- •1. Определение предмета медицинской микробиологии. Целевое назначение микробиологических лабораторий.
- •4. Виды микроскопии.Приготовление фиксированных препаратов мазков. Этапы и механизмы окраски по Граму.
- •5.Строение бактериальной клетки.Особенности строения клеточной стенки бактерий.
- •7. Капсулы бактерий, их важнейшие свойства, способы их обнаружения при микроскопировании.
- •8. Жгутики, донорные ворсинки, фимбрии, или реснички – их химическая структура, биологическое значение для бактериальной клетки.
- •9. Приготовление препаратов для изучения микроорганизмов в нативном виде: методы "висячей", "раздавленной" капли и витальная (прижизненная) окраска.
- •10. Порядок Spirochaetalis, их морфологические особенности. Внутривидовая дифференциация по морфологическим особенностям.
- •11. Морфологические особенности риккетсий, хламидий, микоплазм их систематика, классификация. Морфология вегетативной и покоящейся стадий.
- •12.Основные свойства вирусов. Молекулярно-генетическая организация вирусов, основа их таксономии
- •14. Питание бактерий.Классификация бактерий по типу питания, источникам энергии.Основные механизмы питания бактерий.
- •15. Классификация бактерий по типу дыхания.Рост и размножение бактерий.Фазы размножения популяции бактерий в жидкой питательной среде
- •2. Фаза логарифмического роста;
- •3. Фаза стационарного роста, или максимальной концентрации бактерий;
- •4. Фаза гибели бактерий.
- •16. Основные группы ферментов бактерий и их классификация.Факторы роста
- •17 . Первый этап выделения чистой культуры бактерий.Дайте определение специфическим микробиологическим терминам: "вид", "штамм", "клон", "колония", "чистая культура".
- •19. Методы стерилизации питательных сред.
- •20. Способы культивирования бактерий. Второй этап выделения чистой культуры.
- •21. Третий этап выделения чистой культуры.Методы выделения чистой культуры аэробных бактерий.Методы выделения чистой культуры анаэробных бактерий.
- •2. Для предупреждения проникненя кислорода в среду его заливают слоем стерильного вазелинового масла или парафином.
- •22 )Определение культуральных свойств бактерий в лабораторных условиях с целью их идентификации или диагностики
- •23. Определение сахаролитических ферментов бактерий в лабораторных условиях с целью их идентификации или диагностики.
- •24. Определение протеолитических ферментов бактерий в лабораторных условиях с целью их идентификации или диагностики.
19. Методы стерилизации питательных сред.
Стерилизация является заключительной операцией при приготовлении любой питательной среды. Питательные среды после разливки их в сосуды чаще стерилизуют нагреванием — термостерилизацией. Перед стерилизацией сосуды (колбы, пробирки) с налитыми в них средами закрывают ватными пробкам предохраняющими их в дальнейшем от заражения микробами из вне.
Стерилизация насыщенным паром под давлением. Такую стерилизацию проводят в автоклаве. Автоклав представляет собой двухстенный металлически котел, герметично закрывающийся крышкой. Между стенками котла находится вода. Стерилизуемые объекты ставят на дно автоклава. Автоклав снабжен манометром указывающим давление пара в котле, выпускным краном для выхода воздуха и пара и предохранительным клапаном, обеспечивающим выход пара при превышении заданного давления.
Автоклав обогревается газом или электричеством. Образующийся при кипении воды пар поступает в котел через отверстия, имеющиеся в верхней части его внутренней стенки, и через выпускной края выходит, вытесняя из автоклава воздух. После полного вытеснения воздуха (при этом выделяется сильная сплошная струя пара) выпускной кран закрывают и в автоклаве постепенно повышается давление. Когда оно достигнет 1 атм (по манометру), подогрев регулируют, чтобы поддерживать давление на одном уровне в течение необходимого времени. При таком давлении водяной пар имеет температуру 120° С.
При этой температуре выдерживают питательные среды (если объем их не более 0,5—1 л) в течение 20—30 мин. При таком режиме стерилизации погибают не только вегетативные клетки микроорганизмов, споры плесеней и дрожжей, но и бактериальные споры. По окончании стерилизации выключают источник нагрева, после того как стрелка манометра снизится до нуля, осторожно открывают выпускной кран, чтобы вытеснить из автоклава пар. Крышку автоклава открывают лишь после того, как он охладится.
Стерилизуют в автоклаве воду, мясо-пептонный бульон, дрожжевой автолизат, агаровые и другие среды, которые не претерпевают заметных изменений при темпетуре 120° С.
Стерилизация текучим паром. Эта стерилизация бывает дробной, или последовательной. Она применяется чаще для питательных сред, которые могут заметно изменять свои свойства при стерилизации в автоклаве, например молоко, среды, содержащие сахара, желатин.
Для стерилизации используется аппарат Коха (кипятильник Коха). Он представляет собой металлический цилиндр, покрытый изоляционным материалом, с двойным дном и неплотно закрывающейся крышкой, снабженной термометром. На дно цилиндра наливается вода. Над водой располагается металлическая подставка с отверстиями для прохождения пара, на которую помещают стерилизуемые питательные среды.
Вода в аппарате нагревается газом или электричеством до 100°С. Образующийся пар (текучий), прогревает стерилизуемые материалы, выходит через специальное отверстие и неплотности крышки.
Стерилизация производится дробно — в три приема три дня подряд по 30 мин ежедневно. Повторная стерилизация, вызывается тем, что при температуре 100° гибнут не все споры бактерий. В промежутках между нагревами (каждый — раз в сутки) питательная среда выдерживается в термостате при 25° С. За это время оставшиеся живыми споры прорастают в вегетативные клетки, которые и уничтожаются последующим нагревом при 100° С.
Холодная стерилизация (фильтрация). Метод холодной стерилизации применяется для жидких сред, которые не выдерживают нагревания.
Способ заключается в фильтровании сред через специальные мелкопористые бактериологические фильтры, задерживающие микроорганизмы (ультромикробы проходят).
Фильтры изготовляются из различных материалов из фарфоровой глины, асбеста, нитроклетчатки (мембранные ультрафильтры) и др.
