- •Практикум
- •Тематичний план дисципліни «Біологічна хімія» для денної форми навчання
- •Тематичний план для заочної форми навчання
- •2.4 План лабораторних занять
- •Правила техніки безпеки для студентів, які працюють у біохімічній лабораторії
- •Перша допомога при нещасних випадках у біохімічній лабораторії
- •Тема 1.1. Предмет і завдання біохімії. Хімічний склад організму
- •Хімічний склад організму
- •План заняття
- •Тема 1.2. Білки, амінокислоти: будова, властивості, біологічна роль. Класифікація.
- •1.2.1. Амінокислоти: будова, Класифікація, властивості, біологічна роль.
- •Амінокислоти класифікуються відповідно: за хімічною будовою:
- •Лабораторна робота № 2 «загальні властивості амінокислот»
- •План заняття
- •5. Кількісне визначення ά-аміногруп формольним титруванням
- •«Кольорові реакції на амінокислоти»
- •План заняття
- •1.2.2. Білки: будова, Класифікація, властивості, біологічна роль
- •«Фізико-хімічні властивості білків»
- •План заняття
- •Тема 1.3. Ферменти; будова, властивості, класифікація. Біологічне окиснення
- •«Властивості ферментів»
- •План заняття
- •1. Вивчення впливу різних температур на активність амілази
- •2. Вивчення чутливості ферментів до рН середовища
- •3. Вивчення впливу активаторів та інгібіторів на активність ферментів
- •«Окиснювально-відновлювальні ферменти (оксидоредуктази)»
- •План заняття
- •Тема 1.4. Вуглеводи: будова, біологічна роль. Класифікація
- •«Дослідження властивостей вуглеводів»
- •План заняття
- •Тема 1.5. Ліпіди: будова, біологічна роль. КЛаСиФікація
- •«Дослідження властивостей ліпідів»
- •План заняття
- •Техніка виконання роботи
- •ТЕма 1.6. НУклеінові кислоти:будова, біологічна роль. Біосинтез білка
- •«Виділення та якісне визначення складу нуклеопротеїдів»
- •План заняття
- •1. Виявлення наявності вуглеводів, фосфору і пептидних зв’язків у гідролізаті нуклеопротеїдів дріжджів
- •Поточний контроль (модуль 1) здійснюється з використан-ням «Практикуму для проведення тестового контролю знань з дисципліни «Біохімія».
- •Тема 2.1. Обмін білків в організмі: розщеплення білків в шлунково-кишковому тракті, утворення отруйних речовин і їх знешкодження. Обмін білків в тканинах. Знешкодження аміаку
- •«Виділення та якісне визначення складу глюкопротеїдів, фосфопротеїдів»
- •План заняття
- •Тема 2.2. Обмін вуглеводів в організмі: розщеплення в шлунково-кишковому тракті, Обмін вуглеводів в тканинах. Енергетичний ефект. Регуляція вуглеводного обміну
- •«Обмін вуглеводів»
- •План заняття
- •1. Дослідження перетравлення сахарози ферментами дріжджів
- •Тема 2.3. Обмін ліпідів в організмі: розщеплення в шлунково-кишковому тракті, Обмін ліпідів в тканинах, енергетичний ефект, регуляція ліпідного обміну.
- •«ВиЗначення якості ліпідів»
- •План заняття
- •Тема 2.4. Вітаміни. Водорозчинні вітаміни: будова, властивості, біологічна роль, джерела в їжі.
- •«ВиЗначення Водорозчинних вітамінів»
- •План заняття
- •«ВиЗначення жиророзчинних вітамінів»
- •План заняття
- •Поточний контроль (модуль 2) здійснюється з використанням «Практикуму для проведення тестового контролю знань з дисципліни «Біохімія»
- •5.3 Методичні матеріали
- •Практикум
«Обмін вуглеводів»
Мета заняття: провести дослідження здатності вуглеводів до перетравлення ферментами.
План заняття
1. Дослідити перетравлення сахарози ферментами дріжджів.
2. Вивчити перетравлення крохмалю ά-амілазою за методом Вольгемута.
3. Виявити редукуючий вуглевод лактозу у молоці
4. Виявити сахарозу у харчовому цукрі
1. Дослідження перетравлення сахарози ферментами дріжджів
Об’єкт дослідження: Сахароза, 1 %-й розчин;
Обладнання і посуд: 1. Штатив із пробірками;
2. Нагрівальний прилад.
Реактиви: 1. Витяжка з дріжджів;
2. Мідь сірчанокисла, 5 %-й розчин;
3. Гідроксид натрію, 10 %-й розчин.
Техніка виконання роботи
У дві пробірки наливають по 1 мл 1 %-го розчину сахарози. У першу додають 1 мл витяжки з дріжджів. Обидві проби ставлять у термостат на 15 хв. при температурі 37оС. Потім проводять пробу Троммера на наявність редукуючих вуглеводів.
2. Дослідження перетравлюваності крохмалю
(кількісне визначення активності α-амілази за методом Вольгемута)
Об’єкт дослідження: Крохмаль, 1 %-й розчин.
Обладнання і посуд: Штатив із пробірками.
Реактиви: 1. Витяжка з підшлункової залози, розбавлена в 1000 разів (джерело α-амілази);
2. Йод, 0,02 н. розчин.
Техніка виконання роботи
У чотири пробірки наливають по 1 мл води. У першу приливають 1 мл джерела ферменту, потім з неї відбирають 1мл вмісту і переносять у другу пробірку, а потім з другої 1 мл приливають у третю пробірку, з третьої – в четверту, а з неї 1 мл рідини виливають, тобто послідовно розбавляють фермент у 2, 4, 8, і 16 разів.
До всіх пробірок додають по 1 мл 1 %-го розчину крохмалю і поміщують у термостат при температурі 37оС. Через 10 хвилин додають по 1 краплі 0,02 н. розчину йоду. Відзначають забарвлення. Активність ферменту визначають за найменшою концентрацією джерела ферменту, яка викликала зникнення синього забарвлення. Потім помножують розбавлення в цій пробі на 1000 і одержують показник активності, який виражається кількістю мілілітрів 1 %-го розчину крохмалю, що розщеплює 1 мл нерозбавленого джерела ферменту при температурі 37оС протягом 10 хвилин:
Д 10/37о = 1000·а,
де : Д – активність ферменту;
а – розбавлення ферменту в пробірці, що передує тій, в якій забарвлення синє.
Результати дослідів заносяться в табл. 8.
Таблиця 8
№ проби |
1 |
2 |
3 |
4 |
Розбавлення джерела ферменту |
|
|
|
|
Забарвлення з I2 |
|
|
|
|
Наявність декстринів |
|
|
|
|
3. Виявлення редукуючого вуглеводу лактози в молоці
Об’єкт дослідження: Молоко.
Обладнання і посуд: 1. Штатив із пробірками;
2. Фільтри паперові;
3. Нагрівальний прилад;
4. Мірний циліндр на 50…100 мл.
Реактиви: 1. Реактив Фелінга (Фелінг І + Фелінг ІІ у рівних об’ємах);
2. КОН, 1 %-й розчин.
Техніка виконання роботи
В мірний циліндр на 50 мл виміряють 2,5 мл молока, додають 40 мл дистильованої води і 1 мл 1 %-го розчину КОН. Об’єм суміші доводять до 50 мл. Струшують вміст. Фільтрують. Відмірюють в окрему пробірку 2…3 мл фільтрату і проводять реакцію Фелінга.
4. Виявлення сахарози в харчовому цукрі
Об’єкт дослідження: Цукор, 1 % розчин.
Обладнання і посуд: 1. Штатив із пробірками;
2. Нагрівальний прилад.
Реактиви: 1. Сірчана кислота, концентрована;
2. Реактив Фелінга;
3. Реактив Селіванова.
Готують 1 %-й розчин харчового цукру. З 1…2 мл розчину проводять реакцію Фелінга. 2…3 мл розчину цукру піддають кислотному гідролізу (приливають 1…3 краплини сірчаної кислоти), гідролізат розливають у дві пробірки: в одній після нейтралізації проводять реакцію Фелінга, у другій – реакцію Селіванова.
5. Ізомерізація глюкози у фруктозу
Глюкоза і фруктоза – моносахариди. Глюкоза – виноградний, фруктоза – плодовий цукор. Моносахариди, що містять альдегідну групу, одержали назву альдоз (глюкоза), а ті, що містять кетонну групу – кетоз (фруктоза). Усі альдози і кетози є ізомерами. Це ізомерія альдоз і кетоз з відкритим ланцюгом і з однаковим числом атомів вуглевода в молекулі.
Глюкоза і фруктоза мають однакову молекулярну формулу С6Н12О6, отже є ізомерами.
Всі моносахариди, що мають в окисній формі вільний глюкозидний гідроксил, а у відкритій – вільну карбонільну групу, в тому числі глюкоза, фруктоза, при нагріванні в лужному розчині легко розщеплюються, подібно до альдегідів і кетонів, утворюючи брунатний або чорний розчин.
При осмолюванні утворюється складна суміш речовин, при цьому вуглеводи ізомерізуються по різних напрямках. При дії дуже слабких лугів вуглеводи не зазнають глибоких змін, проте все ж здатні ізомеризуватися. Так, глюкоза в таких умовах частково ізомерізується у фруктозу.
Об’єкт дослідження: Набор вуглеводів.
Обладнання і посуд: 1. Штатив із пробірками;
2. Піпетки;
3. Крапельниці;
4. Нагрівальний прилад.
Реактиви: 1. Моносахариди, 10 %-й розчини (глюкоза, фруктоза, цукор);
2. Концентрований розчин лугу (30 %-й розчин NaOH);
3. Сірчана кислота, 10 %-й розчин.
Техніка виконання роботи
Дослід проводять одночасно з кількома різними вуглеводами, використовуючи готові 5…10 %-і розчини або розчинюючи 0,1…0,2 г вуглеводів в 1…2 мл дистильованої води.
До 1…2 мл розчину вуглеводу додають удвічі менший об’єм концентрованого розчину лугу, нагрівають суміш до кипіння і кип’ятять 2…3 хв. Відзначають зміну забарвлення розчину, якщо таке спостерігається. Потім охолоджують рідину і підкислюють її розбавленою сірчаною кислотою, при цьому забарвлення блідніє і з’являється виразний запах карамелі (палений цукор).
Контрольні запитання
Як відбуваються процеси переварювання вуглеводів у шлунково-кишковому тракті людини?
Як регулюється вміст цукру в крові людини?
Охарактеризуйте процеси біосинтезу глікогену.
У чому полягає суть гліколізу (анаеробне окиснювання глюкози)?
Напишіть реакції гліколізу.
Напишіть реакцію окисного декарбоксілювання піровиноградної кислоти.
Напишіть реакції циклу Кребса.
Який енергетичний вихід циклу Кребса?
