- •Учреждение образования «Международный государственный экологический университет имени а.Д.Сахарова»
- •Глава 1. Метилирование днк: методы исследования ……………..……........... 37
- •Введение
- •Список сокращений
- •Содержание
- •Раздел 1. Обзор литературы …………………………………………… 8-36
- •Глава 1. Метилирование днк у млекопитающих …………………………… 8-10
- •Глава 2. Метилирование днк: биохимия …………………………................ 13-18
- •Глава 3. Биологическое значение метилирования днк ……………………. 19-22
- •Глава 4. Роль метилирования днк в канцерогенезе ……………………….. 23-36
- •Раздел 2. Материал, методология и методики ………............ 37-45
- •Обзор литературы
- •1. Метилирование днк у млекопитающих
- •1.1 Метилирование днк: общие сведения
- •1.2 Метилирование днк генома млекопитающих
- •1.3 Распределение CpG динуклеотидов в геноме человека
- •1.6 Метилирование одиночных CpG-динуклеотидов
- •2. Метилирование днк: биохимия
- •2.1 Ацетилирование гистонов
- •2.3 Необходимость метилирования днк у эукариот
- •2.4 Dnmtl: днк-метилтрансфераза 1 белок и Dnmt3: днк-метилтрансфераза 3 белок
- •2.5 Метилирование генома как динамический процесс
- •2.6 Метилирование днк: влияние на структуру хроматина
- •3. Биологическое значение метилирования днк
- •3.1 Импринтинг: общебиологический аспект
- •3.2 Регуляция метилирования днк в эукариотических клетках
- •3.3 Метилирование днк во время эмбриогенеза
- •3.4 Регуляция экспрессии с помощью метилирования днк
- •4. Роль метилирования днк в канцерогенезе
- •4.1 Мутации метилированной днк
- •4.2 Региональное гиперметилирование в опухолях
- •4.3 Роль метилирования при канцерогенезе
- •4.4 Нарушения метилирования днк при канцерогенезе
- •4.5 Опухолевые клетки: свойства и метилирование днк
- •4.6 Метилирование CpG-островков в геноме опухлевых клеток
- •4.7 Полное гипометилирование генома и локальное гиперметилирование. Их роль. 5-МеС как эндогенный мутаген
- •4.8 Гены инактивированные метилированием в опухолях
- •Материал, методология и методики
- •1. Метилирование днк: методы исследования: общие сведения
- •1.1 Выделение днк
- •1.2 Бисульфитный метод и постановка амплификации. Определние гиперметилирования генов pten, mgmt, p16.
- •Заключение
- •Список использованных источников
2.3 Необходимость метилирования днк у эукариот
О важной роли метилирования свидетельствует, что гомозиготная делеция Dnmt1 у мышей ведет к летальному исходу на эмбриональной стадии развития. Это наблюдение явилось решающим доказательством необходимости метилирования ДНК у высших эукариот. На этой же модели получены доказательства давно предполагавшейся связи между метилированием ДНК и блокированием экспрессии метилированных генов.
Другим доказательством связи блока транскрипции с феноменом метилирования ДНК служат опыты с аналогом цитидина 5-азацитидином. Последний включается в реплицирующуюся ДНК и в силу своей химической структуры (N вместо С в позиции 5) не может быть метилирован. Его деметилируюшее ДНК действие, однако, в большей степени обусловлено тем, что 5-азацитидин служит "ловушкой" для ДНК- метилтрансферазы и блокирует ее активность.
Во многих случаях продемонстрирована возможность транскрипционной реактивации метилированных генов и генетических конструкций после применения 5-азацитидина как деметилирующего агента. Более того, этот тест в ряде случаев является решающим свидетельством вовлечения метилирования в тот или иной фенотипический признак. Его ограничением, однако, является возможность побочных эффектов [8].
2.4 Dnmtl: днк-метилтрансфераза 1 белок и Dnmt3: днк-метилтрансфераза 3 белок
Dnmtl- наиболее изученный сегодня фермент системы метилирования ДНК у позвоночных. О важной функциональной роли этого фермента свидетельствует то обстоятельство, что гомозиготная делеция Dnmt1 у мышей ведет к летальному исходу на эмбриональной стадии развития. ДНК-метилтрансфераза 1 - белок с молекулярной массой ~190 кДа, в котором выявлены два домена: каталитический, расположенный в С-концевой трети белка и структурно-близкий бактериальным цитозиновым метилтрансферазам, и регуляторный, расположенный в N-концевой части и содержащий сигнальную последовательность, направляющую фермент в активные репликативные комплексы в делящихся клетках.
Ферментативная активность Dnmtl резко возрастает с началом синтеза ДНК. Возможно, это обусловлено тем, что промотор Dnmtl активируется продуктом гена H-ras, участвующим в одном из главных путей переноса митогенного сигнала.
Репликативный комплекс включает в себя и ДНК-метилтрансферазу 1, благодаря чему в первые минуты после репликации профиль метилирования дочерней нити ДНК воссоздается по образцу материнской. Вместе с тем слабая способность ДНК-метилтрансферазы 1 метилировать ДНК de novo (наибольшую активность этот фермент проявляет по отношению к полуметилированным матрицам, т.е. к ДНК, одна нить которых уже метилирована и тот факт, что в клетках с нокаутированным геном Dnmtl метилирование de novo трансфицированной ДНК все же происходит, заставляют усомниться в том, что наряду с поддерживающим метилированием Dnmtl способна осуществлять и метилирование de novo. Клонированы гены, продукты которых проявляют высокую способность метилировать ДНК de novo и которые, возможно, ответственны за этот процесс in vivo.
Две ДНК-метилтрансферазы Dnmt3a и Dnmt3b, необходимы, как оказалось, и для метилирования de novo, и для эмбрионального развития мыши. Инактивация соответствующих генов несовместима с развитием зародыша, блокирует реакцию de novo, но в то же время не оказывает влияния на поддерживающее метилирование импринтированных генов. Мишенями Dnmt3a и Dnmt3b являются, по-видимому, разные участки генома. Функции четвертого фермента Dnmt2 пока неясны.
