на один проросток, см |
Длина к контролю, % |
||||
|
пророс-ших |
наклюнув-шихся |
не пророс-ших |
корешков |
колеоп-тиля |
кореш-ков |
колеоп-тиля |
|
|
Контроль |
|
|
|
|
|
|
|
|
0,01% |
|
|
|
|
|
|
|
|
0,001% |
|
|
|
|
|
|
|
|
0,0001% |
|
|
|
|
|
|
|
|
0,00001% |
|
|
|
|
|
|
|
