- •Содержание
- •Введение
- •Раздел 1 Молекулярный уровень организации живой материи Структура днк и рнк
- •Мутации.
- •Задание
- •Раздел 2 Факториальная экология
- •Задание
- •Раздел 3 Демэкология
- •Задание
- •Задание
- •Раздел 4 синэкология
- •Задание
- •Раздел 5 Аутэкология
- •5.1 Наземно-воздушная среда жизни и её абиотические факторы
- •Световой режим
- •Экологические группы растений по отношению к свету и их адаптивные способности
- •Экологические группы животных по отношению к свету и их адаптивные способности
- •Свет и биологические ритмы
- •Температурный режим
- •Температурные адаптации наземных растений
- •Температурные адаптации животных
- •Влажность
- •Адаптация растений к поддержанию водного баланса.
- •Экологические группы растений по отношению к воде
- •Водный баланс наземных животных
- •Воздух как экологический фактор для наземных организмов
- •5.2 Водная среда жизни и её абиотические факторы
- •Экологические зоны Мирового океана
- •Основные свойства водной среды (абиотические факторы)
- •Кислородный режим
- •Температурный режим водоемов
- •Световой режим водоемов
- •Некоторые специфические приспособления гидробионтов
- •5.3 Почва, как среда обитания и её абиотические факторы Особенности почвы
- •Обитатели почвы
- •5.4 Живые организмы как среда обитания
- •Биотические факторы среды
- •Отношения хищник- жертва, паразит- хозяин
- •Комменсализм
- •Мутуализм
- •Нейтрализм, аменсализм
- •Конкуренция
- •Раздел 6 учение о биосфере
- •6.1 Биогеохимические циклы основных химических элементов в биосфере
- •Круговорот азота
- •Круговорот кислорода
- •Круговорот углерода
- •Задание
- •Круговорот воды
- •Круговорот фосфора
- •Круговорот серы
- •6.2 Биотестирование и биомониторинг окружающей среды
- •Раздел 7 Лабораторные работы
- •7.1 Оценка состояния окружающей среды по наличию, обилию и разнообразию видов лишайников (лихеноиндикация)
- •Ход работы
- •7.2 Определение площади листьев у древесных растений в загрязненной и чистой зонах
- •Оборудование, материалы
- •Ход работы
- •7.3 Определение поражения и омертвления тканей листа при антропогенном загрязнении окружающей среды: а) по проценту пораженной ткани, б) по диагностике живых и мертвых тканей.
- •Оборудование, реактивы, материалы.
- •Ход работы. А). Вычисление процента пораженной ткани листа.
- •Б). Диагностика живых и мертвых тканей.
- •7.4 Определение состояния окружающей среды по комплексу признаков у хвойных
- •Оборудование и материалы
- •Ход работы
- •1. Изучение хвои
- •2 Изучение побегов
- •3 Изучение почек
- •7.5 Обследование состояния придорожных посадок древесных растений на центральных улицах города(1) ;в защитных зонах предприятий, работающих на органическом топливе (2)
- •Оборудование.
- •Ход работы.
- •7.6 Определение состояния окружающей среды в прошлые годы по радиальному приросту древесных растений
- •Оборудование, материалы
- •Ход работы
- •7.7 Методы биотестирования качества природных и сточных вод: а) с рачком дафния магния, б) с ряской и элодеей
- •А. Биотестирование с дафнией магна(Daphnia magna Strays)
- •Оборудование
- •Биология дафния магна
- •Культивирование дафний
- •Подготовка дафний к биотестированию.
- •Подготовка воды
- •Проведение эксперимента и оценка результатов.
- •Б) исследование воды с ряской и элодеей. Оборудование, материалы
- •Вопросы к экзамену
- •Раздел – «Демэкология»
- •2 Модуль
- •1 Раздел «Синэкология» Вариант 1
- •Вариант 2
- •Вариант 3
- •Вариант 4
- •Вариант 5
- •Вариант 6
- •Вариант 7
- •Вариант 8
- •Вариант 9
- •Вариант 10
- •Вариант 11
- •Вариант 12
- •Вариант 13
- •Вариант 14
- •Вариант 15
- •Вариант 16
- •Вариант 17
- •Вариант 18
- •Вариант 19
- •Вариант 20
- •Вариант 21
- •Вариант 22
- •Вариант 23
- •Вариант 24
- •Вариант 25
- •2 Раздел «Аутэкология» подраздел «Биотические факторы среды»
- •Раздел «Аутэкология» Подраздел «Абиотические факторы» Определите пути приспособления к абиотическим факторам среды, заполнив таблицу: (Общая для всех)
- •Теоретические вопросы для контрольной работы
- •Выбор варианта зададний для выполнения контрольной работы студенам заочного обучения
- •Образец титульного листа
- •Фгбоу во Волгоградский гау
- •Используемая литература
- •400002, Волгоград, проспект Университетский, 26
Подготовка дафний к биотестированию.
30-40 дафний с выводковыми камерами, полными яиц и зародышей, за 3-4 суток до тестирования пересаживают в 1-2- литровые емкости (стаканы, кристаллизаторы) с аквариумной водой, в которую перед посадкой вносят корм. После появления молоди (каждая самка может выметать от 10 до 40 молодых дафний) взрослых особей удаляют при помощи стеклянной трубки, а однодневную молодь используют для биотестирования. Необходимое для тестирования одной пробы с одним контролем в трехкратной повторности потребуется 60 дафний ( в каждый сосуд для тестирования помещают по 10 рачком).
Для более точных токсикологических опытов используют поколение от одной самки, чем обеспечивается генетическая однородность материала и максимально исключается возможность разброса полученных данных за счет индивидуальной изменчивости. 3-5 одновозрастных половозрелых самок отсаживают по одной в стаканы с водой на 200-250 мл, куда вносят корм. После появления молоди берут рачков 2-4 летнего возраста из стакана, в котором их появилось больше и переносят в емкость на 2-5 л , где производят дальнейшее культивирование. Для опытов используют второй помет. Плотность посадки такая же, как и для взрослых дафний (20-25 рачков на 1 л воды).
Подготовка воды
Для культивирования дафний, приготовления рабочих растворов, разведения сточной воды и для контроля рекомендуется вода средней жесткости(2,5-5,3 экв/л) с нейтральной реакцией среды(рН=7) из чистого пресного водоема. Воду наливают в стеклянный сосуд и выдерживают три дня при комнатной температуре, аэрируя при помощи аквариумного компрессора.
Водопроводная вода подвергается химической обработке- содержит коагулянты, свободный хлор и др. Для удаления хлора и других примесей, помимо отстаивания, воду надо пропустить через гранулированный активированный уголь, используя стеклянную широкогорлую трубку высотой в 1 м. После этого воду 2-3 суток аэрируют аквариумным компрессором. В воду можно культуру хлореллы или одноклеточных водорослей. Затем воду отстаивают, профильтровывают, выдерживают в аквариуме с рыбами. В результате получается вода удовлетворительного качества.
Проведение эксперимента и оценка результатов.
Наливают в химические стаканы сточную воду до прохождения через очистные сооружения и после (по 200 мл в трехкратной повторности). Контроль-очищенная или аквариумная вода. В каждый стакан помещают по 10 рачков в возрасте 2-4 суток. Для этого пипеткой с широким концом дафний отлавливают из сосуда, где они выращивались, и помещают на часовое стекло. Тонкой пипеткой отсасывают воду со стекла и дафний смывают в приготовленный стакан, используя жидкость из этого же стакана. Дафний сначала помещают в контрольные, а затем в опытные стаканы, начиная с наименьшей концентрации. При проведении опыта их не кормят.
По истечении 1,2,4,8,24,48 часов снимают результаты опытов, учитывая при этом число живых особей, их поведение, степень наполнения кишечника пищей, количество сброшенных эфипиумов. Те животные, которые в течение нескольких секунд после легкого встряхивания стакана не начинают двигаться вновь, считаются погибшими, несмотря на то, что у них могут двигаться антенны.
При осмотре стаканов погибших дафний удаляют пипеткой, начиная с наименее концентрированного раствора, после чего пипетку тщательно моют. Для контроля должна быть отдельная пипетка.
Если гибель дафний в контроле превышает 10%, то опыт повторяют.
При отмирании 50% особей концентрация считаются сильно токсичной и обозначается ЛК50. При гибели 100% особей концентрация считается летальной (ЛК100). Минимальная концентрация, при которой организмы не гибнут, обозначается ЛК0.
Если за период наблюдений гибель дафний не наблюдается даже в неразбавленной воде, значит острой токсичностью она обладает. При гибели 20% особей концентрация уже считается вредной.
В результате опытов можно получить ответы на следующие вопросы:
1. Является ли испытуемое вещество или сточная вода остротоксичнцыми?
2. Каким должно быть разбавление сточной воды или какой должна быть концентрация вещества, чтобы исчезла острая токсичность
