- •4. Организация лабораторных исследований
- •4.1.2. Лаборатории особо опасных инфекций центров гигиены и эпидемиологии Роспотребнадзора и ведомств:
- •4.1.3. Лаборатории противочумных учреждений:
- •5.1. Отбор и доставка материала на исследование
- •5.1.1. Способы отбора проб от больных холерой, вибриононосителей и контактных с ними лиц секционного материала
- •5.1.2. Отбор проб из объектов окружающей среды
- •5.2. Порядок исследования
- •5.2.1. Исследование проб от больных и вибриононосителей секционного материала (рис. 1)
- •VI этап (через 36 - 48 ч от начала исследования)
- •V этап (через 24 - 36 ч от начала исследования)
- •5.2.2. Исследование объектов окружающей среды
- •5.2.3. Порядок исследования в условиях односменной работы лаборатории
- •5.3. Идентификация культур холерных вибрионов
- •V. Cholerae V. Cholerae │(по отечественной │
- •5.4. Учет анализов, оформление направлений
- •6.2. Биохимические свойства
- •6.5. Тесты межвидовой дифференциации
- •6.6.2. Определение эпидзначимости холерных вибрионов эльтор
- •V. Cholerae eltor по чувствительности к бактериофагам
- •6.6.4. Определение генов холерного токсина (ctx ав) и токсинкорегулируемых пилей (tcp а)
- •6.7. Оценка антибиотикочувствительности
- •6.7.1. Методы серийных разведений
- •6.7.1.1. Методы серийных разведений в агаре
- •7.2. Реактивы
- •7.4. Порядок контроля качества питательных сред
- •8. Методы серологической диагностики
- •8.1. Определение агглютининов в сыворотке крови
- •8.2. Определение вибриоцидных антител
- •8.3. Определение токсиннейтрализующих
8.3. Определение токсиннейтрализующих
антител в сыворотке крови
Для выявления токсиннейтрализующих антител в сыворотке крови больных холерой и вибриононосителей предназначена РНГА с эритроцитарным холерным энтеротоксическим диагностикумом (ЭХЭД), у которых инфицирование обусловлено холерными вибрионами О1 и О139 серогрупп. Токсиннейтрализующие антитела появляются на 5 - 7-й день болезни, достигая максимума на 14 - 21-й день, затем их титр постепенно снижается, но сохраняется дольше других антител. Иммуноглобулины к холерному токсину в сравнении с вибриоцидными и другими специфическими холерными антителами дольше циркулируют в сыворотке крови после перенесенной инфекции (до 8 - 10 и более месяцев). Условно положительным титром РНГА с ЭХЭД следует считать 1:160 и выше. Целесообразно исследовать парные сыворотки.
Результат РНГА с ЭХЭД позволяет сделать заключение о токсигенности (эпидемичности) циркулирующего в очаге штамма холерного вибриона, в том числе и без выделения культуры.
Приложение 1
(рекомендуемое)
НАПРАВЛЕНИЕ ПРОБ ОТ ЛЮДЕЙ
в лабораторию ________________________________________________
для исследования на __________________________________________
от "___" _____________ 200_ г.
N регист- рацион- ный <*> |
N про- бы |
Первич- ная или повтор- ная |
Характер материа- ла |
Ф.И.О. |
Воз- раст |
Диаг- ноз |
Адрес места житель- ства |
Место работы |
Время отбора пробы |
Приме- чание <**> |
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
6 |
7 |
8 |
9 |
10 |
11 |
--------------------------------
<*> Регистрационный номер проставляют в лаборатории.
<**> Указать, принимал(а) ли антибиотики (если да - то какие, когда и сколько).
Пробы отбирали: ______________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
(Фамиля, И.О., должность) (подписи)
Пробы доставил: ______________________________________________
(Фамиля, И.О., должность) (подпись)
Время доставки проб __________________________________________
(дата, время - часы, минуты)
Приложение 2
(рекомендуемое)
НАПРАВЛЕНИЕ ПРОБ ИЗ ОБЪЕКТОВ ОКРУЖАЮЩЕЙ СРЕДЫ
в лабораторию ________________________________________________
для исследования на __________________________________________
от "___" _____________ 200_ г.
N регис- трацион- ный <*> |
N пробы |
Место отбора проб |
Объект для исследования |
Характер материала |
Объем (коли- чество) |
Время отбо- ра пробы (ч, мин.) |
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
6 |
7 |
--------------------------------
<*> Регистрационный номер проставляют в лаборатории.
Пробы отбирали: ______________________________________________
__________________________________________________________________
__________________________________________________________________
(Фамиля, И.О., должность) (подписи)
Пробы доставил: ______________________________________________
(Фамиля, И.О., должность) (подпись)
Время доставки проб __________________________________________
(дата, время - часы, минуты)
Приложение 3
(обязательное)
УКЛАДКА ДЛЯ ОТБОРА МАТЕРИАЛА ОТ БОЛЬНОГО С ПОДОЗРЕНИЕМ
НА ХОЛЕРУ ДЛЯ БОЛЬНИЧНОГО УЧРЕЖДЕНИЯ НЕИНФЕКЦИОННОГО
ПРОФИЛЯ, СТАНЦИЙ СКОРОЙ И НЕОТЛОЖНОЙ ПОМОЩИ,
ПОЛИКЛИНИК, СКО, СКП, ПСКП
1. Банки широкогорлые с крышками или притертыми
пробками емкостью не менее 100 мл 2 шт.
2. Контейнеры 100 - 200 мл с завинчивающейся крышкой
стерильные полипропиленовые 2 шт.
3. Стеклянные трубки с резиновой грушей для переноса
жидкого исследуемого материала в контейнеры 2 шт.
4. Контейнеры для испражнений 30 мл с ложкой
полипропиленовые 2 шт.
5. Пробирки с ватными тампонами или алюминиевыми петлями
(стерильные) 2 шт.
6. Клеенка медицинская подкладная 1 м
7. Полиэтиленовые пакеты 5 шт.
8. Салфетки марлевые 5 шт.
9. Направление на анализ (бланк) 3 шт.
10. Лейкопластырь 1 уп.
11. Карандаш простой 1 шт.
12. Карандаш по стеклу 1 шт.
13. Бикс (металлический контейнер) 1 шт.
14. Инструкция по забору материала 1 шт.
15. Хлорамин в пакетах по 30 г, рассчитанный на
приготовление 1 литра 3%-го раствора 1 шт.
16 Хлорная известь сухая в пакете из расчета 200 г на
1 кг выделений 1 шт.
17. Перчатки резиновые 2 пары
18. Емкость эмалированная 10 л 1 шт.
19. Пептонная вода 1%-я во флаконах по 50 мл, закрытых
резиновыми пробками и завальцованных металлическими
колпачками 4 шт.
20. Флаконы с 50 мл 0,9%-го раствора хлорида натрия
закрытые резиновыми пробками и завальцованные
металлическими колпачками 2 шт.
Приложение 4
(обязательное)
УКЛАДКА ДЛЯ ЗАБОРА ПРОБ ИЗ ОБЪЕКТОВ
ОКРУЖАЮЩЕЙ СРЕДЫ НА ХОЛЕРУ
1. Ящик тарный на 20 гнезд 1 шт.
2. Ящик металлический - укладка 1 шт.
3. Бутылки 0,5 л с ватно-марлевыми (и резиновыми)
пробками, с пергаментными бумажными колпачками 20 шт.
4. Флаконы с 50 мл 0,9%-го раствора натрия хлорида,
закрытые резиновыми пробками и завальцованные
металлическими колпачками 2 шт.
5. Спирт 96° 100 мл
6. Вата 100 г
7. Карандаш по стеклу 2 шт.
8. Карандаш простой 1 шт.
9. Бумага писчая 10 листов
10. Направление на анализ (бланк) 10 шт.
11. Бумага копировальная 5 листов
12. Пинцет 1 шт.
13. Банка 0,5 л с матерчатыми салфетками (15 шт.)
для отбора проб сточных вод 1 шт.
14. Термометр до 50 °С 1 шт.
15. Бумага индикаторная для определения рН (1 - 12) 1 упак.
16. Банка с притертой крышкой с ватными тампонами 1 шт.
17. Пробирки с тампонами для взятия смывов 20 шт.
18. Штатив на 20 гнезд 1 шт.
19. Батометр 1 шт.
20. Шпагат - мотки по 5, 10 и 30 м 45 м
21. Хлорамин в пакетах по 30 г, рассчитанный на
приготовление 1 литра 3%-го раствора 2 шт.
22. Емкость на 1 л для приготовления 3%-го хлорамина 1 шт.
23. Пакеты полиэтиленовые 5 шт.
24. Халат медицинский и шапочка 2 шт.
25. Перчатки резиновые 2 пары
26. Фартук и нарукавники клеенчатые 1 шт.
Приложение 5
(рекомендуемое)
СПОСОБ ОТБОРА КОЛОНИЙ ВИБРИОНОВ С ПОМОЩЬЮ
СТЕРЕОСКОПИЧЕСКОГО МИКРОСКОПА В КОСО ПРОХОДЯЩЕМ СВЕТЕ
Принцип метода заключается в том, что при просмотре колоний различных микробов под малым увеличением микроскопа или лупы при освещении их пучком света, косо падающим на поверхность агара, колонии приобретают способность светиться и кажутся окрашенными.
К стереоскопическому микроскопу МБС-2 или МБС-1 приспосабливают устройство для получения узкого пучка света и зеркало от микроскопа на подвижном шарнире для освещения чашки снизу под углом 45 - 50°.
Чашки с посевами просматривают после 12 - 18 ч инкубации. При величине угла падения луча света к поверхности агара в 40 - 50° колонии вибрионов по своей окраске заметно отличаются от других микроорганизмов.
Цвет колоний, выросших на щелочном агаре, при косом освещении:
Микроорганизмы |
Цвет колонии |
Холерные вибрионы |
Преобладает серо-голубой с оттенком зеленовато- серым, синевато-зеленым, реже - зеленый с верх- ним краем красно-бурого или коричневого оттенка |
Сальмонеллы |
Розовый оттенок |
Шигеллы |
Розовый с фиолетовым оттенком |
Кишечная палочка |
Ярко-красный |
Протей |
Красный с фиолетовым оттенком |
Приспособления для просмотра колоний в косо проходящем свете.
1. Столик стереоскопического микроскопа МБС-1 или МБС-2 заменяют специальным приспособлением для освещения чашки снизу под углом 45 - 50°. Источником света служит осветитель от микроскопа, на который надевают кожух с отверстием диаметром 5 мм против спирали лампочки для получения узкого пучка света. Узкий пучок света направляют в центр вогнутого зеркала, которое перемещается на подвижном шарнире поворотом винта в зависимости от необходимости угла падения света. Угол вычисляют по соотношению расстояния от зеркала до чашки, которое меняется произвольно, и расстояния от чашки до поверхности стола, остающегося неизменным.
Для удобства исследования осветитель и зеркало можно вмонтировать в ящик со стеклянной крышкой, на которую помещают чашку с посевом. Это дает возможность быстро находить нужный угол падения света, передвигая зеркало поворотом винта по вмонтированной шкале.
2. Приспособление, смонтированное из основных узлов стереоскопического микроскопа БМС-1 и прибора для счета колоний.
Из раструба верхней крышки прибора для подсчета колоний удалить оба стекла вместе с упорным кольцом и снять верхнюю крышку. Из скобы передней панели вывинтить вертикальную ось, после чего убрать диск со светофильтрами. Освободить два винта, прикрепляющие патрон лампочки освещения к кронштейну на задней панели. В крышку снизу вставить вертикальную штангу от узла лупы с таким расчетом, чтобы в рабочем положении прибора муфта с прижимным винтом оказалась на дне под кронштейном импульсного счетчика. В муфту зажать держатель с угловыми губками (из комплекта лабораторного штатива), предварительно укороченный до 110 мм. Держателем закрепить патрон с лампочкой в вертикальном положении. Крышку фиксировать винтами на своем обычном месте.
Штатив микроскопа МБС-1 вместе с бинокулярной насадкой отсоединить от столика и установить непосредственно на корпус прибора для счета колоний так, чтобы 3 сферических ножки основания штатива охватили раструб крышки прибора, а окно основания было обращено к наблюдателю. Подлежащие к просмотру чашки с посевами устанавливают над открытым окном. Нужную освещенность и угол падения света находят изменением положения лампы, которое достигается поворотом штанги, после чего последнюю фиксируют цанговым зажимом.
Приложение 6
(рекомендуемое)
ЖУРНАЛ
РЕГИСТРАЦИИ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ МАТЕРИАЛА
ОТ БОЛЬНЫХ (ТРУПОВ) ЛЮДЕЙ С ПОДОЗРЕНИЕМ НА ХОЛЕРУ
И ДРУГИЕ КАРАНТИННЫЕ ИНФЕКЦИИ
N регист- рацион- ный |
Фамилия, И.О. |
В о з р а с т |
П о л |
Место работы, долж- ность |
Место житель- ства (адрес) |
Клини- ческий (пато- лого- анатоми- ческий) диагноз |
Учреж- дение, направ- ляющее пробу |
Цель иссле- дования |
N, дата первич- ного анализа (год, месяц, число) |
Приме- нение анти- биоти- ков |
Дата и время |
Иссле- дуемый мате- риал |
Резуль- таты иссле- дования |
Дата напра- вления ответа (месяц, число) |
Подпись врача |
|||||
взятия пробы (год, месяц, число, час) |
приема анализа (месяц, число, час) |
|||||||||||||||||||
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
6 |
7 |
8 |
9 |
10 |
11 |
12 |
13 |
14 |
15 |
16 |
17 |
||||
Приложение 7
(рекомендуемое)
ЖУРНАЛ
РЕГИСТРАЦИИ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ
ПРОБ ИЗ ОБЪЕКТОВ ОКРУЖАЮЩЕЙ СРЕДЫ
N регист- рационный |
Объект исследо- вания |
Адрес, место отбора проб |
Количе- ство (объем) пробы |
Наимено- вание учрежде- ния, напра- вившего пробы |
Дата и время |
Резуль- тат иссле- дования |
Под- пись |
||
отбора пробы (год, месяц, число, час) |
приема пробы (месяц, число, час) |
выдачи ответа (месяц, число, час) |
|||||||
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
6 |
7 |
8 |
9 |
10 |
Приложение 8
(рекомендуемое)
ЖУРНАЛ
ИДЕНТИФИКАЦИИ КУЛЬТУР ХОЛЕРНЫХ ВИБРИОНОВ
N регист- рационный |
N штам- ма |
Вид мик- роба |
Дата выделе- ния (число, месяц, год) |
Объект иссле- дования |
Морфо- логия клетки |
Подвиж- ность |
Морфо- логия колоний |
Индофе- нолокси- даза |
Лизинде- карбокси- лаза |
Орнитин- декарбо- ксилаза |
Арги- нинди- гидро- лаза |
Расщепление глюкозы в среде Хью- Лейфсона |
Ферментация |
|||||
саха- розы |
араби- нозы |
ман- нозы |
ман- нита |
ино- зита |
||||||||||||||
аэроб- ное |
анаэ- робное |
|||||||||||||||||
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
6 |
7 |
8 |
9 |
10 |
11 |
12 |
13 |
14 |
15 |
16 |
17 |
18 |
19 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
┌───────────────┬───────────────────┬────────────────────────────────┬────────────────────────────┬─────────┬────────┬────────┐
│ Ферментация │ Образование │ Взаимодействие с холерными │ Чувствительность к фагам │Реакция │Чувстви-│Гемоли- │
│ │ │ иммуноглобулинами в реакциях │ холерным │гемагглю-│тель- │тическая│
├───┬─────┬─────┼─────┬─────┬───────┼──────────────────────┬─────┬───┼──────┬────┬─────┬────┬─────┤тинации │ность к │актив- │
│ак-│крах-│жела-│индо-│серо-│ацетил-│ агглютинации │РНГА,│МФА│клас- │эль-│ + │ -│ТЭПВ │ │полими- │ность в │
│озы│мала │тины │ла │водо-│метил- ├──┬─────┬─────┬──┬────┤РТПГА│ │сичес-│тор │ctx │ctx │1 - 7│ │ксину │пробе │
│ │ │ │ │рода │карби- │О1│Огава│Инаба│РО│О139│ │ │кому │ │ │ │ │ │В 50 │Грейга │
│ │ │ │ │ │нола │ │ │ │ │ │ │ │ │ │ │ │ │ │ед./мл │ │
├───┼─────┼─────┼─────┼─────┼───────┼──┼─────┼─────┼──┼────┼─────┼───┼──────┼────┼─────┼────┼─────┼─────────┼────────┼────────┤
│20 │ 21 │ 22 │ 23 │ 24 │ 25 │26│ 27 │ 28 │29│ 30 │ 31 │32 │ 33 │ 34 │ 35 │ 36 │ 37 │ 38 │ 39 │ 40 │
├───┼─────┼─────┼─────┼─────┼───────┼──┼─────┼─────┼──┼────┼─────┼───┼──────┼────┼─────┼────┼─────┼─────────┼────────┼────────┤
├───┼─────┼─────┼─────┼─────┼───────┼──┼─────┼─────┼──┼────┼─────┼───┼──────┼────┼─────┼────┼─────┼─────────┼────────┼────────┤
├───┼─────┼─────┼─────┼─────┼───────┼──┼─────┼─────┼──┼────┼─────┼───┼──────┼────┼─────┼────┼─────┼─────────┼────────┼────────┤
└───┴─────┴─────┴─────┴─────┴───────┴──┴─────┴─────┴──┴────┴─────┴───┴──────┴────┴─────┴────┴─────┴─────────┴────────┴────────┘
Токсиген- ность |
ПЦР |
ДНК- зонди- рование на ctx АВ |
Чувствительность к антибиотикам |
Заклю- чение <*> |
Под- пись врача |
||||||||||||||||||
диско-диффузионный метод |
метод серийных разведений |
||||||||||||||||||||||
на кроли- ках-со- сунках |
ctx АВ |
tcp А |
тетра- циклин |
лево- мице- тин |
док- сици- клин |
ципроф- локсацин |
нитро- фуран- тоин |
ко-три- мокса- зол |
другие (впи- сать) |
тетра- циклин |
левоми- цетин |
док- сици- клин |
ципроф- локсацин |
нитро- фуран- тоин |
ко-три- мокса- зол |
||||||||
41 |
42 |
43 |
44 |
45 |
46 |
47 |
48 |
49 |
50 |
51 |
52 |
53 |
54 |
55 |
56 |
57 |
58 |
59 |
|||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|||||
--------------------------------
<*> Таксономическое определение, токсигенность с указанием метода определения, чувствительность к антибиотикам (значения МПК, мкг/м); при необходимости дифференциации от других видов патогенных вибрионов добавляют тесты: рост без NaCl, расщепление салицина, дульцита, целлобиозы, тест на бета-галактозидазу, наличие нитратредуктазы.
Приложение 9
(обязательное)
ЖУРНАЛ УЧЕТА ВЫДЕЛЕННЫХ ШТАММОВ МИКРООРГАНИЗМОВ
(ФОРМА N 513/У)
┌──┬──┐ ┌──┬──┐ ┌──┬──┐
Хранить 3 года начат │ │ │ │ │ │ │ │ │
└──┴──┘ └──┴──┘ └──┴──┘
┌──┬──┐ ┌──┬──┐ ┌──┬──┐ ┌──┬──┐ ┌──┬──┐ ┌──┬──┐
до │ │ │ │ │ │ │ │ │ окончен │ │ │ │ │ │ │ │ │
└──┴──┘ └──┴──┘ └──┴──┘ └──┴──┘ └──┴──┘ └──┴──┘
N п/п |
N ана- лиза |
Адрес и дата взятия пробы |
Наиме- нование ПБА <*> |
N штамма |
Источник выделения |
Дата выде- ления |
Краткая характе- ристика ПБА <**> |
Судьба ПБА <***> |
Приме- чание |
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
6 |
7 |
8 |
9 |
10 |
--------------------------------
<*> Патогенный биологический агент.
<**> Типичность; при атипичности указать отличительные признаки.
<***> Уничтожен (дата, N акта); передан в коллекцию, центр и т.д. (дата, N акта).
Приложение 10
(обязательное)
Паспорт штамма
Вид микроба __________________________ Штамм N ___________________
Ф.И.О. ______________________________ возраст ____________________
место жительства больного или вибриононосителя (подчеркнуть) _____
__________________________________________________________________
(республика, область, район, населенный пункт, улица, N дома
и квартиры)
Наименование объекта _____________________________________________
(река, озеро и т.п.)
наименование стационарной точки __________________________________
(зона сан. охраны, место
сброса сточных вод и т.п.)
сточные воды _____________________________________________________
(в очаге, коллектор, очистные сооружения
до или после очистки и т.п.)
другие объекты ___________________________________________________
(указать)
с указанием территории ___________________________________________
(республика, область, район, населенный пункт)
Дата забора материала ___________ Дата выделения культуры ________
Культуру выделил(а) ______________________________________________
(Ф.И.О. врача, учреждение)
Культуру подтвердил(а) ___________________________________________
(Ф.И.О. врача, учреждение)
Характеристика штамма
1. Морфология клеток _____________________________________________
Тинкториальные свойства __________________________________________
2. Подвижность ___________________________________________________
3. Культуральные свойства: на 1% п.в. ____________________________
на щелочном агаре ________________________________________________
4. Проба на оксидазу _____________________________________________
5. Лизиндекарбоксилаза ___________________________________________
орнитиндекарбоксилаза ___________ аргининдигидролаза _____________
6. Расщепление: глюкозы в среде Хью-Лейфсона (аэробн./
анаэробн.) _______, сахарозы ________, маннозы ________, арабинозы
________, маннита _________, инозита _________, лактозы _________,
крахмала _______
7. Протеолитическая активность ___________________________________
8. Агглютинабельность холерными сыворотками: (указать серии и титр
сывороток):
О1 ________________, Огава _______________, Инаба _______________,
РО _______________, О139 _________________________________________
9. Реакция с холерными О1 люминесцирующими антителами ____________
10. Чувствительность к холерным фагам: классическому ____________,
+ -
эльтор _______, ctx _______, ctx _______, ТЭПВ (1 - 7) _________
11. Гемолитическая активность по Грейгу __________________________
12. Реакция гемагглютинации ______________________________________
13. Чувствительность к полимиксину В 50 (ед./мл) _________________
14. Токсигенность:
комплексным методом (ctx фаги и гемолиз) _________________________
на кроликах-сосунках _____________________________________________
ПЦР ______________________________________________________________
ДНК-зондирование _________________________________________________
15. Антибиотикограмма
N п/п |
Препарат |
Значение |
Результат |
|||
МПК, мкг/мл |
зона ингибиции роста, мм |
чувстви- тельный |
промежу- точный |
устой- чивый |
||
1 |
Доксициклин |
|
|
|
|
|
2 |
Тетрациклин |
|
|
|
|
|
3 |
Левомицетин |
|
|
|
|
|
4 |
Ципрофлоксацин |
|
|
|
|
|
5 |
Рифампицин |
|
|
|
|
|
6 |
Нитрофурантоин |
|
|
|
|
|
7 |
Ко-тримоксазол |
|
|
|
|
|
8 |
Гентамицин |
|
|
|
|
|
9 |
Ампициллин |
|
|
|
|
|
10 |
Цефотаксим |
|
|
|
|
|
|
Другие (вписать) |
|
|
|
|
|
16. Другие свойства ______________________________________________
17. Среда хранения _______________________________________________
Подпись врача ____________________________________________________
Примечание.
1) В графе 8 указывать: отр. или до титра; 1/2 титра и т.д.
2) В графе 10 указывать: до титра; 1/2 титра и т.д.
