- •Ветеринарна мікробіологія Змістовний модуль «морфологія мікроорганізмів»
- •Робота №1 обладнання і методи роботи в мікробіологічній лабораторії
- •Робота №2. Культуральні ознаки мікроорганізмів.
- •Культура мікроорганізмів
- •Т верде поживне середовище Рідке поживне середовище
- •Ознаки колоній .
- •Ознаки мікробних колоній
- •Ознаки росту мікробів на рідких середовищах
- •О чищення предметного скла від жиру проводиться
- •Методи виготовлення живих препаратів
- •Робота №3 методики мікроскопічних досліджень. Виготовлення живих препаратів
- •Робота №4 дослідження фарбованих препаратів. Виявлення структур мікробних клітин за допомогою простого фарбування
- •Методика виготовлення фіксованих препаратів.
- •Способи фіксації
- •Методика фарбування простим методом
- •Робота №5 Виявлення будови клітинної стінки мікроорганізмів. Класичний спосіб фарбування за Грамом та його модифікації.
- •Фактори, що впливають на якість фарбування за Грамом
- •Робота №6 виявлення структур бактерій. Фарбування оболонок кислотостійких мікроорганізмів
- •Виявлення ендоспор
- •Виявлення капсул
- •Тематичний словник з мікробіології тема „морфологія мікроорганізмів” перелік термінів з теми "Морфологія мікроорганізмів".
- •Органоїди мікробних клітин
- •Особливості морфології прокаріотних мікробних клітин
- •Особливості морфології еукаріотних мікробних клітин
- •Тема: "Морфологія мікроорганізмів".
- •Бактеріофаги – віруси, що спричиняють лізис (див.Лізис, тема “Вплив факторів середовища на мікроорганізми”) бактеріальної клітини. Б. Мають високу специфічність по відношенню до бактерій.
- •Екзоспоріум – тонка ліпопротеїнова оболонка навколо спор деяких бацил.
- •Корінебактерії – тип бактерій, які нагадують мікобактерії (див.Мікобактерії), але відрізняються від них утворенням потовщень на кінцях та зерен-включень у цитоплазмі (дифтерійна паличка).
- •Нанометр – одиниця вимірювання мікроорганізмів, що дорівнює 10-9 м.
Фактори, що впливають на якість фарбування за Грамом
Бактеріальна плівка, нанесена на предметне скло, повинна бути тонкою (моношар клітин). Клітини або їх типові скупчення повинні бути розміщені в препараті на значній відстані.
Найкращі результати можна отримати, якщо проводити фарбування молодих культур (24-48 год). В особливих випадках одночасно готують препарати з культур різного віку: 6-8 годин, 12-24 години, 48 годин. Для запобігання можливим помилкам, фарбування невідомих мікробних культур треба проводити разом із відомими грампозитивними або грамнегативними мікроорганізмами (контроль).
На якість готових препаратів впливає методика підготовки препарату для фіксації. Суспензія мікроорганізмів повинна готуватись на дистильованій воді, а не на фізіологічному розчині. Фіксація повинна здійснюватись тільки на пальнику, але проводитись обережно (без тривалого прожарювання).
Фарбування повинно починатись тільки після охолодження препарату.
Наявність йодної кислоти (НJО4), яка утворюється в розчині Люголя під дією світла і тепла, робить його непридатним для фарбування. Даний розчин потрібно зберігати в прохолодному місці, у флаконі з темного скла. При появі кислої реакції додавати Na2СО3.
Найкращім знебарвлювачем є ацетон або суміш ацетон+спирт.
Результат:_____________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________
Робота №6 виявлення структур бактерій. Фарбування оболонок кислотостійких мікроорганізмів
Будова оболонок деяких мікробних клітин така, що вони погано взаємодіють з кислотами. До таких – кислотостійких – мікроорганізмів належать актиноміцети, мікобактерії та деякі бактерії, споріднені із ними, а також – бацилярні клітини з ендоспорами. Самим відомим методом для виявлення кислотостійких мікроорганізмів в патологічному матеріалі є метод фарбування Циля-Нільсена (табл.9.
Табл. 9 Реактиви для фарбування за методом Циля-Нільсена
Спосіб фіксації |
Розчини для фарбування |
|
Кольорові розчини |
Розчини для знебарвлення |
|
Мазок з мокроти висушується на повітрі. Фіксується жаром |
Карболфуксиновий барвник: 0,3 г фуксину розчиняють у 10 мл 95% етанолу, додають 5 мл фенолу, розчиненого у 95 мл дистильованої води. Метиленовий синій : 0,3 г солянокислої солі метиленового синього розчиняють у 100 мл дистильованої води. |
|
Послідовність фарбування мазка для виявлення кислотостійких мікроорганізмів представлена на схемі.
1 |
На фіксований препарат наносять карболфуксиновий барвник (фуксин Циля). Нагрівають на пальнику (без кипіння!). На мазок також можна накладати папірець, просочений барвником. В такому випадку мазок змочують Н2О. Результат: Всі клітини препарату фарбуються в червоний колір |
|
|
2 |
Охолоджують, промивають слабким струменем води |
|
|
3 |
Плівку поміщають в знебарвлюючий розчин, промивають водою. 1.Операції повторюють до тих пір, поки плівка не буде блідо-рожевого кольору або жовтуватого кольору
Результат: Нестійки до кислот мікроби при взаємодії з розчином НС1 або Н2SО4 знебарвлюються |
|
|
4 |
Дофарбовують мазок 2-3 хв в розчині метиленового синього за Лефлером. Промивають водою. Підсушуюють фільтрувальним папером. Результат: Додатковий барвник фарбує знебарвлені клітини в синій колір. При мікроскопії – кислотостійки бактерії – червоні, всі інші – сині. |
Рис. Стадії роботи при проведенні фарбування за Цилем-Нільсеном
