- •Методические указания
- •Режим работы в бактериологической лаборатории.
- •Знакомство с иммерсионным микроскопом.
- •Упражнение в микроскопии на готовых препаратах с применением
- •Правила обращения с культурами микробов.
- •Приготовление препарата-мазка и его фиксация. Окрашивание мазка.
- •Основные преимущества и принципы контрастирования
- •Бактериоскопическое исследование препарата «раздавленная капля» и микропрепаратов контрастированных методами негативной окраски по Бурри, позитивной - фуксином.
- •Контрольные вопросы
- •Приложение к занятию 1
- •Определение понятий "микроорганизмы" и "вид"
- •Занятие № 2
- •План занятия
- •Методические указания
- •1. Микроскопические методы исследования
- •1.1. Электронная микроскопия
- •1.2. Фазовоконтрастная микроскопия
- •1.3. Метод люминесцентной микроскопии
- •1.4. Метод микроскопии в темном поле
- •2. Морфология микроорганизмов
- •2.1. Морфология бактерий
- •2.3. Наблюдение подвижности бактерий в препарате "висячая капля"
- •3. Сложные методы окраски микробов в изучении их структуры
- •3.1. Изучение структуры клеточной стенки бактерий, окраска по Граму
- •3.2. Включения у бактерий. Демонстрация препарата
- •3.3. Капсула бактерий, бактериоскопическое исследование препарата-мазка из культуры палочки Фридлендера окрашенного по методу Бурри-Гинса
- •Контрольные вопросы
- •Занятие № 3
- •План занятия
- •Методические указания.
- •Способы стерилизации и дезинфекции лабораторной посуды и
- •Определить по готовым посевам антибактериальное действие
- •Бактериологическое изучение антибактериального действия спирта,
- •Тестовый контроль по теме: «стерилизация и дезинфекция»
- •Знакомство с питательными средами, применяемыми для выращивания бактерий
- •Изучение характера роста бактерий на плотных и жидких питательных средах (культуры бактерий на мпа в чашках Петри и в пробирках, а также на мпб)
- •Пигменты бактерий. Демонстрация пигментных культур
- •Исследование смеси бактерий. Бактериоскопия смеси и посев ее на пластинки мпа с целью получения изолированных колоний
- •Контрольные вопросы
- •Приложение к занятию № 3
- •Занятие № 4
- •План занятия
- •Методические указания
- •1. Изучение физиологии микроорганизмов, классификации бактерий по типу дыхания и отношению к температуре. Знакомство с термостатом
- •Освоение техники пересева бактериальных культур с пластинок мпа на косячок мпа, с косячков мпа на косячок и пластинки мпа с помощью
- •Исследование смеси бактерий (продолжение). Макро- и микроскопия
- •Знакомство с составом дифференциально-диагностических питательных сред: Плоскирева, Эндо, Левина и др., особенностями роста различных
- •Изучение биохимической (ферментативной) активности бактерий.
- •Контрольные вопросы
- •Приложение к занятию № 4
1.2. Фазовоконтрастная микроскопия
Фазовоконтрастная микроскопия имеет преимущество перед световой микроскопией при изучении неокрашенных препаратов, делая их более контрастными. Окрашенные препараты поглощают часть проходящего через них света, в результате чего амплитуда световых волн снижается, и частицы препарата выглядят темнее фона. При прохождении света через неокрашенный препарат амплитуда световых волн не меняется, происходит лишь изменение фазы световых волн, прошедших через частицы препарата. Человеческий глаз улавливать изменение фазы света неспособен, поэтому неокрашенный препарат при правильной установке освещения в обычном микроскопе будет невидим.
Фазоконтрастное устройство позволяет превратить изменение фазы лучей, прошедших через частицы неокрашенного препарата, в изменения амплитуды, воспринимаемые человеческим глазом и, таким образом, позволяет сделать отчетливо видимыми неокрашенные препараты.
Приспособление для фазовоконтрастной микроскопии включает в себя конденсор с набором кольцевых диафрагм, обеспечивающих освещение препарата полным конусом света, и фазовоконтрастные объективы, которые отличаются от обычных тем, что в их главном фокусе располагается полупрозрачная фазовая пластинка в виде кольца, вызывающая сдвиг фазы проходящего через нее света. Установка освещения производится таким образом, чтобы весь свет, прошедший через кольцевидную диафрагму конденсора, прошел в дальнейшем через расположенное в объективе фазовое кольцо.
При рассмотрении препарата весь свет, прошедший через участки препарата, в которых нет каких-либо объектов, пройдет через фазовое кольцо и даст светлое изображение фона. Свет, прошедший через имеющиеся в препарате частицы, например, бактериальные клетки, получит некоторые изменение фазы и, кроме того, разделится на два луча - недифрагированный и дифрагированный. Недифрагированный свет пройдет в дальнейшем через кольцевидную фазовую пластинку в объективе и получит дополнительный сдвиг фазы. Дифрагированные лучи пройдут мимо фазовой пластинки, и их фаза не изменится. В плоскости полевой диафрагмы окуляра произойдет интерференция дифрагированного и недифрагированного лучей. Так как эти лучи идут в разных фазах, произойдет их взаимное частичное гашение и уменьшение амплитуды. Благодаря этому микробные клетки будут выглядеть на светлом фоне темными.
1.3. Метод люминесцентной микроскопии
Люминесцентная микроскопия основана на способности некоторых веществ светиться под действием коротковолновых лучей света. При этом длина волны излучаемого при люминесценции света всегда будет больше, чем длина волны света, возбуждающего люминесценцию. Так, если освещать объект синим светом, то он будет испускать лучи красного, оранжевого, желтого или зеленого цветов.
Препараты для люминесцентной микроскопии окрашивают специальными (светящимися) люминесцентными красителями - флуорохромами (например, раствор акридинового оранжевого 1:5000 - 1:10000). Лучи света от сильного источника (обычно ртутной лампы сверхвысокого давления) пропускаются через сине-фиолетовый фильтр. Под действием этого коротковолнового излучения, окрашенные акридиновым оранжевым бактерии, начинают светиться красным или зеленым светом. Для того чтобы синий свет, вызывающий люминесценцию, не мешал наблюдению, над окуляром микроскопа ставят "запирающий" желтый светофильтр, задерживающий синие, но пропускающие желтые, зеленые и красные лучи.
В результате, при наблюдении в микроскопе на темном фоне будут видны микробные клетки, светящиеся желтым, зеленым или красным цветом. При окраске акридиновым оранжевым дезоксирибонуклеиновая кислота (ядерное вещество) будет светиться ярко-зеленым цветом, а находящаяся в цитоплазме рибонуклеиновая кислота - красным цветом.
Метод люминесцентной микроскопии позволяет изучать живые нефиксированные бактерии, окрашенные сильно разведенными растворами красителей, не причиняющих вреда микробным клеткам. По характеру свечения могут быть дифференцированы отдельные химические вещества, входящие в состав микробной клетки. Метод с большим эффектом может быть использован для ускорения диагностики ряда заболеваний.
Флуоресцирующими красителями можно обрабатывать диагностические сыворотки, содержащие антитела к определенным бактериям. Краситель, например, изотиоцианат флуоресцеина, химически соединяется с глобулинами иммунной сыворотки и таким образом как бы избирательно метит антитела.
Люминесцирующие сыворотки могут быть использованы для идентификации выделенных культур бактерии и для ускоренной индикации патогенных микробов во внешней среде и в выделениях больных.
Сущность иммунофлуоресцентного метода исследования заключается в том, что из исследуемого материала готовят мазок и после высушивания и фиксации обрабатывают его люминесцирующей сывороткой. При наличии в исследуемом мазке гомологичных бактерий, вследствие адсорбции на них меченных флуоресцирующим красителем антител, в люминесцентном микроскопе на темном фоне препарата обнаруживается яркое специфическое желто-зеленое свечение по периферии бактериальных клеток. Центральная часть клеток не светится. Присутствующие в препарате посторонние микробные клетки не светятся.
Демонстрация в люминесцентном микроскопе бактерий, обработанных акридиновым оранжевым и люминесцирующей сывороткой.
