- •II часть
- •1.Миниатюризация
- •1.1.Мотивация проведения исследований в области нт
- •1.2.Планы и стратегия развития
- •1.3.Границы изменения масштабов
- •1.4.Связь размеров структур с их функциональностью
- •1.4.1.Распределение атомов и связанные с этим свойства
- •1.4.2.Отношения величина - свойства
- •2.1.Введение
- •4 Связь размеров структур с их функциональностью
- •2.2.Биологические строительные блоки
- •2.2.1. Размеры строительных блоков и наноструктуры
- •2.2.2.Основные объекты нанобиотехнологии
- •2.2.3.Строительные блоки.Синтетические и биологические.
- •2.3.Принципы самосборки
- •2.3.1.Нековалентные взаимодействия
- •2.3.2.Межмолекулярная упаковка
- •2.3.3.Биологическая самосборка
- •2.4.1.Самосборка (Другой источник информации): Понятия и определения
- •2.4.2.Типы межмолекулярных взаимодействий
- •2.4.3.Измерение свойств веществ в наномировом масштабе.
- •3.Нанобиотехнология
- •3.1.Проблемы определения используемых понятий
- •3.2.Технологии типа от нано к био
- •3.3.Технологии типа от био к нано
- •3.4.Нанобиотехнология и молекулярные устройства
- •3.4.1.Общие вопросы
- •3.1. Основные направления развития биотехнологии
- •3.4.2. Молекулярные устройства.3.4.2.1. Общие вопросы
- •3.4.2.2.Молекулярные пинцеты
- •4.4.2.3.Ротаксаны и катенаны
- •4.4.2.4.Вращательное движение
- •4.4.2.5.Возвратно-поступательное движение
- •4.4.2.6.Схемы сборки путем нанизывания кольцевых молекулярных
- •4.Биотехнология, медицина и здравоохранение
- •4.1. Состояние исследований и разработок
- •4.2. Цели, проблемы и решения
- •4.3. Инфраструктура, стратегия и приоритеты
- •4.4. Достижения и новые парадигмы
- •4.4.1. Изучение особенностей биологических систем
- •4.4.2. Нанонаука и нанотехнология в процессах создания биологических тканей (тканевая инженерия)
- •4.4.3. Биологическое детектирование боевых отравляющих веществ
- •4.4.4. Флуоресцентные биологические метки на основе полупроводниковых нанокристаллов
- •4.5.5. Нанотехнология изготовления днк-чипов
- •4.5.Иомиметические нанотехнологии
- •4.5.1. Днк как строительный материал нанотехнологий
- •4.5.1.1. Направленная сборка с помощью днк
- •4.5.1.2. Днк как шаблон для молекулярной электроники
- •4.5.1.3. Моторы и наномашины на основе днк
- •4.5.2.1. Действие биологических моторов
- •4.5.2.2. Биологические моторы как часть синтетических систем
- •4.5.3. Искусственный фотосинтез
- •4.7. Использование наноустройств в космических исследованиях
- •5.2.1.Основные технические характеристики микроскопа "supra 60vp"
- •5.3. Сканирующая зондовая микроскопия
- •5.3.1. Общие принципы сканирующей зондовой микроскопии
- •5.4.Сканирующая зондовая микроскопия
- •5.5.Сканирующая туннельная микроскопия
- •5.7.Атомно-силовые измерения в биологических системах
- •6. Технология рекомбинантных днк
- •6.1.Векторы для Escherichia coli
- •6.2.Идентификация клонированных днк
- •6.3.Экспрессия эукариотических белков в е. Coli
- •6.4. Генетическая инженерия с участием других клеток-хозяев
- •6.5.Получение инсулина на основе методов генетической инженерии
- •6.6.Синтез соматотропина
- •6.7.Получение интерферонов
- •6.8.Генная инженерия растений
- •6.8.1.Получение трансгенных растений
- •6.8.1.6.Применение методов генетической инженерии для улучшения аминокислотного состава запасных белков растений
- •6.8.1.7.Повышение эффективности процесса фотосинтеза
- •6.8.1.8.Генно-инженерные подходы к решению проблемы усвоения азота
- •6.8.1.9.Устойчивость растений к фитопатогенам
- •6.8.1.10.Устойчивость растений к гербицидам
- •6.8.1.11.Устойчивость растений к насекомым
- •6.8.1.12.Устойчивость растений к абиотическим стрессам
- •6.9.1.Типы питания микроорганизмов
- •6.9.2.Типы энергетического обмена у микроорганизмов
- •6.9.3.Питательные среды для культивирования микроорганизмов
- •6.9.4.Источники углерода
- •6.9.5.Источники азота
- •6.9.6.Источники витаминов, гормонов и микроэлементов
- •6.9.7.Биохимические и биофизические факторы роста
- •6.9.8.Конструирование питательных сред для выращивания микроорганизмов
- •6.9.9.Технология приготовления питательных сред
- •6.9.10.Пастеризация как вариант термической стерилизации
- •6.9.11.Стерилизация фильтрацией
- •6.9.12Особенности культивирования эукариотических клеток в качестве продуцентов.
- •10. Что такое паспорт культуры?
- •1. Каковы причины введения международных правил в фармацевтическую практику?
- •9. Экобиотехнология
- •9.1. Введение
- •9.2. Состояние исследований и разработок
- •9.3. Цели, проблемы и решения
- •9.4. Инфраструктура, стратегия и приоритеты
- •9.5. Достижения и новые парадигмы
- •9.6.Биотехнология утилизации твердых отходов.
- •9.6.1. Биотехнология утилизации твердых отходов
- •9.6.2.Биотехнология очистки сточных вод
- •9.7.Биоэнергетика
- •9.8. Ксенобиотики и их биодеградация
6.9.10.Пастеризация как вариант термической стерилизации
В случае спорообразующих микроорганизмов, однако, однократного прогрева питательной среды даже при довольно высоких температурах часто оказывается недостаточно, поскольку споры микроорганизмов обладают исключительно высокой термостабильностью. Для предотвращения контаминации питательных сред спорообразующими микроорганизмами используют метод пастеризации, получивший свое название от имени выдающегося французского ученого второй половины прошлого века Луи Пастера, одного из основателей современной микробиологии. Сущность этого метода заключается в том, что среду прогревают при относительно невысокой температуре -около 60 °С, затем охлаждают. Данный цикл повторяют несколько раз. Вегетативные формы микроорганизмов в большинстве случаев (за исключением термофилов) погибают в этих условиях, а споры остаются жизнеспособными. После охлаждения стерилизуемой среды до нормальной для роста температуры споры прорастают и микроорганизмы переходят в стадию вегетативной культуры, после чего повторное прогревание вызывает их гибель. Повторяя такой цикл несколько раз, добиваются прорастания всех спор, содержащихся в среде, что и обеспечивает полную инактивацию присутствующих в приготовленной среде микроорганизмов.
6.9.11.Стерилизация фильтрацией
Часто приходится использовать питательные среды сложного состава, содержащие высокотермолабильные компоненты, не выдерживающие термической стерилизации. Даже глюкоза при высокой температуре претерпевает химические изменения -«карамелизуется». Раствор при этом темнеет из-за образования полимерных продуктов распада. Ясно, что в таких случаях необходимо использовать щадящие методы стерилизации, одним из которых является фильтрация.
Фильтрация как способ стерилизации известна со времен Пасте-ра. Часто использовались неглазурованные фарфоровые фильтры (свечи Шамберлана), в настоящее время в лабораториях применяют фильтр Беркефельда (из прессованного кизельгура), асбестовые пластины (в фильтрах Зейтца), стеклянные фильтры и мембранные фильтры. Последние изготавливаются из специально сконструированных материалов и наиболее широко применяются в промышленности для стерилизации больших объемов растворов. Современная технология изготовления мембран доведена до весьма высокого уровня и позволяет создавать мембраны с заданным размером пор и достаточно узким распределением этих размеров. Стерилизующая фильтрация является одним из процессов так называемой мембранной технологии, которая используется не только для стерилизации, но и для фракционирования сложных смесей, с чем мы познакомимся в дальнейшем более подробно.
Помимо упомянутых выше для стерилизации питательных cpej используются радиационные методы - облучение ультрафи: летовым светом, рентгеновскими и гамма-лучами. Такое облучен! приводит к гибели как вегетативных клеток, так и спор. Наиболе мягкое из этих видов облучения - ультрафиолетовое (с длино волны 254 нм - излучение паров ртути) - вызывает инактивацию главным образом, нуклеиновых кислот, что при достаточж) длительном воздействии приводит к гибели микробных клеток i спор, не вызывая модификации важных ростовых компонент питательных сред.
Для стерилизации питательных сред используют также химические методы - обработки
В-пропиолактоном; диэтилпирокарбонатом, окисью этилена.
Наиболее часто используют р-пропиолактон, добавляя его к готовой питательной среде в концентрации 0,2 %. В течение 2 ч, при температуре 37 °С все микроорганизмы погибают. После выдерживания среды в течение ночи Р-пропиолактон полностью гидролизуется и среда становится пригодной к использованию.
