- •Введение
- •Химическая природа белка
- •1.1 Лабораторная работа 1. Биуретовая реакция
- •2 Приборы и материалы
- •3 Описание работы
- •4 Контрольные вопросы
- •1.2 Лабораторная работа 2. Нингидриновая реакция на α-аминокислоты
- •2 Приборы и материалы
- •3 Описание работы
- •4 Контрольные вопросы
- •1.5 Лабораторная работа 5. Ксантопротеиновая реакция
- •2 Приборы и материалы
- •3 Порядок проведения работы
- •1.3 Лабораторная работа 3. Реакция на первичную аминогруппу
- •1.4 Лабораторная работа 4. Реакция на тирозин (Миллона)
- •4 Контрольные вопросы
- •1.6 Лабораторная работа 6. Реакция на гистидин (Паули)
- •2 Приборы и материалы
- •3 Порядок проведения работы
- •4 Контрольные вопросы
- •1.7 Лабораторная работа 7. Реакция Фоля на серосодержащие аминокислоты
- •2 Приборы и материалы
- •3 Описание работы
- •4 Контрольные вопросы
- •1.8 Лабораторная работа 8. Реакция на триптофан
- •2 Приборы и материалы
- •3 Описание работы
- •4 Контрольные вопросы
- •1.9 Лабораторная работа 9. Реакция на аргинин (Сакагучи)
- •1.10 Лабораторная работа 10. Хроматографический метод определения аминокислот
- •2 Приборы и материалы
- •3 Описание работы
- •4 Оформление результатов работы
- •5 Контрольные вопросы
- •1.11 Лабораторная работа 11. Количественное определение белка по биуретовой реакции
- •2 Приборы и материалы
- •3 Описание работы
- •3.2 Определение количества белка
- •4 Оформление результатов работы
- •Физико-химические свойства белков
- •2.1 Лабораторная работа 12. Осаждение белков солями щелочных и щелочноземельных металлов
- •2.2 Лабораторная работа 13. Осаждение белков органическими растворителями
- •2 Приборы и материалы
- •3 Описание работы
- •4 Контрольные вопросы
- •2.3 Лабораторная работа 14. Осаждение белков солями тяжелых металлов
- •2 Приборы и материалы
- •3 Описание работы
- •4 Контрольные вопросы
- •2.4 Лабораторная работа 15. Осаждение белков минеральными кислотами
- •2 Приборы и материалы
- •3 Описание работы
- •4 Контрольные вопросы
- •2.5 Лабораторная работа 16. Осаждение белков органическими кислотами
- •2.6 Лабораторная работа 17. Осаждение белков при нагревании
- •2.7 Лабораторная работа 18. Количественное определение белка в культуральной жидкости
- •2 Приборы и материалы
- •3 Описание работы
- •4 Оформление результатов работы
- •5 Контрольные вопросы
- •2.8 Лабораторная работа 19. Высаливание белков
- •2 Приборы и материалы
- •3 Описание работы
- •4 Оформление результатов работы
- •5 Контрольные вопросы
- •3 Сложные белки
- •3.1 Лабораторная работа 20. Гидролиз нуклеопротеидов дрожжей
- •2 Приборы и материалы
- •3 Описание работы
- •4 Оформление результатов работы
- •5 Контрольные вопросы
- •3.2 Лабораторная работа 21. Бензидиновая проба на геминовую группировку гемоглобина
- •3.3 Лабораторная работа 22. Выделение гликопротеида из слюны
- •2 Приборы и материалы
- •3 Описание метода
- •3.4 Лабораторная работа 23. Нафтоловая проба на углеводную группировку гликопротеида (реакция Подобедова—Молиша)
- •Литература
- •Лабораторный практикум по химии белка
2 Приборы и материалы
Хроматографическая камера
Хроматографическая бумага
Электроплитка
Система растворителя - бутанол:уксусная кислота (конц.):вода в соотношении 3:1:1,4
Задача (раствор, содержащий смесь аминокислот)
Растворы аминокислот – «свидетелей» (глицин, лейцин, триптофан)
Раствор нингидрина в ацетоне 0,5 %.
3 Описание работы
Нанесение раствора на хроматографическую бумагу.
Из хроматографической бумаги вырезают диск диаметром 14 см. Диск перегибают по диаметрам, перпендикулярным друг к другу, и от центра круга чертят квадрат со стороной 2 см, далее делают надрез по диагоналям квадрата; полученные в виде уголков «ножки» отгибают. На расстоянии 0,5 см от линий сгиба «ножек» простым карандашом чертят еще один квадрат, на середине каждой стороны отмечают точки. В одну точку при помощи капилляра наносят небольшую каплю исследуемого раствора смеси аминокислот. Диаметр полученного пятна не должен превышать 3 – 4 мм. В три другие точки наносят растворы аминокислот-«свидетелей», входящих в исследуемую смесь. Рядом с точкой нанесения необходимо обозначить объект нанесения (задача, название аминокислоты-«свидетеля») простым карандашом. На одну и ту же точку следует наносить по 2 – 3 капли раствора, при этом после нанесения каждой капли бумагу слегка просушивают на воздухе и лишь затем наносят следующую каплю.
Разделение в хроматографической камере.
Просушенную на воздухе хроматограмму помещают между двумя половинами чашек Петри с одинаковыми диаметрами, образующими хроматографическую камеру, так, чтобы «ножки» хроматограммы были погружены в органический растворитель бутанол – вода – уксусная кислота (3:1,4:1), который наливают в нижнюю чашку. Хроматографическое разделение проводят при комнатной температуре около 40 минут. Необходимо следить за линией фронта растворителя.
Насыщенный водой бутиловый спирт в уксусной кислоте впитывается бумажным диском и движется по нему, увлекая нанесенные вещества. Дальнейшее продвижение растворителя вызывает разделение исследуемой смеси на отдельные аминокислоты, движущиеся с разной скоростью соответственно коэффициентам их распределения между водой и органическим растворителем.
Проявление хроматограммы.
После того как фронт растворителя пройдет 4/5 длины хроматограммы, хроматограмму извлекают из камеры, отмечают карандашом фронт растворителя и сушат на воздухе под тягой до удаления растворителя. После этого хроматограмму проявляют, опуская в 0,5 % раствор нингидрина в ацетоне, и помещают в сушильный шкаф на 5 мин при температуре 80— 100°С, также можно проявить хроматограмму, нагревая ее над электроплиткой. На хроматограмме появляются пятна сине-фиолетового цвета. С помощью линейки измеряют расстояния а – от места нанесения капли до середины каждого пятна и в – от места нанесения капли до фронта растворителя. Проявившиеся пятна обводят карандашом и вычисляют фактор Rf для каждой аминокислоты. Сопоставляя положения пятен исследуемого раствора с положением пятен «свидетелей», определяют наличие тех или иных аминокислот в исследуемой смеси.
