- •Учреждение образования «Международный государственный экологический университет имени а.Д.Сахарова»
- •Глава 1. Метилирование днк: методы исследования ……………..……........... 37
- •Введение
- •Список сокращений
- •Содержание
- •Раздел 1. Обзор литературы …………………………………………… 8-36
- •Глава 1. Метилирование днк у млекопитающих …………………………… 8-10
- •Глава 2. Метилирование днк: биохимия …………………………................ 13-18
- •Глава 3. Биологическое значение метилирования днк ……………………. 19-22
- •Глава 4. Роль метилирования днк в канцерогенезе ……………………….. 23-36
- •Раздел 2. Материал, методология и методики ………............ 37-45
- •Обзор литературы
- •1. Метилирование днк у млекопитающих
- •1.1 Метилирование днк: общие сведения
- •1.2 Метилирование днк генома млекопитающих
- •1.3 Распределение CpG динуклеотидов в геноме человека
- •1.6 Метилирование одиночных CpG-динуклеотидов
- •2. Метилирование днк: биохимия
- •2.1 Ацетилирование гистонов
- •2.3 Необходимость метилирования днк у эукариот
- •2.4 Dnmtl: днк-метилтрансфераза 1 белок и Dnmt3: днк-метилтрансфераза 3 белок
- •2.5 Метилирование генома как динамический процесс
- •2.6 Метилирование днк: влияние на структуру хроматина
- •3. Биологическое значение метилирования днк
- •3.1 Импринтинг: общебиологический аспект
- •3.2 Регуляция метилирования днк в эукариотических клетках
- •3.3 Метилирование днк во время эмбриогенеза
- •3.4 Регуляция экспрессии с помощью метилирования днк
- •4. Роль метилирования днк в канцерогенезе
- •4.1 Мутации метилированной днк
- •4.2 Региональное гиперметилирование в опухолях
- •4.3 Роль метилирования при канцерогенезе
- •4.4 Нарушения метилирования днк при канцерогенезе
- •4.5 Опухолевые клетки: свойства и метилирование днк
- •4.6 Метилирование CpG-островков в геноме опухлевых клеток
- •4.7 Полное гипометилирование генома и локальное гиперметилирование. Их роль. 5-МеС как эндогенный мутаген
- •4.8 Гены инактивированные метилированием в опухолях
- •Материал, методология и методики
- •1. Метилирование днк: методы исследования: общие сведения
- •1.1 Выделение днк
- •1.2 Бисульфитный метод и постановка амплификации. Определние гиперметилирования генов pten, mgmt, p16.
- •Заключение
- •Список использованных источников
3.3 Метилирование днк во время эмбриогенеза
Во время эмбриогенеза закономерно сменяют друг друга "волны" метилирования - деметилирования, в результате которых в конечном итоге устанавливается строго определенный рисунок метилирования конкретных генов и генома в целом. Он стабильно сохраняется в популяциях соматических клеток.
Так, на стадии 1-2-клеточных делений происходит тотальное деметилирование генома, устраняющее профиль, сформированный в исходных половых клетках. Оно продолжается до стадии имплантации бластоциста. Относительно природы этого процесса существуют две точки зрения.
Согласно гипотезе "активного деметилирования", остатки 5-метилцитозина удаляются из ДНК независимо от репликации благодаря активности обнаруженной в конце 90-х гг гликозилазы или ДНК-деметилазы. Последняя - весьма вероятный кандидат на роль агента, осуществляющего глобальное деметилирование генома.
Противоположная точка зрения заключается в том, что деметилирование генома в эмбриональном развитии - процесс пассивный, который сводится к подавлению сопряженного с репликацией так называемого "поддерживающего" метилирования. После имплантации бластоциста начинается процесс охватывающего весь геном метилирования (метилирование de поvо, профиль которого в целом сохраняется в соматических клетках взрослого индивидуума.
3.4 Регуляция экспрессии с помощью метилирования днк
В случае промоторов содержащих CpG островки, отсутствие метилирования, как правило, ассоциировано со структурой хроматина, характерной для активно транскрибируемых генов, а именно: открытая структура нуклеосом, пониженная концентрация гистона Н1 и наличие ацетилированных гистонов. Способность метилирования к выключению генов имеющих CpG островок в промоторе была исследована на примере инактивированных генов на Х-хромосоме.
Эксперименты по трансфекции показали, что инактивация происходит прежде всего в результате конденсации хроматина, формирующего структуру труднодоступную для транскрипционных факторов. В подобной ситуации метилирование конкретного цитозина, приводящее к нарушению связывания транскрипционного фактора в конкретном месте, играет незначительную роль. Существенно отличается от вышеописанной ситуация, когда в промоторе гена нет CpG островка. В этом случае метилирование каждого конкретного цитозина играет роль в регуляции экспрессии гена. Данное наблюдение объясняется зависимостью связывания транскрипционных факторов от наличия метилированных цитозинов в сайтах связывания. Этот феномен был описан для такого широко распространенного транскрипционного фактора как AP-2. Зависимость эффективности связывания от статуса метилирования была предположена и для Sp1, однако в этом случае данные остаются противоречивыми.
Другой механизм регуляции транскрипции на основании метилирования отдельных цитозинов базируется на активности метил связывающихся белков - MDBPs. Первый описанный белок этого семейства - MeCP1, описанный Мееханом с коллегами связывается в ДНК при наличии не менее 7-и метилированных CpG динуклеотидов, и поэтому не может играть важной роли в регуляции экспрессии генов, не имеющих CpG островка в промоторе. В отличие от MeCP1, MeCP2 (MDBP-2) достаточно единственного метилированного CpG динуклеотида для связывания и активного подавления транскрипции.
В дополнение к этим двум белкам Хендрих и Бёрд описали семейство белков с высокой степенью гомологии с MeCP2. Все белки этого семейства имеют ДНК связывающийся домен и домен, отвечающий за подавление транскрипции. Все эти данные в комплексе доказывают важность метилирования ДНК для регуляции транскрипции генов (см. Рис.2).
Рис.2. Метилирование ДНК, 5-метилцитозин (mC) и его дезаминирование, приводящее к нуклеотидным заменам, р – остаток фосфорной кислоты. Репликация ДНК при отсутствии ДНК-метилтрансферазы приведёт к «пассивному» деметилированию [1].
