- •Методические указания
- •Режим работы в бактериологической лаборатории.
- •Знакомство с иммерсионным микроскопом.
- •Упражнение в микроскопии на готовых препаратах с применением
- •Правила обращения с культурами микробов.
- •Приготовление препарата-мазка и его фиксация. Окрашивание мазка.
- •Основные преимущества и принципы контрастирования
- •Бактериоскопическое исследование препарата «раздавленная капля» и микропрепаратов контрастированных методами негативной окраски по Бурри, позитивной - фуксином.
- •Контрольные вопросы
- •Приложение к занятию 1
- •Определение понятий "микроорганизмы" и "вид"
- •Занятие № 2
- •План занятия
- •Методические указания
- •1. Микроскопические методы исследования
- •1.1. Электронная микроскопия
- •1.2. Фазовоконтрастная микроскопия
- •1.3. Метод люминесцентной микроскопии
- •1.4. Метод микроскопии в темном поле
- •2. Морфология микроорганизмов
- •2.1. Морфология бактерий
- •2.3. Наблюдение подвижности бактерий в препарате "висячая капля"
- •3. Сложные методы окраски микробов в изучении их структуры
- •3.1. Изучение структуры клеточной стенки бактерий, окраска по Граму
- •3.2. Включения у бактерий. Демонстрация препарата
- •3.3. Капсула бактерий, бактериоскопическое исследование препарата-мазка из культуры палочки Фридлендера окрашенного по методу Бурри-Гинса
- •Контрольные вопросы
- •Занятие № 3
- •План занятия
- •Методические указания.
- •Способы стерилизации и дезинфекции лабораторной посуды и
- •Определить по готовым посевам антибактериальное действие
- •Бактериологическое изучение антибактериального действия спирта,
- •Тестовый контроль по теме: «стерилизация и дезинфекция»
- •Знакомство с питательными средами, применяемыми для выращивания бактерий
- •Изучение характера роста бактерий на плотных и жидких питательных средах (культуры бактерий на мпа в чашках Петри и в пробирках, а также на мпб)
- •Пигменты бактерий. Демонстрация пигментных культур
- •Исследование смеси бактерий. Бактериоскопия смеси и посев ее на пластинки мпа с целью получения изолированных колоний
- •Контрольные вопросы
- •Приложение к занятию № 3
- •Занятие № 4
- •План занятия
- •Методические указания
- •1. Изучение физиологии микроорганизмов, классификации бактерий по типу дыхания и отношению к температуре. Знакомство с термостатом
- •Освоение техники пересева бактериальных культур с пластинок мпа на косячок мпа, с косячков мпа на косячок и пластинки мпа с помощью
- •Исследование смеси бактерий (продолжение). Макро- и микроскопия
- •Знакомство с составом дифференциально-диагностических питательных сред: Плоскирева, Эндо, Левина и др., особенностями роста различных
- •Изучение биохимической (ферментативной) активности бактерий.
- •Контрольные вопросы
- •Приложение к занятию № 4
Приложение к занятию № 4
Классификация бактерий по типу дыхания:
Аэробы – бактерии, использующие в качестве конечного акцептора электронов в дыхательной цепи молекулярный кислород (пример: псевдомонады).
Факультативные анаэробы – в качестве конечного акцептора электронов могут использовать, как молекулярный кислород, так и другие вещества. О2 не является лимитирующим фактором (пример: стафилококк).
Микроаэрофилы – нуждаются в сниженном парциальном давлении О2. Большинство патогенных микроаэрофилов при этом требовательны к повышенной концентрации СО2 (5 – 10 %), их принято называть капнофилами (например, стрептококки полости рта).
Анаэробы – бактерии, для которых О2 токсичен. По чувствительности к О2 различают облигатные анаэробы - О2 вызывает немедленную гибель, аэротолерантные не размножаются в присутствии кислорода, но и не погибают (клостридии возбудители столбняка и газовой гангрены).
Классификация бактерий по температуре роста:
Термофилы (thermos - теплый filein - любить) оптимум составляет 50 – 600С, минимум 350, максимум 70 – 750 С.
Мезофилы (mesos - средний) оптимум составляет 30 – 370 С, минимум 100 С, максимум 40 – 450 С.
Психрофилы (psichros - холодный) оптимум составляет 15 – 200 С, минимум 00С, максимум 30 – 350 С.
Для выращивания возбудителей микозов наиболее часто используют температурный режим в пределах 20 – 250 С.
Изучение биохимической активности бактерий, среды «пестрого ряда».
Биохимическая активность многих видов бактерий является стабильным и уникальным признаком, в связи с чем, биохимические свойства входят в стандартное бактериологическое исследование. В большинстве случаев, если не нужны дополнительные исследования посев выделенной от больного культуры проводят на среды короткого «пестрого ряда», для этого используют 4 пробирки со средами Гисса, позволяющие изучить сахаралитическую активность. Состав сред Гисса: питательная основа МПБ, к которому добавлен 1 % соответствующего углевода (глюкоза; лактоза; манит, многоатомный спирт; сахароза), индикатор Андреде (карболовый фуксин Циля, нейтрализованный едким натром до полного обесцвечивания), для выявления кислых продуктов расщепления углеводов и стеклянная трубочка, запаянная с одного конца – поплавок. При расщеплении углевода с образованием кислоты цвет среды из желтого меняется в красный, кислоты и газа – цвет красный в поплавке пузырьки газа.
Для изучения протеолитических и морфологических свойств «пестрый ряд» дополняют:
5 пробирка – МПБ, для выявления характера роста культуры (пленка, осадок, помутнение), и газообразных продуктов расщепления аминокислот, для этого под пробку над бульоном закрепляют для определения индола – фильтровальную бумагу, пропитанную щавелевой кислотой, при положительной реакции (после инкубации, которая обычно длиться 24 часа) - краснеет; для определения сероводорода используют фильтровальную бумагу пропитанную ацетатом свинца при положительной реакции - чернеет, на аммиак – лакмусовая бумага при положительной реакции синеет.
6 пробирка – полужидкий агар Пешкова, для определения подвижности см. рис. 9 во втором занятии.
7 пробирка молоко для определения наличия у бактерий молочно-сычужного фермента, при положительной реакции происходит створаживание.
8 пробирка – скошенный агар – для поддержание чистой культуры, обязательное требование бактериологического метода поддержание чистой культуры на всех этапах исследования до постановки окончательного диагноза.
Помимо общепринятых сред, в состав "пестрого ряда" нередко включаются среды с другими углеводами, а также среда для определения уреазы - фермента, расщепляющего мочевину. Среда представляет собой МПБ с добавлением 1 – 2 % мочевины и индикатора фенолового красного. При разложении мочевины образуется аммиак, вызывающий изменение рН среды, и соответственно желтый цвет индикатора меняется на красный. Для изучения протеолитических свойств, достаточно часто так же используют пробирку со столбиком желатина.
