- •Інструментальні методи дослідження якості продовольчих товарів
- •Правила роботи в лабораторії інструментальних методів дослідження
- •Лабораторна робота №1
- •Самостійна робота – 2 години
- •Зробити висновок чи завжди відповідає маса продуктів їхньому об’єму.
- •Хід виконання роботи
- •Самостійна робота - 2 години
- •Результати визначення вмісту вологи й сухих речовин у продовольчих товарах.
- •Контрольні питання
- •Лабораторна робота № 2
- •2.2. Визначення лактози
- •Результати вивчення якості цукру з допомогою поляриметру за вмістом цукрози та якість молока а вмістом лактози
- •6. Вивчення якості продовольчих товарів з допомогою рефрактометрії. Оцінка якості рослинних, тваринних жирів та жирів в консервах за допомогою рефрактометру
- •Контрольні питання
- •Лабораторна робота № 3
- •Самостійна робота – 2 години
- •Результати визначення вмісту етилового спирту пікнометром
- •Результати дослідження щільності молока аерометричним методом
- •Показники якості клейковини при вимірюванні на приладі ідк
- •Щільність безпористої маси хліба
- •Результати визначення пористості хліба
- •Контрольні питання
- •Лабораторна робота № 4
- •Самостійна робота - 2 години
- •Зміни показників люмінесценції при псуванні м’яса та риби
- •Показники люмінесценції жирів, молока, сирів під дією ультрафіолетового випромінювання
- •2.3 Визначення якості борошна
- •Показники люмінесценції борошна
- •2.4 Визначення якості овочів та фруктів
- •Показники люмінесценції овочів та фруктів
- •Результати визначення якості продовольчих товарів прямим люмінесцентним методом
- •Лабораторна робота № 5 Тема електрохімічні та електрофоретичні методи дослідження
- •Самостійна робота - 2 години
- •Результати визначення нітратного азоту за допомогою електрохімічного потенціометричного методу
- •Лабораторна робота № 6
- •Самостійна робота - 2 години
- •Результати визначення цукру й цукрози калориметричним методом
- •1.Приготування розгинів та реактивів
- •2.Порядок проведення аналізу
- •Результати визначення активності ферменту орто-дифенолоксидази фотоколориметричним методом
- •1.Приготування розчинів та реактивів
- •2.Порядок проведення аналізу
- •Коефіцієнти екстинції деяких імунохімічно значущих білків для практичної та науково-дослідної роботи в товарознавстві продовольчих товарів і суміжних з ним галузях наук.
- •1.Підготувати спектрофотометр до роботи.
- •2.Порядок проведення аналізу
- •Результати визначення визначення кількості білка за поглинанням в уф –світлі при 280 нм
- •1.Приготування реактиву Фоліна
- •2.Підготувати спектрофотометр до роботи.
- •3.Порядок проведення аналізу
- •Лабораторна робота № 7 Тема. Хроматографічні та інші розділюючі методи досліджень
- •Самостійна робота - 2 години
- •Література Основна література:
- •Додаткова література
- •Інструментальні методи дослідження якості продовольчих товарів (українською мовою)
Коефіцієнти екстинції деяких імунохімічно значущих білків для практичної та науково-дослідної роботи в товарознавстві продовольчих товарів і суміжних з ним галузях наук.
Білок |
Коефіцієнт екстинції (Е )
|
|
Людина |
Кролик |
|
IgG |
13,6 |
13,5 |
IgM |
11,8 |
– |
IgA |
13,2 |
– |
IgA (секреторний) |
12,6 |
13,5 |
IgD |
17,0 |
– |
IgE |
15,3 |
– |
γ- ланцюг |
– |
13,7 |
μ - ланцюг |
13,9 |
– |
ά – ланцюг |
15,5 |
– |
Легкий ланцюг |
12,8 |
11,8 |
j – ланцюг |
6,8 |
– |
Секреторний компонент |
12,7 |
– |
Fab |
– |
15,0 |
Fc |
– |
12,0 |
Fd |
– |
16,0 |
VH |
– |
27,0 |
Таблиця 6.5.
Характеристика методів визначення білка
Метод |
Необхідна кількість білка, мг |
Деструкція білка |
Залежність від амінокис лотного складу
|
Особливості |
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
Біуретова реакція |
0,50–5,00 |
Відбувається |
Низька |
Лужний реактив; NН4-іони заважають визначенню. Швидкий розвиток забарвлення |
Продовження таблиці |
||||
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
Метод Лоурі |
0,01–0,05 |
Відбувається |
Помірна |
Повільний розвиток забавляння |
Поглинання |
0,05—0,10 |
Не відбувається |
Значна |
Поглинаючі в УФ- світлі речовини заважають визначенню. Забарвлення отримують миттєво |
Зв’язування барвника |
0,01—0,05 |
Відбувається |
Помірна |
Кисли реактив; Фарбування кювет. Швидкий розвиток забарвлення |
Біуретовая реакція. Метод заснований на здатності лужного розчину солі міді утворювати мідь-білковий комплекс пурпурного кольору з пептидними ланцюгами білків (але не з бічними групами амінокислотних залишків). Інтенсивність цього забарвлення прямо пропорційна концентрації білка в розчині і її можна визначити спектрофотометрично при 540 або 310 нм. Метод вирізняється високою відтворюваністю, проте його чутливість низька. Крім того, для отримання тонких даних необхідні декілька міліграм зразка. Метод непридатний для визначення білка у фракціях, висолених сульфатом амонію(таблиця 6.5.).
Метод Лоурі. В основі визначення концентрації білка методом Лоурі лежить реакція відновлення реактиву Лоурі – Фоліна – Гіокалто (реактив Фоліна) комплексом, що утворюється при взаємодії білка з іонами міді в лужному розчині (біуретова реакція). В результаті реакції виникає темно-синє забарвлення, інтенсивність якого пропорційна концентрації білка в розчині, причому будь-який пептидний зв'язок білка змінює забарвлення зразка, хоча і різною мірою. При аналізі проб з концентрацією білка 5 – 25 мкг/мл спектр поглинання фарбника, що утворився по закінченню реакції, має максимум при 750 нм, а при аналізі проб з більшою масовою часткою білка – при 500 нм. Величина оптичної щільності при проміжних значеннях довжини хвилі (600 нм) складає приблизно 90 % величини, отриманої при 750 нм. Тому інтенсивність забарвлення можна вимірювати при відповідній довжині хвилі в діапазоні 600 – 750 нм. Метод Лоурі вирізняється високою точністю й чутливістю (таблиця 6.5.), широко використовується в повсякденній практиці.
Поглинання в УФ області спектру. Визначення кількості білка в УФ- променях базується на поглинанні світла амінокислотами, які присутні в білках Максимум поглинання триптофану в УФ- області спектр – при 257 нм, а тирозина – при 294 нм. Виміри звичайно проводять при 280 нм. Не дивлячись на те, що метод не має високої чутливості й точності, його успішно застосовують для швидкого визначення білка в хроматографічних елюатах, побудови профілів елююваного зразка з колонки. Метод придатний для визначення кількості білка в розчині за калібрувальною кривою, проте внаслідок неоднакового вмісту триптофану і тирозину в різних білках отримані результати можуть виявитися невірогідними (виключення складають визначення, в яких для побудови калібрувальної кривої взяті аналогічні зразки чистих білків).
Перевагою метода є можливість використовувати в наступних аналізах зразки, в яких визначали білок.
Метод зв’язування барвників. Суть методу полягає в тому, що деякі барвник при зв’язуванні з білком дають специфічне забарвлення, інтенсивність якого залежить від концентрації білка і може бути визначена спектрофотометрично або іншими способами. Найчастіше використовують барвник кумассі С-250, який у надхлорній кислоті забарвлює розчин в червоно–брунатний колір, а при зв’язуванні з білком за тих же умов – в синій. Інтенсивність забарвлення визначають при 595 нм. Цей метод більш чутливіштй та простіший й не менше точний, ніж метод Лоурі (таблиця 6.5. ). До його недоліків можна віднести тільки те, що адсорбований на стінках кювети барвник потрібно відмивати перед кожним вимірюванням розчином додецилсульфату натрію (ПДВ).
Завдання 6. Побудувати калібрувальну криву для визначення кількості білка за поглинанням в УФ –світлі при 280 нм
Прилади. Спектрофотометр; аналітичні ваги, гомогенізатор.
Обладнання. Мірні хімічні стакани на, 100, 10 мл, скляні палички оплавлені з одного кінця, піпетки; градуйовані на 5-10 мл; мірні пробірки, штатив для пробірок, фарфорова ступка з товкачиком.
Реактиви. Бичачий сироватковий альбумін чи будь-який очищений білок; 0,15моль / л розчин хлориду натрію.
Дослідні матеріали: м’ясо, сир, клубні картоплі, тощо.
Хід виконання роботи
