- •Вопрос№1: генетика и ее место в системе естественных наук. Предмет генетики. Основные этапы развития. Методы генетики.
- •Вопрос №2: моногибридное скрещивание. 1-ый закон менделя. Особенности методических подходов в эксперементах менделя. Типы аллельного взаимодействия и их хар-ка.
- •Вопрос №3: 2-ой закон менделя. Правило «чистоты гамет». Проверка закона методом х-квадрат. Анализирующее скрещивание и его значение для генетического анализа.
- •Вопрос №4: особенности исследования признаков при ди- и полигибридном скрещивании. 3-ий закон менделя. Математические формулы расщепления.
- •Вопрос №5: кодоминирование. Особенности расщепления признаков. Характер наследования групп крови у человека.
- •Вопрос №6: множественный аллелизм. Примеры. Генетич. Основа множ. Аллелиза.
- •Вопрос №7: неполное доминирование. Особенности расщепления признаков при моно- и дигибридном скрещивании.
- •Дигибридное скрещивание при неполном доминировании.
- •Вопрос №8: типы неаллельного взаимодействия генов и их общая хар-ка.
- •Вопрос №9: комплементарное взаимодействие генов и его генетич. Основа. Характер расщепления признаков. Примеры.
- •Вопрос №10: эпистаз. Типы эпистаза. Характер расщепления признаков. Примеры.
- •Вопрос №11: полимерия (кумулятивная и некумулятивная). Хар-р расщепления признаков.
- •Вопрос №12: действие генов модификаторов и плейотропное действие генов. Примеры.
- •Вопрос №14: нуклеосомная организация хромосом. Уровни компактизации – декомпактизация и их биол. Смысл.
- •Вопрос №15: митоз. Место митоза в клет. Цикле. Поведение хромосом при митозе.
- •Вопрос №16: типы митоза.
- •Вопрос №17: меойз как цитологическая основа образования половых клеток. Стадии мейоза.
- •Вопрос №18: расщепление на гаметическом уровне. Доказательство закона «чистоты гамет» с помощью тетрадного анализа.
- •Вопрос №19: гаметный мейоз. Механизм сперматогенеза и оогенеза. Роль мейоза и митоза. Место мейоза в жиз. Цикле животных.
- •Вопрос№20: споровый мейоз. Особенности образования гамет у высших растений. Микроспорогенез и мегаспорогенез. Роль митоза и мейоза в образовании гамет у растений.
- •Вопрос №21: генетическая основа несовместимости у растений.
- •Вопрос №21(второй): двойное оплодотворение у растений и его биол. Смысл.
- •Вопрос №22: зиготный мейоз. Механизм образования акроспор у Newrospora crassa и Saccharomyces cerevisiae.
- •Вопрос №23: нерегулярные типы полового размножения у растений и животных и их механиз.
- •Вопрос №24: механизм определения пола xy, xo, xz. И гаплоидно-диплоидного.
- •Вопрос №25: балансовая теория определения пола у дрозофилы.
- •Вопрос №26: половой хроматин.
- •Вопрос №27: наследование признаков сцепленных с полом. Работы моргана, крисс-кросс наследование.
- •Вопрос №28: характер наследования признаков при нерасхождении половых хромосом.
- •Вопрос №29: сценпленное наследование и его док-во в работах бэтсона, пеннета, моргана.
- •Вопрос №31: картирование хромосом при двухфакторном скрещивании в опытах стертеванта.
- •Вопрос №32. Принципы картирования хромосом при трехфакторном скрещивании. Правило аддитивности. Интерференция
- •Вопрос №33. Цитологическое доказательство кроссинговера крейтон и макклинток на кукурузе и штерна на дрозофиле
- •Вопрос №37. Молекулярная модель кроссинговера р. Холлидея и ее основные этапы.
- •Вопрос №38: молекулярная модель кроссинговера мезельсона и рэддинга, ее основные этапы.
- •Вопрос №39.Способы генетического обмена у бактерий. Генетический анализ при конъюгации.
- •Вопрос №40. Способы генетического обмена у бактерий. Генетический анализ при трансформации.
- •Вопрос №41: способы генетического обмена у бактерий. Генетич. Анализ при трансдукции.
- •Вопрос №43: доказательство бидлом и татумом концепции «один ген – один фермент».
- •Вопрос №46: доказательство генетической роли днк и рнк.
- •Вопрос №47: механизмы репликации днк. Ферменты репликации.
- •Вопрос №48: особенности репликации различных геномов у про- и эукариот.
- •Вопрос №49: хар-ка повреждений днк, репарируемых системами репарации.
- •Вопрос №50: механизмы репарации днк, и их общая хар-ка.
- •Вопрос №51: механизм эксцизионной репарации повреждений днк
- •Вопрос №52 механиз пострепликативной репарации повреждений днк.
- •Вопрос №53 система рестрикции и модификации и ее биологическое значение.
- •Вопрос №54 транскрипция. Составляющие элементы, их структура и функция.Этапы транскрипции
- •Вопрос №55 трансляция. Составляющие элементы их структура и функция. Этапы трансляции.
- •Вопрос №56: генетический код и его характеристика.
- •Вопрос №57: доказательство триплетности кода ф. Криком.
- •Вопрос №58: расшифровка генетического кода. Опыты м. Ниренберга, ф. Ледера, дж. Маттеи и др.
- •Вопрос №59: особенности строения генов у про- и эукариот. Строение оперонов.
- •Вопрос №60: регуляция транскрипции путем индукции на примере lac-оперона.
- •Вопрос №61: механизм репрессии и аттенуации на примере работы trp-оперона.
- •Вопрос №62: катаболитная репрессия.
- •Вопрос №64: методы учета мутаций и микроорганизмов.
- •Вопрос №65: методы учета мутаций у дрозофилы, метод меллер-5, Double yellow, ci1b и Cyrly. Возможности методов.
- •Вопрос №66: классификация генных мутаций.
- •Вопрос №67: методы учета мутаций у растений.
- •Вопрос №69 индуцированные генные мутации и механизм их возникновения( под действием аналогов оснований, алкилирующих агентов, включения ахридиновых красителей в днк)
- •Вопрос №70 хромосомные мутации. Механизм возникновения. Классификация.
- •Вопрос №71: хромосомные мутции типа делеций. Особенности поведения во время мейоза. Механизмы возникновения делеционных мутаций.
- •Вопрос №72: хромосомные мутации типа дупликаций. Поведение во время мейоза.
- •Вопрос №73: хромосомные мутации типа инверсий. Поведение во время мейоза и генетические последствия. Причины низкой жизнеспособности и отсутствия рекомбинантов.
- •Вопрос №74: хромосомные мутации типа транслокаций. Поведение во время мейоза. Причины низкой жизнеспособности и отсутствия рекомбинантов.
- •Вопрос №75: геномные мутации. Классификация.
- •Вопрос №76: автополиплоидия и аллополиплоидия.
- •Вопрос №77: амфиплоиды. Механизм их образования. Примеры.
- •Вопрос №78: гаплоидия и ее использование в биотехнологии растений.
- •Вопрос №79: анеуплоидия. Типы анеуплоидов. Особенности мейоза. Использование анеуплоидов в генетическом анализе.
- •Вопрос №80: онтогенез как процесс реализации наследственной программы развития организма. Этапы онтогенеза.
- •Вопрос №81: механизмы реализации действия генов в процессе онтогенеза
- •Вопрос № 82: особенности наследования нехромосомных генов эукариот
- •Пластидное наследование
- •Наследование через митохондрии
- •Вопрос № 85. Методы изучения генетики человека
Вопрос №37. Молекулярная модель кроссинговера р. Холлидея и ее основные этапы.
Рассмотрение гомологичной рекомбинации начнем с общей модели кроссинговера, опубликованной в 1964 году американским генетиком Р. Холлидеем. Сразу оговоримся, что Холлидей предложил эту модель с конкретной целью, а именно для объяснения результатов, полученных им и другими исследователями генетики грибов. Модель была формальной, без детализации молекулярных механизмов рекомбинационных реакций, она не рассматривала белки, их осуществляющие, поскольку в начале 60-х годов большинство из них не было известно.
Но как раз в то время началось бурное развитие молекулярной генетики и случилось так, что новые экспериментальные результаты хорошо вписались в модель Холлидея, дополняя и уточняя ее. По существу история молекулярной генетики рекомбинации - это развитие модели Холлидея. В усовершенствованном коллективными усилиями генетиков и молекулярных биологов виде модель представлена на рис. 3. Она разработана для мейотического кроссинговера. Напомним, что ядро мейотической клетки в профазе I содержит по четыре гомологичных хроматиды, но в каждом отдельном акте кроссинговера участвуют только две из них. На рис. 3 изображены два гомологичных дуплекса, соответствующие хроматидам. Для простоты изображены только те две хроматиды из четырех, которые участвуют в кроссинговере.В принципе для того, чтобы гомологичные молекулы ДНК поменялись своими частями, сначала должны произойти разрывы во всех цепях обоих дуплексов, а уже потом - обмен цепями и замыкание разрывов. У Холлидея разрывы происходят не одновременно, а в два этапа. Рекомбинация начинается с первичных одноцепочечных разрывов фосфодиэфирных связей ДНК (их вносит фермент эндонуклеаза). Разрывы происходят в двух цепях одинаковой полярности (рис. 3, а). Холлидей также постулировал, что первичные разрывы возникают не в случайных, а в определенных сайтах ДНК. Впоследствии эта идея получила экспериментальное подтверждение.Далее от точек первичных разрывов происходит обмен цепями между дуплексами, который приводит к образованию крестообразной структуры, получившей впоследствии название "полухиазма Холлидея" (рис. 3, б и 4). Такое название объясняется тем, что в полухиазме в обмен вовлечены только две цепи ДНК из четырех, что отличает ее от полной хиазмы - характерного продукта завершенного мейотического кроссинговера, давно известного биологам. Затем происходит очень важный процесс - перемещение точки перекреста цепей в полухиазме вдоль рекомбинирующих дуплексов (рис. 3, в). Такое явление описано под названием "миграция ветвления". Оно заключается в следующем: от точки перекреста цепей происходит расплетание исходных дуплексов и высвобождающиеся цепи тут же ренатурируют с комплементарными цепями из гомологичных дуплексов, что приводит к образованию и последующему удлинению гетеродуплекса (B / b на рис. 3, в). Именно в удлинении гетеродуплекса и заключается биологический смысл миграции ветвления. Ее осуществляют специальные ферменты. Размеры гетеродуплекса при мейотическом кроссинговере колеблются от нескольких сот до одной тысячи п.н., при рекомбинации в соматических клетках и клетках прокариот он еще протяженнее.Гетеродуплекс сформирован. Образовавшаяся сложная разветвленная структура должна разделиться на гомологи. Это называется разрешением полухиазмы. Для разрешения необходимы еще два разрыва цепей: вторичные разрывы завершат обмен цепями. Но прежде чем это случится, полухиазма должна претерпеть еще одно превращение - изомеризацию. Изомеризация заключается в изменении структуры полухиазмы, которое происходит за счет обычного теплового движения молекул. На рис. 3 изображена схема изомеризации полухиазмы, предложенная Х. Поттером и Д. Дресслером в 1976 году. Структуры в и в' идентичны: просто вторая изображена в крестообразном виде, что приближает ее к реальной (рис. 4). В структуре в' происходит один поворот на 180? любой пары дуплексных сегментов (плеч), на рисунке это нижняя пара. Образовавшаяся структура (рис. 3, г) может разрешиться двумя парами вторичных разрывов. Парные разрывы цепей одинаковой полярности 1-1 или 2-2 приводят к двум типам рекомбинантных хроматид: хроматиды первого типа (рис. 3, д ) содержат внутренний гетеродуплекс B / b, а по конфигурации фланговых маркеров А и С не отличаются от исходных (некроссоверные хроматиды); рекомбинантные хроматиды второго типа (рис. 3, е) кроссоверные, они также содержат гетеродуплекс, но обмениваются частями по обе стороны от него. Оба типа продуктов рекомбинации равновероятны, что соответствует генетическим данным, на которые опирался Холлидей при создании своей модели.Здесь необходимо сделать небольшое отступление по поводу одного важного процесса, происходящего в гетеродуплексе. Как уже указывалось, от исходных молекул в рекомбинационный гетеродуплекс могут войти разные аллели, и тогда в нем возникнут неспаренные основания, которые локально нарушат структуру двойной спирали ДНК. Эти нарушения узнаются специальными ферментными системами, работающими по типу эксцизионной репарации (см. статью В.Н. Сойфера "Репарация генетических повреждений"). Они проводят коррекцию неспаренных оснований в гетеродуплексе: удаляют неспаренное основание в одной цепи ДНК и застраивают образующуюся брешь по матрице другого аллеля в комплементарной цепи, тем самым превращая (конвертируя) один аллель в другой. Это явление было давно известно под названием "конверсия гена", но теперь мы знаем, что в ее основе лежит коррекция гетеродуплекса. Схема конверсии гена на примере мейоза у дрожжей представлена на рис. 5. Из нее ясно, что если гетерозиготная клетка A / a вступает в мейоз, то в норме среди продуктов мейоза оба аллеля гена A будут представлены в равном соотношении: 2A : 2a. Однако если в районе хромосомы, где расположен ген A, произойдет кроссинговер, то сформируется гетеродуплекс A / a с локально неспаренными основаниями, что может привести к конверсии гена A: расщепление аллелей гена среди продуктов мейоза будет 3A : 1a или 1A : 3a. Расщепление по генам, расположенным вне участка кроссинговера (на рис. 5 не показаны), сохранит нормальное соотношение аллелей 2 : 2. Мы видели при разборе модели Холлидея, что содержащие гетеродуплекс продукты рекомбинации с кроссинговером и без кроссинговера по внешним генам равновероятны, иными словами, конверсия гена в мейозе может одинаково часто сопровождаться и не сопровождаться обменом по внешним генам. Этот факт был основным среди упомянутых выше генетических данных, опираясь на которые Холлидей создавал свою модель.Модель Холлидея симметрична: первичные разрывы возникают одновременно в обоих гомологах и обмен цепями происходит синхронно. Однако имеются генетические данные об асимметричных обменах, полученные, в частности, на дрожжах. В этих случаях первичный разрыв возникает только в одном дуплексе, затем от точки разрыва отделяется одна цепь ДНК, которая внедряется в гомологичный дуплекс и в ходе последующей миграции ветвления вытесняет из него цепь той же полярности. После этого обмен превращается в симметричный. Пример такой реакции, но применительно к E. coli будет рассмотрен ниже.Модель Холлидея в ее современном виде общепризнана и универсальна для прокариот и эукариот (и для половых, и для соматических клеток). Ее достоинством является тот факт, что она хорошо проверяется генетическими данными, и практически все ее этапы постепенно нашли экспериментальное подтверждение. Полухиазмы Холлидея хорошо видны под электронным микроскопом . Обнаружены специальные эндонуклеазы (их называют резолвазами), которые осуществляют разрешение полухиазмы, как это изображено на рис. 3, г. К настоящему времени такие резолвазы обнаружены у бактериофагов T4 и T7, E. coli, дрожжей и человека. У E. coli выявлены также белки, осуществляющие миграцию ветвления полухиазмы. Именно на примере E. coli как наиболее изученного в отношении рекомбинации объекта мы рассмотрим конкретные механизмы кроссинговера.
