- •Разработка люминесцентного метода выявления эндоспор у бактерий
- •«Вятский государственный университет» (фгбоу впо «ВятГу»)
- •Задание на дипломную работу
- •Календарный план работы
- •Реферат
- •Содержание
- •Введение
- •Обзор и анализ научно-технической информации
- •1 Роль спорообразующих бактерий в биотехнологии
- •2. Физиологические и морфологические изменения, сопровождающие споруляцию и прорастание спор
- •2.1 Условия и стадии споруляции
- •2.2 Свойства зрелых спор, прорастание спор
- •3 Споруляционные белки проспоры, споры и материнской клетки
- •4 Препараты фиксированных окрашенных клеток и спор микроорганизмов
- •4.1 Приготовление мазка и фиксация препарата
- •4.2 Методы, основанные на использовании для окраски эндоспор бактериологических красителей
- •4.2.1 Метод Циля-Нильсена
- •4.2.2 Метод Ожешко
- •4.2.3 Метод Шеффера-Фултона
- •4.3 Способы негативного окрашивания эндоспор
- •4.4 Прижизненное выявление эндоспор при помощи фазово-контрастной микроскопии
- •4.5 Методы люминесцентной окраски эндоспор
- •5. Выводы по обзору научно-технической и патентной информации
- •Техническое и социально-экономическое обоснование темы. Задачи дипломной работы
- •Основная часть
- •1 Материалы и методы
- •1.1 Микробные тест-культуры
- •1.2 Питательные среды, растворы и реактивы
- •1.3 Оборудование и приборы
- •1.4 Методы исследований
- •2 Разработка люминесцентного метода выявления эндоспор
- •2.1 Изучение диагностической эффективности известных методов окраски эндоспор
- •2.2 Разработка люминесцентного метода выявления эндоспор
- •2.3 Сравнение диагностической эффективности методов окраски эндоспор бактериологическими красителями и разработанного метода
- •3 Выводы по разделу
- •1 Структура декомпозиции работ по уровням
- •2 Организационная структура проекта
- •3 Ресурсы
- •4 Таблицы назначений ресурсов по операциям
- •5 Расчет стоимости операций
- •6 Бюджет затрат
- •7 Выводы по разделу
- •Безопасность жизнедеятельности
- •1 Экологическое обоснование темы дипломной работы
- •2 Свойства применяемых реактивов и препаратов
- •3 Потенциальные опасности при выполнении экспериментальной части работы
- •4 Разработка мероприятий по безопасному проведению работ
- •4.1 Организация рабочего места
- •4.2 Меры безопасности при работе с реактивами
- •4.3 Меры безопасности при работе со стеклянной посудой
- •4.4 Меры безопасности при работе с электроприборами
- •4.5 Меры безопасности при работе с микроорганизмами
- •4.6 Промышленные средства индивидуальной защиты
- •4.7 Первая доврачебная помощь при химических и термических ожогах
- •5 Производственная санитария
- •5.1 Санитарно-гигиеническая характеристика лаборатории
- •5.2 Метеоусловия
- •5.3 Отопление
- •5.4 Вентиляция
- •5.5 Освещение
- •5.6 Водоснабжение
- •5.7 Канализация
- •5.8 Пожарная профилактика
- •6. Выводы по разделу
- •Заключение
- •Приложение 1
- •Авторская справка
- •Приложение 2
- •Перечень принятых определений и терминов
- •Приложение 3
- •Перечень принятых обозначений и сокращений
- •Приложение 4
- •Люминесцентный метод окраски бактериальных эндоспор
- •Приложение 5
- •Приложение 6
- •Приложение 7
- •Список использованных источников
5. Выводы по обзору научно-технической и патентной информации
1. Спорообразующие бактерии имеют важное народно-хозяйственное и промышленное значение, поэтому представляется необходимым заниматься изучением жизненного цикла, спорообразования бактерий родов Bacillus и Clostridium. Одним из важных этапов исследования является обнаружение и изучение структуры и свойств эндоспор, при этом используются различные методы выявления эндоспор.
2. Споры и другие покоящиеся формы формируются у бактерий в процессе клеточной дифференцировки, направленной на выживание в неблагоприятных условиях.
3. Наиболее известными методиками окрашивания бактериальных эндоспор являются методики Циля-Нильсена, Ожешко и Шеффера-Фултона.
4. Данные способы окраски спор основаны на одном принципе. Сначала споры обрабатывают разными веществами – хромовой, соляной, серной, уксусной кислотами, аммиаком, едким натром или перекисью водорода в целях нарушения проницаемости споровых облочек, затем окрашивают клетку со спорой при нагревании, наконец, обесцвечивают цитоплазму и дополнительно окрашивают ее контрастными красителем.
Техническое и социально-экономическое обоснование темы. Задачи дипломной работы
С целью идентификации микроорганизмов в микробиологических лабораториях изучают не только форму и размеры бактериальной клетки, но и отдельные элементы ее структуры: цитоплазму, включения, нуклеотид, оболочку, капсулу, жгутики, споры. Бактериальные эндоспоры представляют собой покоящиеся формы клеток, в которых процессы жизнедеятельности сильно заторможены. Они имеют многослойную оболочку, содержат мало свободной воды и поэтому хорошо переносят различные неблагоприятные воздействия, губительные для вегетативных клеток. Современная бактериология располагает довольно обширным набором методов выявления эндоспор.
Целью данной работы является изучение особенностей наиболее известных методик окраски эндоспор и разработка люминесцентного метода выявления эндоспор, позволяющего получать наиболее информативные препараты. Для достижения поставленной цели необходимо:
изучить особенности наиболее известных методик окраски бактериальных эндоспор;
экспериментально установить степень влияния химических реактивов (фиксаторов, протрав, красителей) на результаты окрашивания;
на основании полученных результатов предложить метод окраски бактериальных эндоспор, основанный на использовании флюорохромов и люминесцентных микроскопов.
Основная часть
1 Материалы и методы
Экспериментальные исследования осуществляли с использованием следующих материалов, оборудования и методов.
1.1 Микробные тест-культуры
Bacillus cereus - грамположительная, спорообразующая бактерия. Хемоорганогетеротроф, факультативный анаэроб, способен к нитратредукции. Метаболизм бродильного или дыхательного типа. Обычно каталазоположительная [40]. Растёт на простых питательных средах, на плотных питательных средах образует плоские, мелкобугристые, слегка вогнутые, матовые колонии. Край волнистый. Клетки крупные 1×3-4 мкм, эндоспоры расположены центрально, не превышают размер клетки. Жгутики расположены перетрихиально. Вызывает пищевые токсикоинфекции у человека (включая рвотный и диарейный синдром), продуцирует энтеротоксины. Диарейный синдром (подобный токсикоинфекции, вызываемой Clostridium perfringens) вызывается высокомолекулярным пептидным токсином, тогда как рвотный синдром (подобный Staphylococcus aureus - ассоциированной токсикоинфекции) вызывается низкомолекулярным термостабильным токсином. Распространена повсеместно [41].
Bacillus thuringiensis - грамположительная, спорообразующая почвенная бактерия. Хемоорганогетеротроф, факультативный анаэроб. Оптимум роста - 29-32оС. Вегетативные клетки - крупные подвижные палочки с закругленными концами, расположенные одиночно, парами или цепочками [40]. Размер клеток (1,5-1,7)×(3,6-6,2) мкм [42]. Образуют термоустойчивую спору, расположенную субтерминально. В центре клетки располагается кристалл токсина, прокрашивающийся красителем анилиновым чёрным (систематический признак) На мясо-пептонном агаре через 1 сутки инкубации образуются округлые серовато-белые колонии диаметром 3-5 мм со слабоволнистым краем, матовой мелкозернистой поверхностью, пастообразной консистенцией. Через 3-5 суток колонии становятся серыми, гладкими, появляется прозрачная кайма по краю [43]. Клетки и специфический кристаллический белковый δ-эндотоксин проявляют инсектицидное действие по отношению ко многим насекомым. Используется в биозащите растений, при помощи гена эндотоксина (Cry-токсина) осуществлена трансформация растений и получены генетически модифицированные растения, устойчивые к поеданию вредителями [42].
Bacillus licheniformis - грамположительные, одиночные подвижные палочки размером 0,6-0,8 и 0,2-0,3 мкм, спорообразующие.
На мясопептонном агаре (t 40oC, 24 часа) штамм дает обильный рост; колонии неправильной формы с приподнятым центром, слизистые, гладкие, непрозрачные, 2-5 мм в диаметре с ровными краями, в начале роста - кремовые, затем - постепенно розовеющие [41].
На мясопептонном бульоне (t 40oC, 24 часа) также наблюдается обильный рост клеток, раствор становится мутным, к 24 часам роста появляется кремово-розовый оттенок [42].
По отношению к кислороду - аэроб. Температурный диапазон роста - 18-45oС. Оптимальная температура для роста - 40oС. Растет при значениях рН среды 5,0 - 10,0 [41].
Желатин разжижает. Крахмал и казеин быстро гидролизует. Восстанавливает лакмусовое молоко. Нитраты восстанавливает до нитритов. Образует тирозиназу (каталазоположительный), образует сероводород. Вызывает гемолиз. Сбраживает с образованием кислоты арабинозу, ксилозу, фруктозу, сахарозу, трегалозу, мальтозу, раффинозу, маннозу, маннит, сорбит, глицерин, декстрин, гликоген без выделения газа, глюкозу ферментирует анаэробно, утилизирует лимонную кислоту [43].
Регулярный контакт с бактериями этого вида естественен для человека, поскольку они на всех этапах эволюции присутствовали в воде, почве, продуктах питания и др [40].
